谷氨酰胺代谢微环境驱动M2巨噬细胞极化介导HER2阳性胃癌中的曲妥珠单抗耐药

Glutamine metabolic microenvironment drives M2 macrophage polarization to mediate trastuzumab resistance in HER2-positive gastric cancer

作者信息Xingbin Hu, Zhenfeng Ma, Beibei Xu, Shulong Li, Zhiqi Yao, Bishan Liang, Jiao Wang, Wangjun Liao, Li Lin, Chunling Wang, Siting Zheng, Qijing Wu, Qiong Huang, Le Yu, Fenghua Wang, Min Shi
PMID37434399
发布时间2023-08
DOI10.1002/cac2.12459

实验完整度

包含体外细胞实验、患者组织样本分析、动物模型验证及多尺度ABM模拟等多个独立证据层级,并有功能验证和机制验证。

主要模型

HER2阳性胃癌细胞系NCI-N87及曲妥珠单抗耐药株NCI-N87-TR HER2阳性胃癌细胞系SNU216及曲妥珠单抗耐药株SNU216-TR THP-1来源巨噬细胞 外周血单核细胞来源巨噬细胞 BALB/c裸鼠皮下移植瘤模型 患者肿瘤组织样本

重点核对

曲妥珠单抗耐药细胞系NCI-N87-TR和SNU216-TR的建立方法(3D胶原模型,10 μg/mL曲妥珠单抗处理6个月) GLS1抑制剂BPTES和CB839的浓度(20 μmol/L)及处理时间(48小时) 体内实验中BPTES的剂量(12.5 mg/kg,腹腔注射,每周两次)及给药方案 联合治疗实验中celecoxib(80 mg/kg,灌胃,隔天一次)和B20-4.1.1(5 mg/kg,腹腔注射,每周两次)的剂量与给药方式 ABM模型中模拟的肿瘤区域大小(200×200格,代表约5 mm肿瘤截面)及关键参数(如α-KG生成率等)

摘要

背景 曲妥珠单抗是HER2阳性胃癌的一线靶向治疗。然而,不可避免的获得性曲妥珠单抗耐药限制了药物获益,目前尚无有效的逆转措施。现有关于曲妥珠单抗耐药机制的研究主要集中于肿瘤细胞本身,而对微环境介导的耐药机制了解相对缺乏。本研究旨在进一步探索曲妥珠单抗耐药的机制,以确定促进这些患者生存的策略。 方法 收集曲妥珠单抗敏感和曲妥珠单抗耐药的HER2阳性肿瘤组织和细胞进行转录组测序。使用生物信息学分析细胞亚型、代谢通路和分子信号通路。通过免疫荧光和免疫组织化学分析验证微环境指标的变化。最后,构建了多尺度基于智能体的模型。联合治疗的效果在裸鼠中进一步验证了ABM预测的效果。 结果 基于转录组测序、分子生物学和体内实验,我们发现曲妥珠单抗耐药的HER2阳性细胞中谷氨酰胺代谢水平升高,谷氨酰胺酶1显著过表达。同时,肿瘤来源的GLS1微囊泡驱动M2巨噬细胞极化。此外,血管生成促进了曲妥珠单抗耐药。免疫组化显示,在曲妥珠单抗耐药的HER2阳性肿瘤组织(来自患者和裸鼠)中,谷氨酰胺代谢、M2巨噬细胞极化和血管生成均较高。机制上,细胞分裂周期42通过激活核因子κB p65促进肿瘤细胞中GLS1的表达,并通过含IQ基序的GTP酶激活蛋白1驱动GLS1微囊泡的分泌。基于ABM和体内实验,我们证实抗谷氨酰胺代谢、抗血管生成和促M1极化治疗的联合方案在逆转HER2阳性胃癌曲妥珠单抗耐药方面效果最佳。 结论 本研究揭示,肿瘤细胞通过CDC42分泌GLS1微囊泡,以促进谷氨酰胺代谢、M2巨噬细胞极化和巨噬细胞的促血管生成功能,导致HER2阳性胃癌的获得性曲妥珠单抗耐药。抗谷氨酰胺代谢、抗血管生成和促M1极化治疗的联合方案可能为逆转曲妥珠单抗耐药提供新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
谷氨酰胺代谢微环境如何通过调节巨噬细胞极化介导HER2阳性胃癌的曲妥珠单抗获得性耐药?
核心机制
肿瘤细胞通过CDC42激活NF-κB p65促进GLS1表达,并通过IQGAP1驱动GLS1微囊泡分泌,GLS1微囊泡促进巨噬细胞谷氨酰胺代谢和M2极化,进而促进血管生成,介导曲妥珠单抗耐药。
主要证据
转录组测序显示耐药细胞和患者组织中谷氨酰胺代谢通路显著上调;体内外实验证实GLS1抑制剂部分恢复曲妥珠单抗敏感性;共培养和微囊泡实验表明GLS1微囊泡驱动M2极化;ChIP和Co-IP实验证明CDC42-NF-κB-GLS1和IQGAP1-GLS1机制。
研究意义
本研究揭示了肿瘤微环境中代谢-免疫相互作用在耐药中的新机制,提出抗谷氨酰胺代谢、抗血管生成和促M1极化联合治疗策略,为逆转曲妥珠单抗耐药提供了新的见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定耐药细胞和患者组织中谷氨酰胺代谢上调

