1型糖尿病中β细胞HIF1α/PFKFB3应激反应通路的激活

Activation of the HIF1α/PFKFB3 stress response pathway in beta cells in type 1 diabetes

作者信息Hiroshi Nomoto, Lina Pei, Chiara Montemurro, Madeline Rosenberger, Allison Furterer, Giovanni Coppola, Brian Nadel, Matteo Pellegrini, Tatyana Gurlo, Peter C Butler, Slavica Tudzarova
PMID31720731
发布时间2020-01
DOI10.1007/s00125-019-05030-5

实验完整度

包含人胰岛RNA-seq分析、人胰腺免疫组化、大鼠/人胰岛及INS-1细胞功能实验,但缺乏动物模型和多重机制验证。

主要模型

人胰岛(1型糖尿病与非糖尿病供体) 人胰腺组织(1型糖尿病、前驱糖尿病及非糖尿病供体) 大鼠原代胰岛 INS-1 832/13大鼠胰岛素瘤细胞系

重点核对

RNA-seq数据集的来源和样本量(如Mastracci等n=5, Eizirik等n=10, Wang等n=23) 人胰腺样本的nPOD编号和供体特征(年龄、性别、BMI、病程) 细胞因子处理浓度和时间(大鼠:25 U/ml IL-1β, 500 U/ml TNF-α, 500 U/ml IFN-γ,24 h;人:50 U/ml IL-1β, 1000 U/ml TNF-α, 1000 U/ml IFN-γ,48 h) HIF1α抑制剂KC7F2的浓度(5 μmol/l和10 μmol/l)及处理时间 Pfkfb3 siRNA的浓度(75 nmol/l)和转染时间(48 h)

摘要

目的/假设:保守的缺氧诱导因子1α(HIF1α)损伤反应促生存通路最近被认为与2型糖尿病的早期β细胞功能障碍和缓慢的β细胞丢失有关。我们假设1型糖尿病中无法解释的长期前驱糖尿病期可能部分归因于HIF1α信号通路的激活。方法:评估了来自1型糖尿病或体外细胞因子暴露后人胰岛的RNA测序(RNA-Seq)数据中HIF1α靶标的激活情况。通过对1型糖尿病个体的人胰腺进行6-磷酸果糖-2-激酶/果糖-2,6-二磷酸酶3(PFKFB3)免疫染色,以及对暴露于与1型糖尿病相关的细胞因子的胰岛和INS-1 832/13细胞进行蛋白质印迹,进一步证实了这一点。结果:在1型糖尿病个体的胰岛中,HIF1α信号通路被激活(p=4.5×10−9),在体外暴露于与1型糖尿病相关的细胞因子的人胰岛中也被激活(p=1.1×10−14)。在1型糖尿病的β细胞中,以及暴露于诱导乳酸产生增加的细胞因子的人和大鼠胰岛中,PFKFB3表达增加了五倍(p<0.01)。HIF1α减弱了细胞因子诱导的β细胞死亡。结论/解释:保守的HIF1α介导的促生存损伤反应信号在1型糖尿病的β细胞中被激活,可能有助于相对缓慢的β细胞丢失,但代价是早期葡萄糖诱导的胰岛素分泌缺陷。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HIF1α/PFKFB3信号通路是否在1型糖尿病的β细胞中被激活,并且激活该通路是否能保护β细胞免受细胞因子诱导的细胞死亡?
核心机制
细胞因子通过HIF1α信号通路促进β细胞代谢重塑,从氧化磷酸化转向有氧糖酵解,增加PFKFB3、LDHA等表达,产生促生存效应,但导致葡萄糖刺激的胰岛素分泌缺陷。
主要证据
RNA-seq数据显示1型糖尿病胰岛和细胞因子处理的胰岛中HIF1α靶基因上调;人胰腺免疫组化显示PFKFB3在β细胞中表达增加;大鼠和人类胰岛显示细胞因子诱导PFKFB3和乳酸产生增加;INS-1细胞实验显示抑制HIF1α增加细胞因子诱导的细胞死亡,而抑制PFKFB3无影响。
研究意义
该发现为1型糖尿病β细胞丢失缓慢和早期胰岛素分泌缺陷提供了潜在机制,并提示在自身免疫干预期间保留HIF1α信号可能有助于维持β细胞质量。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

