VPS35突变通过增加LRRK2激酶活性抑制PINK1/parkin介导的线粒体自噬

VPS35 mutation inhibits PINK1/parkin-mediated mitophagy via increased LRRK2 kinase activity

作者信息Liselot Manders, Thibaut Heyninck, Dorien Imberechts, Bjørn Holst, Rejko Krüger, Wim Vandenberghe
PMID41164908
期刊Brain
发布时间2026-07-07
DOI10.1093/brain/awaf414

实验完整度

包含患者成纤维细胞、iPSC来源神经元、同基因对照、基因校正、siRNA敲低、药物抑制、过表达挽救及原位邻近连接等多层级功能与机制验证。

主要模型

患者皮肤成纤维细胞 诱导多能干细胞来源的多巴胺能神经元 同基因对照iPSC系

重点核对

VPS35突变患者成纤维细胞和神经元中线粒体自噬受损,验证浓度:1 µM缬氨霉素处理48小时(成纤维细胞)或24小时(神经元) LRRK2激酶抑制剂MLi-2(150 nM)和PF-06447475(0.5 µM)预处理24小时 VPS35 siRNA敲低或PPM1H过表达后检测线粒体自噬水平 RAB10 T73磷酸化水平检测LRRK2激酶活性 原位邻近连接实验检测VPS35与LRRK2的邻近性

摘要

VPS35中的p.D620N突变通过目前尚不完全清楚的机制导致常染色体显性遗传性帕金森病。PINK1和parkin是两个功能缺失导致常染色体隐性遗传性帕金森病的蛋白,它们协同介导线粒体自噬,这是一种选择性清除受损线粒体的质量控制途径。PINK1/parkin介导的线粒体自噬被LRRK2突变破坏,LRRK2突变是常染色体显性遗传性帕金森病最常见的病因。 在这里,我们研究了p.D620N VPS35突变是否对PINK1/parkin介导的线粒体自噬有影响。我们鉴定了一个新的由p.D620N VPS35突变引起的常染色体显性遗传性帕金森病家系。我们培养了来自先证者和另一位患有p.D620N VPS35突变的不相关的帕金森病患者的皮肤成纤维细胞和诱导多能干细胞来源的多巴胺能神经元,并将它们与同基因型和非同基因型对照细胞进行比较。 PINK1/parkin介导的线粒体自噬在VPS35突变体成纤维细胞和神经元中严重受损,而非选择性的、饥饿诱导的自噬和溶酶体降解能力得以保留。siRNA介导的VPS35敲低挽救了VPS35突变体细胞中的线粒体自噬缺陷,而野生型VPS35的过表达则没有,提示该突变的功能获得机制。VPS35突变不干扰线粒体去极化后PINK1或parkin的激活,但损害了自噬受体optineurin的线粒体招募。VPS35突变体细胞中LRRK2激酶活性增加,如LRRK2底物RAB10的T73磷酸化形式水平升高所示。VPS35突变体细胞中磷酸化RAB10的水平升高通过LRRK2激酶抑制剂和VPS35敲低处理而降低。重要的是,VPS35突变体成纤维细胞和神经元的线粒体自噬缺陷被LRRK2激酶抑制剂以及PPM1H(一种使LRRK2的多个RAB底物去磷酸化的磷酸酶)的过表达完全挽救。最后,原位邻近连接实验表明,内源性VPS35和LRRK2是人多巴胺能神经元中的邻近伙伴,且这种邻近关系因VPS35突变而增强。 总之,VPS35突变通过涉及刺激LRRK2激酶活性的功能获得机制损害PINK1/parkin介导的线粒体自噬。因此,与显性帕金森病相关的VPS35/LRRK2轴与由隐性帕金森病基因编码的蛋白质介导的途径相交汇。 关键词:帕金森病,自噬,线粒体,溶酶体,诱导多能干细胞,RAB

