冷冻三次:新鲜和玻璃化-升温小鼠胚胎的活力与移植后结局

Once, twice, three times frozen: viability and post-transfer outcomes of fresh and vitrified-warmed mouse embryos

作者信息Tong Li, Darren J X Chow, Shan Li, Ryan D Rose, Tiffany C Y Tan, Kylie R Dunning
PMID42035726
发布时间2026-07-01
DOI10.1093/humrep/deag065

实验完整度

高

包含体外胚胎培养、玻璃化-升温处理、免疫组化细胞计数、胚胎移植及胎儿胎盘结局分析等多项实验,且有新鲜对照组和多个独立重复。

主要模型

小鼠囊胚 假孕小鼠

重点核对

小鼠品系:CBA × C57BL/6 F1 (CBAF1) 雌性 胚胎培养条件:37°C,5% O2,6% CO2 玻璃化-升温循环次数:0, 1, 2, 3次 胚胎移植时间:Day 2.5 post-coitum,6-10个胚胎/子宫角 结局评估时间:Day 18.5 post-coitum

摘要

研究问题:一次、两次或三次玻璃化-升温循环对胚胎活力、着床潜力和移植后发育的影响与新鲜移植相比如何? 总结答案:重复的玻璃化-升温循环在两次或更多次循环后逐渐损害胚胎冷冻存活、囊胚质量和胎儿生长。 已有认识:冷冻保存在胚胎储存和植入前遗传学检测中至关重要,在等待结果时胚胎被活检并冷冻。然而,由于活检效应、既往着床失败、缺乏真正的非冷冻对照组以及与过度生理性激素暴露混杂的新鲜移植比较,重复玻璃化-升温循环的影响仍不清楚。 研究设计、规模、持续时间:为克服临床研究的限制,本研究使用小鼠作为受控的临床前模型。这样可以精确控制冷冻保存时的胚胎阶段和玻璃化方案,并能与未经玻璃化的(新鲜)对照组直接比较,避免了超生理激素暴露或活检的混杂效应。虽然认识到物种差异,但该模型能够集中评估冷冻保存特异性效应。结局包括升温后存活率、细胞谱系分配,以及胚胎移植后第18.5天的结局(妊娠率和着床率、胎儿和胎盘重量)。在一次、两次或三次冷冻-升温循环后评估升温后存活率(分别为3035、1465和447个囊胚;23个独立实验重复)。在一次、两次或三次冷冻-升温循环后定量内细胞团(ICM)和滋养外胚层(TE)细胞数,并与新鲜(未玻璃化)对照比较(分别为35、36、33和28个囊胚;四个独立实验重复)。在一次、两次或三次冷冻-升温循环后评估移植后结局,并与新鲜(未玻璃化)对照比较(分别为30、33、39和22只假孕受体)。进行了样本量计算以确保研究具有适当的检验效能。 参与者/材料、设置、方法:通过体外受精生成小鼠胚胎并培养至囊胚阶段,并进行零次(新鲜)、一次、两次或三次重复的玻璃化-升温循环。通过形态学评估升温后存活率,并使用OCT-3/4(ICM)和CDX2(TE)的免疫组织化学评估细胞谱系分配。使用胚胎移植进一步评估发育能力,在第18.5天测量妊娠率、着床结局(着床率、可活着床率、吸收率)、胎儿和胎盘结局(胎儿重量、胎盘重量以及胎儿-胎盘重量比)。 主要结果和机会的作用:胚胎冷冻存活率随冷冻-升温循环次数的增加而显著下降,两次或三次循环后与一次循环相比显著降低(P<0.05),三次循环后非存活胚胎比例显著增加(P<0.001)。与新鲜胚胎相比,两次或三次循环后ICM细胞数显著减少(P<0.0001),而两次循环后TE细胞数增加(P<0.05)。与新鲜相比,一次、两次或三次循环后ICM:TE比率显著降低(P<0.01)。胚胎移植后,所有冷冻-升温组的妊娠率均低于新鲜对照组,尽管这些差异无统计学意义。与新鲜移植相比,一次循环后妊娠的相对风险为0.74(95% CI 0.34–1.64),两次循环后为0.75(95% CI 0.35–1.62),三次循环后为0.59(95% CI 0.27–1.32)。着床率和可活着床率显示类似的非显著降低,而两次或三次冷冻-升温循环后吸收率数值升高。与新鲜组相比,两次和三次循环后胎儿重量显著降低(P=0.037和P=0.012),胎盘重量有非显著的增加趋势,胎儿-胎盘重量比在两次和三次循环后显著降低(P=0.009和P=0.002)。虽然冷冻存活率、ICM细胞数和胎儿结局显示出明确的统计学效应,但非显著的妊娠率、着床率和吸收率指标表明,机会可能部分解释了移植后变异性。 大规模数据:不适用。 局限性、注意事项:该研究使用了小鼠模型,尽管操作流程反映了临床实践,但物种差异意味着需要进一步的机制和转化研究来评估与人类生殖的相关性。此外,该研究仅关注囊胚期胚胎,限制了研究结果对其他发育阶段的适用性。未单独研究冷冻保护剂暴露的影响。 研究结果的更广泛意义:这些发现提供了重复胚胎玻璃化-升温累积效应的定量证据,可能有助于优化冷冻保存方案,限制不必要的再冷冻,并支持完善临床指南以改善体外受精中胚胎活力和胎儿结局。 研究资助/利益冲突:K.R.D.由澳大利亚研究委员会未来奖学金(阿德莱德大学,FT240100291)支持。作者声明不存在利益冲突。 试验注册号:不适用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
重复玻璃化-升温循环对胚胎活力、着床潜力和移植后发育的影响是否随循环次数增加而加剧?
核心机制
重复玻璃化-升温循环导致ICM细胞数减少和ICM:TE比降低,可能反映ICM对累积冷冻损伤的脆弱性增加,进而影响胎儿发育。
主要证据
免疫组化显示两次或三次循环后ICM细胞数显著减少,胚胎移植后两次或三次循环组胎儿重量和胎儿-胎盘重量比显著降低。
研究意义
研究结果提供了量化证据,可能有助于优化冷冻保存方案、减少不必要的再冷冻,并为临床指南的完善提供参考。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

