通过体内自组装 siRNA 治疗性逆转亨廷顿病

Therapeutic reversal of Huntington's disease by in vivo self-assembled siRNAs

作者信息Li Zhang, Tengteng Wu, Yangyang Shan, Ge Li, Xue Ni, Xiaorui Chen, Xiuting Hu, Lishan Lin, Yongchao Li, Yalun Guan, Jinfeng Gao, Dingbang Chen, Yu Zhang, Zhong Pei, Xi Chen
PMID34918046
期刊Brain
发布时间2021-12-16
DOI10.1093/brain/awab354

实验完整度

包含体外细胞实验、离体模型、三种亨廷顿病小鼠模型的体内治疗评估及安全性验证,涉及多个独立证据层级,并包含功能与机制验证。

主要模型

HEK293T细胞 STHdh-Q7/Q111纹状体神经元祖细胞系 N171-82Q亨廷顿病小鼠模型 BACHD亨廷顿病小鼠模型 YAC128亨廷顿病小鼠模型

重点核对

遗传电路(CMV-RVG-siRmHTT)的设计与构建 尾静脉注射剂量:5 mg/kg 注射频率和持续时间:N171-82Q和BACHD小鼠每2天一次共7次(2周),YAC128小鼠每周两次共16次(8周) mHTT mRNA和蛋白水平的定量检测方法(RT-qPCR和Western blot) 行为学测试(转棒实验)和神经病理学评估(免疫荧光)

摘要

亨廷顿病是一种常染色体显性遗传性神经退行性疾病,由亨廷顿(HTT)基因外显子1中的CAG扩增引起。由于突变型亨廷顿蛋白(mHTT)是亨廷顿病的根本原因,基于寡核苷酸的治疗方法,如设计用于特异性沉默mHTT的小干扰RNA(siRNA)和反义寡核苷酸,可能是亨廷顿病的新型治疗策略。不幸的是,缺乏有效的体内递送系统仍然是实现寡核苷酸疗法全部潜力的主要障碍,尤其是在将寡核苷酸递送到亨廷顿病中最严重受累的脑区——皮层和纹状体方面。在本研究中,我们提出了一种合成生物学策略,将天然存在的外泌体循环系统与人工遗传电路相结合,用于mHTT沉默siRNA的自组装和递送到皮层和纹状体。我们设计了一个巨细胞病毒启动子指导的遗传电路,编码神经元靶向的狂犬病病毒糖蛋白标签和mHTT siRNA。在静脉注射后被小鼠肝脏摄取后,该电路能够重新编程肝细胞,将mHTT siRNA转录并自组装成狂犬病病毒糖蛋白标记的外泌体。mHTT siRNA进一步通过外泌体循环系统递送,并由狂犬病病毒糖蛋白标签引导至皮层和纹状体。因此,在三种亨廷顿病小鼠模型中,用该电路治疗后,皮层和纹状体中mHTT蛋白和毒性聚集体的水平成功降低,从而改善了行为缺陷以及纹状体和皮层神经病理学。总的来说,我们的研究结果建立了一种方便、有效且安全的体内siRNA自组装策略,可能为亨廷顿病提供显著的治疗益处。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
开发一种能够将mHTT siRNA自组装并递送到亨廷顿病主要受累脑区(皮层和纹状体)的体内递送策略,以验证其对亨廷顿病的治疗潜力。
核心机制
通过静脉注射编码RVG-Lamp2b融合蛋白和mHTT siRNA的遗传电路,肝脏被重编程以产生携带mHTT siRNA的RVG标记外泌体,这些外泌体通过循环系统穿过血脑屏障,将siRNA递送至皮层和纹状体,从而沉默mHTT基因表达,减少mHTT蛋白和有毒聚集体的形成。
主要证据
在三种亨廷顿病小鼠模型(N171-82Q、BACHD和YAC128)中,静脉注射CMV-RVG-siRmHTT电路后,皮层和纹状体中mHTT蛋白和mRNA水平显著降低,有毒聚集体减少,行为缺陷(转棒实验)和神经病理学得到改善;体外和离体实验也证实了基因电路的功能和机制。
研究意义
本研究建立了一种方便、有效且安全的体内siRNA自组装策略,克服了当前siRNA递送的主要障碍,可能为亨廷顿病提供显著的治疗益处,并可能为其他神经退行性疾病的治疗提供新的平台。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

遗传电路的设计与构建

构建同时编码mHTT siRNA和RVG-Lamp2b融合蛋白的遗传电路,以实现在体内自组装并靶向递送siRNA。

设计并构建了CMV-siRmHTT和CMV-RVG-siRmHTT电路,将mHTT siRNA插入pre-miR-155骨架,RVG-Lamp2b融合蛋白克隆至CMV启动子下游,并以表达scrambled RNA的电路作为阴性对照。