检测曲妥珠单抗耐药相关的代谢通路变化。

对曲妥珠单抗敏感和耐药细胞系及患者组织进行RNA-seq,通过GSVA分析代谢通路评分,qRT-PCR和WB验证谷氨酰胺代谢相关基因表达,检测GLS1酶活性、α-KG和谷氨酰胺含量。

2

验证GLS1抑制对耐药细胞敏感性的影响

检验抑制谷氨酰胺代谢是否恢复耐药细胞对曲妥珠单抗的敏感性。

使用GLS1抑制剂BPTES和CB839处理细胞,通过MTT和流式凋亡检测细胞增殖和凋亡;构建shGLS1沉默细胞系,评估对曲妥珠单抗的敏感性。

3

评估耐药微环境中巨噬细胞极化和血管生成特征

探究耐药微环境中巨噬细胞表型及血管生成的变化。

通过IHC和IF检测移植瘤及患者组织中M2巨噬细胞标志物(CD206)和血管标志物(CD31);CIBERSORT分析免疫细胞浸润比例;流式分析M2/M1比例;鸡胚绒毛尿囊膜实验检测血管生成。

4

证实肿瘤细胞通过GLS1微囊泡调控巨噬细胞

验证肿瘤细胞分泌的GLS1微囊泡是否促进巨噬细胞谷氨酰胺代谢和M2极化。

提取肿瘤细胞微囊泡,通过TEM和SEM观察形态,WB检测微囊泡标志物和GLS1,将微囊泡与巨噬细胞共培养,检测GLS1表达、酶活性及巨噬细胞表型。

5

阐明CDC42调控GLS1表达和微囊泡分泌的机制

明确CDC42如何通过NF-κB p65和IQGAP1调控GLS1表达及微囊泡分泌。

通过CDC42突变体、ZCL278抑制剂和PMA激动剂实验,检测GLS1表达和酶活性;ChIP实验验证NF-κB p65结合GLS1启动子;Co-IP实验验证IQGAP1与GLS1结合。