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
VPS35 p.D620N突变是否影响PINK1/parkin介导的线粒体自噬,以及其机制是否涉及LRRK2激酶活性。
核心机制
VPS35突变通过功能获得机制刺激LRRK2激酶活性,增加RAB蛋白磷酸化,损害optineurin向去极化线粒体的招募,从而抑制PINK1/parkin介导的线粒体自噬。
主要证据
在患者成纤维细胞和iPSC来源多巴胺能神经元中,线粒体自噬受损;VPS35敲低或LRRK2激酶抑制剂可挽救;PPM1H过表达完全恢复线粒体自噬;PLA证实VPS35与LRRK2邻近且增强。
研究意义
揭示了VPS35/LRRK2轴与隐性帕金森病基因介导的线粒体自噬通路在常染色体显性帕金森病中的交叉,为理解帕金森病发病机制提供了新视角,并为治疗干预提供了潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

遗传学与临床特征分析

鉴定VPS35突变家系并确认患者表型。

对先证者进行临床评估、遗传分析(Sanger测序)和PET成像,确认p.D620N VPS35突变及帕金森病诊断。

2

细胞模型建立与质量控制

建立来自患者的成纤维细胞和iPSC来源多巴胺能神经元模型,并确认其特性。

从患者皮肤活检获得成纤维细胞,重编程为iPSC,并进行基因校正生成同基因对照,然后分化多巴胺能神经元。

3

线粒体自噬功能检测

评估VPS35突变对PINK1/parkin介导的线粒体自噬的影响。

使用mito-Keima荧光报告基因、HSP60清除及MFN2泛素化实验检测线粒体自噬水平。

4

PINK1/parkin通路步骤分析

确定VPS35突变影响线粒体自噬通路的哪个具体环节。

检测PINK1积累、parkin激活(MFN2泛素化)、optineurin招募。

5

自噬与溶酶体功能检测

排除VPS35突变对非选择性自噬和溶酶体功能的非特异影响。

检测自噬流(LC3-II水平、Keima荧光)和溶酶体降解能力(DQ-BSA)。

6

VPS35功能获得/缺失验证

确定VPS35突变的作用机制是功能获得还是功能缺失。

通过VPS35 siRNA敲低和野生型VPS35过表达,检测线粒体自噬是否恢复。

7

LRRK2激酶活性检测与调控

验证VPS35突变是否通过影响LRRK2激酶活性介导线粒体自噬缺陷。

检测p-RAB10水平,并测试LRRK2激酶抑制剂和PPM1H过表达对线粒体自噬的挽救作用。

8

VPS35与LRRK2邻近性分析

检测VPS35与LRRK2在细胞内的邻近性是否受突变影响。

使用原位邻近连接实验(PLA)检测内源性VPS35与LRRK2的邻近性,并用阴性对照确保特异性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
Earle平衡盐溶液SigmaE2888
缬氨霉素SigmaV3639
寡霉素Sigma495455
巴佛洛霉素A1Abcamab120497
MLi-2Tocris5756
PF-06447475Tocris5716
Neon转染系统InvitrogenMPK1096
Neon NxT电转化系统InvitrogenNEON1S
Leica TCS SP5 II共聚焦显微镜Leica--
Leica TCS SP8共聚焦显微镜Leica--
Nikon TiE A1R共聚焦显微镜Nikon--
BD Accuri C6流式细胞仪BD Biosciences--
ImageJ----
GraphPad Prism 9GraphPad Software, Inc.--
Bio-Rad蛋白定量试剂盒Bio-Rad--
HSP60抗体Abcamab53109
PINK1抗体Novus BiologicalsBC100-494
MFN2抗体Abcamab56889
泛素抗体Santa Cruzsc-8017
磷酸化泛素(Ser65)抗体SigmaABS1513-I
RAB10抗体Cell Signaling Technology8127S
磷酸化RAB10(Thr73)抗体Abcamab230261
VPS35抗体Abcamab157220
LC3B抗体Novus BiologicalsNB100-2220
ATP5F1B抗体Abcamab14730
optineurin抗体Invitrogen711879
酪氨酸羟化酶抗体SigmaAB152
MAP2抗体SigmaM1406
LAMP1抗体BD Biosciences555798
VPS35抗体(小鼠)Abcamab57632
LRRK2抗体(兔, ab133518)Abcamab133518
LRRK2抗体(兔, ab133476)Abcamab133476