2

体外验证遗传电路的沉默效率

验证遗传电路在细胞水平能否有效沉默mHTT表达并减少蛋白聚集。

将遗传电路转染至稳定表达mHTT-Q66-FLAG的HEK293T细胞和STHdh-Q111细胞,检测mHTT mRNA和蛋白水平,并通过荧光显微镜观察聚集点。

3

离体模型验证自组装siRNA的功能

验证尾静脉注射遗传电路后,肝脏能否产生携带mHTT siRNA的功能性外泌体,并递送至受体细胞。

向C57BL/6J小鼠尾静脉注射遗传电路(7次),纯化血浆外泌体,与HEK293T细胞或STHdh-Q111细胞共培养,检测mHTT沉默效果。

4

体内递送和靶向性验证

验证RVG标签是否能引导携带siRNA的外泌体穿过血脑屏障递送至皮层和纹状体。

向C57BL/6J小鼠和GFP转基因小鼠注射电路,检测mHTT siRNA在皮层和纹状体的积累,并通过GFP荧光成像评估siRNA功能。

5

亨廷顿病小鼠模型的治疗效果评估

评估CMV-RVG-siRmHTT电路在三种亨廷顿病小鼠模型中的治疗潜力。

对N171-82Q、BACHD和YAC128小鼠进行尾静脉注射,通过转棒实验评估行为,Western blot和RT-qPCR检测mHTT水平,免疫荧光评估神经病理。

6

安全性和毒性评估

评估重复静脉注射遗传电路在体内的安全性。

C57BL/6J小鼠注射PBS、CMV-scrR、CMV-siRmHTT或CMV-RVG-siRmHTT共7次,检测血清生化指标、血常规,并对主要脏器进行HE染色。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
无内毒素质粒大提试剂盒V2TiangenDP120
杜氏改良Eagle培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素----
脂质体转染试剂2000Invitrogen--
TRIzol试剂Invitrogen--
TaqMan microRNA检测试剂Applied Biosystems--
EvaGreen染料Biotium31000
RIPA裂解液Beyotime--
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物Thermo Scientific78440
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Thermo Scientific--
增强化学发光底物Thermo Fisher46640
抗HTT抗体MilliporeMAB2166
抗多聚谷氨酰胺抗体MilliporeMAB1574
抗DDDDK标签抗体Abcamab1162
抗α-微管蛋白抗体Abcamab18251
抗GFP抗体Abcamab290
抗TSG101抗体Abcamab125011
抗CD63抗体Abcamab217345
抗CD9抗体Abcamab92726
山羊抗小鼠IgG H&L HRPAbcamab205719
山羊抗兔IgG H&L HRPAbcamab205718
血浆外泌体分离试剂盒Invitrogen4484450
PKH26Sigma--
透射电子显微镜HitachiHT7700
NanoSight NS 300系统NanoSight Technology--
转棒仪TECHMANZB-200
全自动生化分析仪Hitachi7100
全自动血细胞分析仪ADVIA2120i
抗EM48抗体MilliporeMAB5374
抗NeuN抗体MilliporeMAB377
抗兔IgG (H+L),Alexa Fluor 555CST4413
抗小鼠IgG (H+L),Alexa Fluor 488CST4408
Alexa Fluor 594Life TechnologiesA11042
尼康TI-SH-J共聚焦显微镜Nikon--
徕卡TCS SP8-MaiTai MP共聚焦显微镜Leica--
显微镜相机NikonDS-Ri2

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
遗传电路构建
CMV启动子、mHTT siRNA序列、RVG-Lamp2b融合蛋白的序列信息(见补充表1)
阅读提示:Materials and methods: Construction of the genetic circuits targeting mHTT; Supplementary Table 1
细胞培养
HEK293T、STHdh-Q7/Q111的培养基、血清浓度、培养温度、CO2浓度
阅读提示:Materials and methods: Cell culture
体外转染
转染试剂(Lipofectamine 2000)用量、转染后收获时间(48 h)
阅读提示:Materials and methods: In vitro transfection of the genetic circuits
体内注射
小鼠品系、周龄、注射剂量(5 mg/kg)、注射方式(尾静脉)、注射体积(200 μl)、注射频率和次数
阅读提示:Materials and methods: In vivo injection of the genetic circuits; 各动物模型部分
mHTT表达检测
RT-qPCR的引物序列、Western blot的抗体稀释比例、蛋白上样量(60 μg)
阅读提示:Materials and methods: RNA extraction and quantitative RT-PCR assay; Western blotting; Supplementary Table 2
外泌体分析
血浆外泌体分离步骤、TEM和NTA的操作参数
阅读提示:Materials and methods: Analysis of exosomes
行为学测试
转棒设备的加速范围(5-40 rpm,5 min)、训练方案、测试次数和间隔
阅读提示:Materials and methods: Evaluation of the therapeutic effects...; Rotarod test description