6

构建多尺度ABM并预测联合治疗策略

建立数学模型模拟耐药微环境动态,预测最佳联合治疗组合。

基于分子、细胞、微环境和组织尺度构建ABM,模拟肿瘤生长、血管生成和免疫细胞动态,并模拟不同治疗组合的效果。

7

体内验证联合治疗逆转耐药的疗效

在动物模型中验证ABM预测的联合治疗策略效能。

在NCI-N87-TR异种移植瘤模型中,给予不同联合治疗(抗谷氨酰胺、抗血管生成、促M1极化),测量肿瘤体积和重量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基Solarbio31800
胎牛血清SolarbioS9030
DMEM培养基Solarbio12100
佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯SelleckS7791
曲妥珠单抗Roche--
BPTESSelleckS6951
CB839SelleckS7655
ZCL278SelleckS7293
GW4869SelleckS7609
塞来昔布MedChemExpressHY-14398
B20-4.1.1Genentech--
TRIzol试剂Invitrogen10296010
HiScript II Q RT SuperMix(qPCR用逆转录试剂盒)VazymeR222-01
QuantStudio 6 Pro实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher--
牛血清白蛋白Fude--
辣根过氧化物酶标记二抗FudeFDM007、FDR007
化学发光检测系统Tanon--
抗NF-κB p65抗体Cell Signaling TechnologyCat#8242S
抗磷酸化NF-κB p65抗体Cell Signaling TechnologyCat#3033S
抗IQGAP1抗体Cell Signaling TechnologyCat#20648S
抗GAC抗体Proteintech19958-1-AP
抗KGA/GAC抗体Proteintech66265-1-Ig
抗IQGAP1抗体Proteintech22167-1-AP
抗TGM2抗体Proteintech15100-1-AP
抗Alix抗体Proteintech12422-1-AP
抗Flotillin 2抗体Proteintech28208-1-AP
抗IκBα抗体Proteintech10268-1-AP
抗β-actin抗体Proteintech66009-1-Ig
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
抗组蛋白H3抗体Proteintech17168-1-AP
抗CDC42抗体WanleibioWL01165
抗CDC42-GTP抗体NewEast BiosciencesCat#26905
抗GLS1抗体Proteintech66265-1-Ig
抗F4/80抗体Proteintech29414-1-AP
抗CD206抗体Proteintech60143-1-Ig
抗Ly6G抗体Abcamab238132
抗CD31抗体Proteintech11265-1-AP
抗CD68抗体Abcamab201340
抗CD11c抗体Proteintech17342-1-AP
抗αSMA抗体Proteintech55135-1-AP
GLS1活性检测试剂盒SolarbioBC1455
α-KG ELISA试剂盒Camilo Biological2M-KMLJM220809m、2H-KMLJh313735
谷氨酸含量检测试剂盒SolarbioBC1580
MTTBeyotimeST316
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒SolarbioCA1020
Annexin V-APC/7-AAD凋亡试剂盒Multi SciencesAP105
抗人CD86抗体BiolegendCat#305419
抗人CD163抗体BiolegendCat#333603
抗人CD14抗体BiolegendCat#301803
抗小鼠CD206抗体InvitrogenProduct#12-2061-80
抗小鼠CD11c抗体Multi Sciences70-AM011C05-100
抗小鼠F4/80抗体Multi SciencesAM04800201
超速离心机Beckman Coulter--
BCA蛋白定量试剂盒SolarbioPC0020
透射电子显微镜HITACHI--
扫描电子显微镜JSM-7900F--
Lipofectamine 2000转染试剂盒Invitrogen11668019
嘌呤霉素InvitrogenA1113803
人外周血单核细胞分离试剂盒SolarbioP8680
巨噬细胞集落刺激因子Sinobiological11792-HNAH-B
JET Biofil共培养小室JET Biofil--
白介素-4Pepro Tech--
核质蛋白提取试剂盒BeyotimeP0027
SimpleChIP酶法染色质免疫沉淀试剂盒Cell Signaling TechnologyCat#9003
蛋白A/G-琼脂糖珠7 Sea BiotechP001-2
DAB显色液DAKO--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
耐药细胞系建立
3D胶原模型建立方法,曲妥珠单抗浓度和暴露时间(文中未明确说明具体时间,仅提及6个月)
阅读提示:Methods 2.2 Cell lines, cell culture, and establishment of trastuzumab-resistant cells
体外药物处理
BPTES和CB839的处理浓度(20 μmol/L)和时间(48 h);曲妥珠单抗处理浓度(10 μg/mL)和时间(48 h)
阅读提示:Methods 2.10 MTT assay、2.11 Apoptosis detection、Results 3.1 Figure 1H-I
巨噬细胞极化诱导
THP-1分化所需PMA浓度(100 ng/mL)和处理时间(48 h);PBMC来源巨噬细胞分化所需M-CSF浓度(10 ng/mL)和时间(7天)
阅读提示:Methods 2.2 Cell lines、2.15 Preparation and polarization of PBMCs
共培养系统
共培养体系中肿瘤细胞和巨噬细胞的比例(各2×10^5)及共培养时间(48 h);GW4869处理浓度(10 μmol/L)
阅读提示:Methods 2.16 Co-culture system
微囊泡提取与分析
差速离心各步骤的离心力(1000×g、10000×g、100000×g)和时间;微囊泡重悬体积(400 μL PBS);蛋白定量方法(BCA)
阅读提示:Methods 2.19 Isolation of microvesicles
体内动物实验
动物品系(BALB/c裸鼠)、年龄和体重(6-8周,17-20 g);细胞接种量(1×10^6);治疗分组和给药方案(trastuzumab 20 mg/kg每周两次腹腔注射,BPTES 12.5 mg/kg每周两次腹腔注射,celecoxib 80 mg/kg灌胃隔天一次,B20-4.1.1 5 mg/kg每周两次腹腔注射)
阅读提示:Methods 2.7 Animals、2.25 Efficacy assay of combined treatment in mouse model
ABM模拟
模拟网格大小(200×200)、初始条件分布、方程参数(见补充表格)
阅读提示:Methods 2.24 Agent-based model (ABM)