遗传电路的设计与构建
构建同时编码mHTT siRNA和RVG-Lamp2b融合蛋白的遗传电路,以实现在体内自组装并靶向递送siRNA。
设计并构建了CMV-siRmHTT和CMV-RVG-siRmHTT电路,将mHTT siRNA插入pre-miR-155骨架,RVG-Lamp2b融合蛋白克隆至CMV启动子下游,并以表达scrambled RNA的电路作为阴性对照。
Therapeutic reversal of Huntington's disease by in vivo self-assembled siRNAs
包含体外细胞实验、离体模型、三种亨廷顿病小鼠模型的体内治疗评估及安全性验证,涉及多个独立证据层级,并包含功能与机制验证。
HEK293T细胞 STHdh-Q7/Q111纹状体神经元祖细胞系 N171-82Q亨廷顿病小鼠模型 BACHD亨廷顿病小鼠模型 YAC128亨廷顿病小鼠模型
遗传电路(CMV-RVG-siRmHTT)的设计与构建 尾静脉注射剂量:5 mg/kg 注射频率和持续时间:N171-82Q和BACHD小鼠每2天一次共7次(2周),YAC128小鼠每周两次共16次(8周) mHTT mRNA和蛋白水平的定量检测方法(RT-qPCR和Western blot) 行为学测试(转棒实验)和神经病理学评估(免疫荧光)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建同时编码mHTT siRNA和RVG-Lamp2b融合蛋白的遗传电路,以实现在体内自组装并靶向递送siRNA。
设计并构建了CMV-siRmHTT和CMV-RVG-siRmHTT电路,将mHTT siRNA插入pre-miR-155骨架,RVG-Lamp2b融合蛋白克隆至CMV启动子下游,并以表达scrambled RNA的电路作为阴性对照。
验证遗传电路在细胞水平能否有效沉默mHTT表达并减少蛋白聚集。
将遗传电路转染至稳定表达mHTT-Q66-FLAG的HEK293T细胞和STHdh-Q111细胞,检测mHTT mRNA和蛋白水平,并通过荧光显微镜观察聚集点。
验证尾静脉注射遗传电路后,肝脏能否产生携带mHTT siRNA的功能性外泌体,并递送至受体细胞。
向C57BL/6J小鼠尾静脉注射遗传电路(7次),纯化血浆外泌体,与HEK293T细胞或STHdh-Q111细胞共培养,检测mHTT沉默效果。
验证RVG标签是否能引导携带siRNA的外泌体穿过血脑屏障递送至皮层和纹状体。
向C57BL/6J小鼠和GFP转基因小鼠注射电路,检测mHTT siRNA在皮层和纹状体的积累,并通过GFP荧光成像评估siRNA功能。
评估CMV-RVG-siRmHTT电路在三种亨廷顿病小鼠模型中的治疗潜力。
对N171-82Q、BACHD和YAC128小鼠进行尾静脉注射,通过转棒实验评估行为,Western blot和RT-qPCR检测mHTT水平,免疫荧光评估神经病理。
评估重复静脉注射遗传电路在体内的安全性。
C57BL/6J小鼠注射PBS、CMV-scrR、CMV-siRmHTT或CMV-RVG-siRmHTT共7次,检测血清生化指标、血常规,并对主要脏器进行HE染色。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 分子克隆 | 无内毒素质粒大提试剂盒V2 | Tiangen | DP120 |
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 脂质体转染试剂2000 | Invitrogen | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RT-qPCR | TaqMan microRNA检测试剂 | Applied Biosystems | -- |
| EvaGreen染料 | Biotium | 31000 | |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Thermo Scientific | 78440 | |
| Western blot | Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Scientific | -- |
| 增强化学发光底物 | Thermo Fisher | 46640 | |
| 抗HTT抗体 | Millipore | MAB2166 | |
| 抗多聚谷氨酰胺抗体 | Millipore | MAB1574 | |
| 抗DDDDK标签抗体 | Abcam | ab1162 | |
| 抗α-微管蛋白抗体 | Abcam | ab18251 | |
| 抗GFP抗体 | Abcam | ab290 | |
| 抗TSG101抗体 | Abcam | ab125011 | |
| 抗CD63抗体 | Abcam | ab217345 | |
| 抗CD9抗体 | Abcam | ab92726 | |
| 山羊抗小鼠IgG H&L HRP | Abcam | ab205719 | |
| 山羊抗兔IgG H&L HRP | Abcam | ab205718 | |
| 外泌体分析 | 血浆外泌体分离试剂盒 | Invitrogen | 4484450 |
| 外泌体标记 | PKH26 | Sigma | -- |
| 电镜 | 透射电子显微镜 | Hitachi | HT7700 |
| 纳米颗粒分析 | NanoSight NS 300系统 | NanoSight Technology | -- |
| 行为学测试 | 转棒仪 | TECHMAN | ZB-200 |
| 生化分析 | 全自动生化分析仪 | Hitachi | 7100 |
| 血常规 | 全自动血细胞分析仪 | ADVIA | 2120i |
| 免疫荧光 | 抗EM48抗体 | Millipore | MAB5374 |
| 抗NeuN抗体 | Millipore | MAB377 | |
| 抗兔IgG (H+L),Alexa Fluor 555 | CST | 4413 | |
| 抗小鼠IgG (H+L),Alexa Fluor 488 | CST | 4408 | |
| Alexa Fluor 594 | Life Technologies | A11042 | |
| 显微镜 | 尼康TI-SH-J共聚焦显微镜 | Nikon | -- |
| 徕卡TCS SP8-MaiTai MP共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| 显微镜相机 | Nikon | DS-Ri2 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 遗传电路构建 | CMV启动子、mHTT siRNA序列、RVG-Lamp2b融合蛋白的序列信息(见补充表1) 阅读提示:Materials and methods: Construction of the genetic circuits targeting mHTT; Supplementary Table 1 |
| 细胞培养 | HEK293T、STHdh-Q7/Q111的培养基、血清浓度、培养温度、CO2浓度 阅读提示:Materials and methods: Cell culture |
| 体外转染 | 转染试剂(Lipofectamine 2000)用量、转染后收获时间(48 h) 阅读提示:Materials and methods: In vitro transfection of the genetic circuits |
| 体内注射 | 小鼠品系、周龄、注射剂量(5 mg/kg)、注射方式(尾静脉)、注射体积(200 μl)、注射频率和次数 阅读提示:Materials and methods: In vivo injection of the genetic circuits; 各动物模型部分 |
| mHTT表达检测 | RT-qPCR的引物序列、Western blot的抗体稀释比例、蛋白上样量(60 μg) 阅读提示:Materials and methods: RNA extraction and quantitative RT-PCR assay; Western blotting; Supplementary Table 2 |
| 外泌体分析 | 血浆外泌体分离步骤、TEM和NTA的操作参数 阅读提示:Materials and methods: Analysis of exosomes |
| 行为学测试 | 转棒设备的加速范围(5-40 rpm,5 min)、训练方案、测试次数和间隔 阅读提示:Materials and methods: Evaluation of the therapeutic effects...; Rotarod test description |