胚胎生成与培养

获得标准化的囊胚期胚胎以用于实验分组。

小鼠IVF产生胚胎,培养至囊胚期,期间维持特定气体环境和温度。

2

玻璃化-升温处理

模拟临床上重复冷冻-升温循环,评估其对胚胎存活率和细胞谱系的影响。

将囊胚分为新鲜对照组和1、2、3次冷冻-升温组,使用Cryologic方法进行玻璃化和升温,升温后评估存活率。

3

免疫组化分析细胞谱系

定量内细胞团(ICM)和滋养外胚层(TE)细胞数量,评估冷冻-升温对细胞谱系分配的影响。

固定胚胎,使用OCT-3/4和CDX2抗体染色,共聚焦显微镜成像,手动计数细胞。

4

胚胎移植

评估冷冻-升温胚胎的发育能力,包括着床和胎儿发育。

将各组胚胎移植到假孕瑞士小鼠子宫角,在第18.5天评估妊娠、着床、吸收率及胎儿和胎盘重量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
评估体内效果

产品清单

实验环节名称品牌货号
Research Wash培养基ART Lab Solutions--
Research Fertilization培养基ART Lab Solutions--
Research Cleave培养基ART Lab Solutions--
马绒毛膜促性腺激素Folligon, Pacific Vet Pty Ltd.--
人绒毛膜促性腺激素Pregnyl, Merck--
无脂肪酸牛血清白蛋白MP Biomedicals--
石蜡油Merck Group--
乙二醇----
二甲基亚砜----
蔗糖----
Cryologic纤维塞Cryologic Pty Ltd.--
抗OCT-3/4小鼠抗体Santa Cruz Biotech--
重组抗CDX2抗体Abcam--
抗小鼠Alexa Fluor 488偶联二抗Thermo Fisher Scientific--
抗兔Alexa Fluor 594偶联二抗Life Technologies--
Triton X-100----
Tween-20----
山羊血清----
IbiTreat 35mm玻璃底培养皿Ibidi--
奥林巴斯FV10i共聚焦激光扫描显微镜Olympus--
GraphPad PrismGraphPad Holdings LLC--
IBM SPSS统计软件IBM--
G*PowerHeinrich Heine University Düsseldorf--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
胚胎生成与培养
小鼠品系、年龄,激素剂量,IVF后培养时间,培养条件
阅读提示:Materials and methods: Isolation of gametes, in vitro fertilization, and embryo culture
玻璃化-升温处理
循环次数,平衡液和玻璃化液成分及时间,升温蔗糖梯度及时间,恢复时间,存活标准
阅读提示:Materials and methods: Embryo vitrification and warming
免疫组化
一抗和二抗稀释度,孵育时间,固定、透化、封闭条件,显微镜设置
阅读提示:Materials and methods: Immunohistochemistry
胚胎移植
假孕受体品系和交配方式,移植时间,每子宫角胚胎数,麻醉方案,结局评估时间
阅读提示:Materials and methods: Embryo transfers