RNA-seq数据分析

评估1型糖尿病和细胞因子处理的人胰岛中HIF1α靶基因的表达是否改变。

对三个公开的RNA-seq数据集(Mastracci、Eizirik、Wang)进行再分析,比较HIF1α靶基因与所有其他基因的折叠变化。

2

人胰腺免疫组化

验证1型糖尿病和前驱糖尿病β细胞中PFKFB3蛋白表达是否增加。

对nPOD人胰腺切片进行PFKFB3、胰岛素、胰高血糖素免疫荧光染色,定量核PFKFB3阳性β细胞百分比。

3

大鼠和人类胰岛细胞因子处理

检测细胞因子是否能激活HIF1α信号通路并诱导代谢重塑。

分离大鼠和人类胰岛,用细胞因子混合物处理,通过蛋白质印迹检测HIF1α、PFKFB3、HK1、LDHA表达,并测量乳酸产生。

4

线粒体网络分析

评估1型糖尿病β细胞中线粒体网络是否发生促生存重塑。

对胰腺切片进行Tom20和GRP75免疫染色,定量β细胞线粒体面积和分布。

5

HIF1α和PFKFB3功能抑制实验

确定HIF1α和PFKFB3在细胞因子诱导的β细胞死亡中的作用。

在INS-1 832/13细胞中,使用KC7F2抑制HIF1α或siRNA敲低PFKFB3,在细胞因子存在下检测cleaved caspase-3水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
含DAPI的Vectashield封片剂Vector LaboratoriesH-1200
白细胞介素-1βSigmaI9401
肿瘤坏死因子-αSigmaT0157
干扰素-γSigmaI17001
KC7F2SelleckchemS7946
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Invitrogen--
乳酸检测试剂盒Trinity Biotech735-10
DC蛋白检测试剂盒Bio-Rad--
SDS-PAGE凝胶(4-12%)----
PVDF膜----
ECL化学发光试剂Bio-Rad--
LabWorks软件UVP4.5.00.0
Protein-A磁珠----
Hanks平衡盐溶液Invitrogen--
LiberaseRoche05401020001
DNaseRoche10104159001
RPMI 1640培养基Invitrogen--
胎牛血清Gemini Bio-Products--
β-巯基乙醇Sigma--
青霉素-链霉素Invitrogen--
兔抗PFKFB3抗体Abcamab181861
兔抗HIF1α抗体Abcamab2185
兔抗LDHA抗体Cell Signaling Technology2012
兔抗HK1抗体Cell Signaling Technology2024
兔抗cleaved caspase-3抗体Cell Signaling Technology9664
兔抗磷酸化PFKFB3抗体Abcamab202291
兔抗乙酰赖氨酸抗体Abcamab80178
兔抗GRP75抗体Abcamab53098
兔抗磷酸丝氨酸抗体Abcamab9332
豚鼠抗胰岛素抗体DakoA0564
小鼠抗胰高血糖素抗体Sigma-AldrichG2654
大鼠抗C肽抗体Developmental Studies Hybridoma BankGN-ID4
兔抗Tom20抗体Santa Cruz Biotechnologysc-11415
兔抗GAPDH抗体Cell Signaling Technology2118
Cy3、FITC、Alexa647二抗Jackson ImmunoResearch Laboratories--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
RNA-seq数据分析
使用的三个数据集(Mastracci, Eizirik, Wang)的GEO编号、样本量(如type 1 diabetes n=2,3,6;对照n=3,5,17)
阅读提示:Methods: Evaluation of RNA sequence transcriptomes of human islets
人胰腺免疫组化
nPOD样本编号、供体年龄、性别、BMI、糖尿病病程(见表1)
阅读提示:Methods: Human pancreas; Table 1
细胞因子处理
细胞因子浓度和暴露时间(大鼠:25 U/ml IL-1β, 500 U/ml TNF-α, 500 U/ml IFN-γ,24 h;人:50 U/ml IL-1β, 1000 U/ml TNF-α, 1000 U/ml IFN-γ,48 h)
阅读提示:Methods: Cytokine treatment
HIF1α抑制实验
KC7F2的浓度(5 μmol/l和10 μmol/l)和处理时间(最后24 h)
阅读提示:Methods: Small interfering RNA for PFKFB3 and inhibition of HIF1α; Fig. 6 legend
PFKFB3敲低实验
Pfkfb3 siRNA浓度(75 nmol/l)和转染时间(48 h),以及细胞因子处理时间(最后24 h)
阅读提示:Methods: Small interfering RNA for PFKFB3 and inhibition of HIF1α; Fig. 6 legend