在三维微环境中诱导男性新配子发生,支持成功受精和正常胚胎发育

Induction of male neogametogenesis in a three-dimensional microenvironment supporting successful fertilization and proper embryo development

作者信息Eros Lari, Lily Ng, Philip Xie, Stephanie Cheung, Sabrina Bains, Zev Rosenwaks, Gianpiero D Palermo
PMID42244126
发布时间2026-07-07
DOI10.1093/molehr/gaag036

实验完整度

高

研究包含体外培养、细胞功能验证、胚胎发育评估及活体后代产生,并通过免疫荧光、FISH和NGS进行多层级验证。

主要模型

小鼠胚胎干细胞(C57BL/6 mESC) 钙藻酸盐三维微球培养体系 B6D2F1小鼠卵母细胞 假孕CD-1小鼠(胚胎移植受体)

重点核对

细胞来源:C57BL/6小鼠胚胎干细胞(ATCC) 培养条件:钙藻酸盐微球,EpiLC培养基处理3天,PGCLC培养基持续培养 分化时间点:D22、D29、D32、D36 显微注射:piezo-ICSI,使用钙离子载体激活 胚胎评估:延时显微镜监测,形态动力学分析,NGS染色体分析

摘要

在再生医学中,已经尝试利用三维(3D)培养系统从小鼠胚胎干细胞中产生功能性从头配子。我们试图在一个新颖的3D微环境中进行新配子发生,以产生可用于受精的新配子。小鼠胚胎干细胞首先在明胶包被的6孔板上与成纤维细胞单层共培养,然后包封在藻酸钠微球中。随后将这些微球浸泡在特制的上胚层样细胞和原始生殖细胞样细胞培养基中,以促进分化为生殖样细胞。在分化过程中,免疫荧光分析显示精子发生标志物的一致表达模式。评估了DAZL(早期生殖细胞标志物)、VASA(精母细胞)、BOULE(减数分裂后)和顶体蛋白(精子细胞)的表达。然后将分化细胞注射到卵母细胞中,并通过钙离子载体激活。通过延时显微镜监测胚胎发育。在第22、29和36天的微球化新配子的受精率分别为61.1%、82.7%和80.0%,囊胚形成率分别为20.5%、36.0%和26.3%。对照组受精率为89.1%,囊胚形成率为76.3%。考虑胚胎动力学时,D29胚胎在64小时达到压实,77小时达到囊胚形成,与对照的63小时和77小时非常接近。D22胚胎的胚胎发育延迟最明显,压实发生在68小时,囊胚形成发生在106小时。尽管受精正常且囊胚形成成功,但效率仍然低于最佳水平。尽管如此,我们的系统能够产生可存活的后代,表明复制3D生精小管环境对于生成人工配子至关重要。这消除了在实验动物中进行同种/异种移植的需要。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否利用小鼠胚胎干细胞在三维微环境中诱导产生功能性雄性配子,并支持受精和胚胎发育?
核心机制
三维微环境模拟生精小管结构,通过细胞外基质包裹和特定生长因子组合,促进胚胎干细胞依次经历生殖细胞分化标志物的表达,实现减数分裂产生单倍体细胞。
主要证据
免疫荧光检测到DAZL、VASA、BOULE、acrosin等精子发生标志物的阶段性表达;FISH显示D29时80.6%的细胞为单倍体;将这些细胞注入卵母细胞后获得受精卵和囊胚,并产生后代。
研究意义
该三维培养系统能够完全在体外产生功能性雄性配子,避免了异体/异种移植,为男性不育的治疗提供了潜在的新方法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

小鼠胚胎干细胞的培养和微球制备

建立稳定的三维培养环境,模拟生精小管结构,支持干细胞生长和分化。

将C57BL/6小鼠胚胎干细胞培养在明胶包被的6孔板上,与小鼠胚胎成纤维细胞共培养。然后将细胞与藻酸钠混合,滴入氯化钙溶液中形成钙藻酸盐微球。

2

体外分化诱导

在微球内诱导胚胎干细胞分化为生殖细胞样细胞。

微球依次在EpiLC培养基和PGCLC培养基中培养,通过添加Activin A、bFGF、BMP4、SCF、EGF和视黄酸等因子促进分化。

3

分化细胞鉴定

验证分化细胞是否表达精子发生相关标志物并完成减数分裂。

在分化不同时间点(D0、D3、D10、D15、D22、D29、D36)提取细胞,通过免疫荧光检测DAZL、VASA、BOULE、acrosin表达,通过FISH分析染色体倍性。

