RNA-seq数据分析
评估1型糖尿病和细胞因子处理的人胰岛中HIF1α靶基因的表达是否改变。
对三个公开的RNA-seq数据集(Mastracci、Eizirik、Wang)进行再分析,比较HIF1α靶基因与所有其他基因的折叠变化。
Activation of the HIF1α/PFKFB3 stress response pathway in beta cells in type 1 diabetes
包含人胰岛RNA-seq分析、人胰腺免疫组化、大鼠/人胰岛及INS-1细胞功能实验,但缺乏动物模型和多重机制验证。
人胰岛(1型糖尿病与非糖尿病供体) 人胰腺组织(1型糖尿病、前驱糖尿病及非糖尿病供体) 大鼠原代胰岛 INS-1 832/13大鼠胰岛素瘤细胞系
RNA-seq数据集的来源和样本量(如Mastracci等n=5, Eizirik等n=10, Wang等n=23) 人胰腺样本的nPOD编号和供体特征(年龄、性别、BMI、病程) 细胞因子处理浓度和时间(大鼠:25 U/ml IL-1β, 500 U/ml TNF-α, 500 U/ml IFN-γ,24 h;人:50 U/ml IL-1β, 1000 U/ml TNF-α, 1000 U/ml IFN-γ,48 h) HIF1α抑制剂KC7F2的浓度(5 μmol/l和10 μmol/l)及处理时间 Pfkfb3 siRNA的浓度(75 nmol/l)和转染时间(48 h)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估1型糖尿病和细胞因子处理的人胰岛中HIF1α靶基因的表达是否改变。
对三个公开的RNA-seq数据集(Mastracci、Eizirik、Wang)进行再分析,比较HIF1α靶基因与所有其他基因的折叠变化。
验证1型糖尿病和前驱糖尿病β细胞中PFKFB3蛋白表达是否增加。
对nPOD人胰腺切片进行PFKFB3、胰岛素、胰高血糖素免疫荧光染色,定量核PFKFB3阳性β细胞百分比。
检测细胞因子是否能激活HIF1α信号通路并诱导代谢重塑。
分离大鼠和人类胰岛,用细胞因子混合物处理,通过蛋白质印迹检测HIF1α、PFKFB3、HK1、LDHA表达,并测量乳酸产生。
评估1型糖尿病β细胞中线粒体网络是否发生促生存重塑。
对胰腺切片进行Tom20和GRP75免疫染色,定量β细胞线粒体面积和分布。
确定HIF1α和PFKFB3在细胞因子诱导的β细胞死亡中的作用。
在INS-1 832/13细胞中,使用KC7F2抑制HIF1α或siRNA敲低PFKFB3,在细胞因子存在下检测cleaved caspase-3水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫荧光染色 | 含DAPI的Vectashield封片剂 | Vector Laboratories | H-1200 |
| 细胞因子处理 | 白细胞介素-1β | Sigma | I9401 |
| 肿瘤坏死因子-α | Sigma | T0157 | |
| 干扰素-γ | Sigma | I17001 | |
| 抑制HIF1α | KC7F2 | Selleckchem | S7946 |
| siRNA转染 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 乳酸测量 | 乳酸检测试剂盒 | Trinity Biotech | 735-10 |
| 蛋白质印迹 | DC蛋白检测试剂盒 | Bio-Rad | -- |
| SDS-PAGE凝胶(4-12%) | -- | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| ECL化学发光试剂 | Bio-Rad | -- | |
| LabWorks软件 | UVP | 4.5.00.0 | |
| 免疫沉淀 | Protein-A磁珠 | -- | -- |
| 细胞培养 | Hanks平衡盐溶液 | Invitrogen | -- |
| 胰岛分离 | Liberase | Roche | 05401020001 |
| DNase | Roche | 10104159001 | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Invitrogen | -- |
| 胎牛血清 | Gemini Bio-Products | -- | |
| β-巯基乙醇 | Sigma | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Invitrogen | -- | |
| 免疫荧光染色 | 兔抗PFKFB3抗体 | Abcam | ab181861 |
| 蛋白质印迹 | 兔抗HIF1α抗体 | Abcam | ab2185 |
| 兔抗LDHA抗体 | Cell Signaling Technology | 2012 | |
| 兔抗HK1抗体 | Cell Signaling Technology | 2024 | |
| 兔抗cleaved caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9664 | |
| 兔抗磷酸化PFKFB3抗体 | Abcam | ab202291 | |
| 免疫沉淀 | 兔抗乙酰赖氨酸抗体 | Abcam | ab80178 |
| 免疫荧光染色 | 兔抗GRP75抗体 | Abcam | ab53098 |
| 免疫沉淀 | 兔抗磷酸丝氨酸抗体 | Abcam | ab9332 |
| 免疫荧光染色 | 豚鼠抗胰岛素抗体 | Dako | A0564 |
| 小鼠抗胰高血糖素抗体 | Sigma-Aldrich | G2654 | |
| 大鼠抗C肽抗体 | Developmental Studies Hybridoma Bank | GN-ID4 | |
| 兔抗Tom20抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-11415 | |
| 蛋白质印迹 | 兔抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 2118 |
| 免疫荧光染色 | Cy3、FITC、Alexa647二抗 | Jackson ImmunoResearch Laboratories | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| RNA-seq数据分析 | 使用的三个数据集(Mastracci, Eizirik, Wang)的GEO编号、样本量(如type 1 diabetes n=2,3,6;对照n=3,5,17) 阅读提示:Methods: Evaluation of RNA sequence transcriptomes of human islets |
| 人胰腺免疫组化 | nPOD样本编号、供体年龄、性别、BMI、糖尿病病程(见表1) 阅读提示:Methods: Human pancreas; Table 1 |
| 细胞因子处理 | 细胞因子浓度和暴露时间(大鼠:25 U/ml IL-1β, 500 U/ml TNF-α, 500 U/ml IFN-γ,24 h;人:50 U/ml IL-1β, 1000 U/ml TNF-α, 1000 U/ml IFN-γ,48 h) 阅读提示:Methods: Cytokine treatment |
| HIF1α抑制实验 | KC7F2的浓度(5 μmol/l和10 μmol/l)和处理时间(最后24 h) 阅读提示:Methods: Small interfering RNA for PFKFB3 and inhibition of HIF1α; Fig. 6 legend |
| PFKFB3敲低实验 | Pfkfb3 siRNA浓度(75 nmol/l)和转染时间(48 h),以及细胞因子处理时间(最后24 h) 阅读提示:Methods: Small interfering RNA for PFKFB3 and inhibition of HIF1α; Fig. 6 legend |