Epi5附加体iPSC重编程试剂盒Thermo FisherA15960
仙台病毒----
Alt-R S.p. HiFi Cas9核酸酶V3IDT1081061
BstBI限制性内切酶----
Foxp3/转录因子染色缓冲液套装eBioscience00-5523-00
细胞内固定和透化缓冲液套装eBioscience88-8824-00
AmpFLSTR Identifiler PCR扩增试剂盒Applied Biosystems--
HaloPlex HS panelAgilent--
SALSA MLPA P051-D1MRC Holland--
MiSeq平台Illumina--
多聚-D-赖氨酸SigmaP6407
TOTO-3碘化物Thermo FisherT3604
Vectashield封片剂Vector LaboratoriesH-1000-10
Prolong Glass抗淬灭封片剂Thermo FisherP36982
DQ-Red BSAInvitrogenD12051
LysoTracker GreenInvitrogenL7526
pCMV6-AC-GFP载体OrigeneRG210597
pCMV6-AC-GFP载体(PPM1H)OrigeneRG217548
pLenti-C-mGFP慢病毒颗粒OrigeneRC217548L2V
pLenti-C-mGFP-P2A-Puro慢病毒颗粒(VPS35)OrigeneRC210597L4V
pLenti-C-mGFP-P2A-Puro慢病毒对照颗粒OrigenePS100093V
VPS35 siRNA1Horizon DiscoveryL-010894-00-0005
VPS35 siRNA2QiagenSI04279296
对照siRNAQiagen1027417
mito-Keima构建体Dr. A. Miyawaki--
Keima构建体Addgene54597
optineurin-EGFPAddgene27052
Triton X-100Sigma93443
蛋白酶抑制剂Thermo Fisher78430
磷酸酶抑制剂Thermo Fisher78420
Duolink原位红色检测试剂盒(小鼠/兔)SigmaDUO 92101
iCS-digital PSCStem Genomics--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞来源与培养
患者成纤维细胞和iPSC来源神经元来自2名VPS35 D620N患者和健康对照,成纤维细胞代次4-14,培养基成分需按原文献
阅读提示:Materials and methods: Skin-derived fibroblasts, iPSC generation
线粒体自噬检测
缬氨霉素浓度1 µM,处理时间48小时(成纤维细胞)或24小时(神经元);mito-Keima成像参数(458nm/543nm激发,600-695nm发射)
阅读提示:Materials and methods: Mito-Keima imaging; Figure 2 legend, Figure 3 legend
PINK1/parkin激活检测
PINK1积累和磷酸化泛素检测时间点(0-3小时);MFN2泛素化实验条件(缬氨霉素3小时)
阅读提示:Materials and methods: Western blot; Figure 4 legend
optineurin招募
GFP-OPTN或内源性OPTN与ATP5F1B共定位,缬氨霉素处理6小时,至少50个细胞(成纤维细胞)或25个TH阳性细胞(神经元)
阅读提示:Materials and methods: Immunocytochemistry; Figure 4 legend
LRRK2激酶活性调控
LRRK2激酶抑制剂MLi-2(150 nM)或PF-06447475(0.5 µM)预处理24小时;PPM1H过表达;p-RAB10检测条件
阅读提示:Materials and methods: LRRK2 inhibitor treatment; Figure 7 legend
基因功能验证
VPS35 siRNA敲低效率(两种siRNA浓度20 nM,72小时);野生型VPS35过表达载体和转染效率
阅读提示:Materials and methods: cDNA, siRNAs and lentivirus; Figure 6 legend
邻近连接实验
PLA步骤(Duolink试剂盒);抗VPS35和抗LRRK2抗体浓度;分析时以TH阳性面积标准化
阅读提示:Materials and methods: Proximity ligation assay; Figure 8 legend