4

卵母细胞注射和胚胎发育评估

测试分化细胞是否具有受精能力和支持胚胎发育的能力。

将分化细胞(来自D22、D29、D32、D36微球)通过piezo-ICSI注入B6D2F1小鼠卵母细胞,用钙离子载体激活,通过延时显微镜监测胚胎发育。

5

胚胎倍性分析

评估产生的胚胎是否存在染色体异常。

对部分8细胞期胚胎进行滋养层活检,使用SurePlex DNA扩增试剂盒进行全基因组扩增,并通过NGS分析染色体拷贝数。

6

胚胎移植和后代产生

验证这些配子产生的胚胎能否发育为活后代。

将孵化囊胚移植到2.5天假孕CD-1受体小鼠子宫角中,监测妊娠并允许自然分娩。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证机制链路
评估体内效果
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜氏改良鹰培养基Corning--
胎牛血清ATCC--
青霉素-链霉素Thermo Fisher--
ESGRO®重组小鼠LIF蛋白Sigma-Aldrich--
藻酸钠Modernist Pantry--
氯化钙Modernist Pantry--
重组人激活素AThermo Fisher--
碱性成纤维细胞生长因子Thermo Fisher--
KnockOut™血清替代物Thermo Fisher--
MEM非必需氨基酸Thermo Fisher--
L-谷氨酰胺----
小鼠BMP-4重组蛋白Thermo Fisher--
小鼠SCF重组蛋白Thermo Fisher--
小鼠EGF重组蛋白Thermo Fisher--
视黄酸Sigma-Aldrich--
胰蛋白酶-EDTA 0.25%Gibco--
DAZL抗体Abcamab34139
DDX4 (VASA) 抗体Abcamab13840
BOULE抗体Abcamab155027
顶体素抗体Abcamab203289
Alexa Fluor二抗Abcamab150077
DAPI防淬灭剂Sigma-Aldrich--
荧光原位杂交探针Empire Genomics--
孕马血清促性腺激素/抑制素超排卵试剂(CARD HyperOva®)Cosmo Bio--
人绒毛膜促性腺激素Sigma-Aldrich--
透明质酸酶(Cumulase)Origio, CooperSurgical--
钾简化优化培养基Cosmo Bio--
人输卵管液培养基Cosmo Bio--
FluorinertSigma-Aldrich--
G-TL培养基Vitrolife--
G-1培养基Vitrolife--
胚胎培养玻片Vitrolife--
延时显微镜Vitrolife--
SurePlex DNA扩增试剂盒Illumina--
G*Power软件Heinrich-Heine-Universität Düsseldorf--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源(C57BL/6 mESC, ATCC)、饲养层细胞(辐照mEF)、培养基成分(FBS浓度、LIF浓度、2-巯基乙醇浓度)、培养密度
阅读提示:Methods: Mouse embryonic stem cell propagation
微球制备
藻酸钠浓度、氯化钙浓度、细胞与藻酸钠比例、微球大小、初始细胞密度
阅读提示:Methods: mESC spherification, Supplementary Fig. S1
分化诱导
EpiLC培养基成分和培养时间(3天)、PGCLC培养基成分(BMP4、SCF、EGF、视黄酸等浓度)、培养时长、换液频率
阅读提示:Methods: Cell differentiation in spheres
细胞鉴定
免疫荧光抗体(DAZL、VASA、BOULE、acrosin)稀释度和孵育条件、FISH探针和杂交条件、视野计数阈值
阅读提示:Methods: Cell characterization, Cytogenetics
卵母细胞注射
卵母细胞来源(B6D2F1)、超排卵方案、piezo-ICSI参数、钙离子载体浓度和处理时间
阅读提示:Methods: Gamete preparation, Intracytoplasmic cell injection
胚胎评估
胚胎培养条件(G-TL/G-1培养基)、延时显微镜参数、形态动力学评估时间点
阅读提示:Methods: Intracytoplasmic cell injection, Results: Conceptus morphokinetic characteristics
胚胎移植
受体小鼠品系(CD-1)、假孕时间(2.5 dpc)、移植胚胎数量、手术操作细节
阅读提示:Methods: Embryo transfer and pregnancy assessment