临床病理特征比较分析
比较SRCC与AC患者的临床病理特征,评估其侵袭性和预后差异。
回顾性收集37例SRCC和172例AC患者的临床病理数据,包括年龄、性别、肿瘤大小、TNM分期、肿瘤分级、神经血管浸润、CEA和CA19-9水平、MSI状态和TMB,并比较3年DFS和OS。
Clinicopathologic, genetic and immune cell infiltration analysis of colorectal signet ring cell carcinoma with comparison to conventional adenocarcinoma
研究包含回顾性临床病理分析、DNA NGS遗传分析和多重免疫组化免疫分析,但未进行功能实验或机制验证,主要基于相关性分析。
结直肠印戒细胞癌(SRCC)患者组织样本(n=37) 经典型腺癌(AC)患者组织样本(n=172)
样本来源:北京协和医院2012-2023年直肠和乙状结肠SRCC患者(n=37)及同期AC患者(n=172) NGS检测:使用520基因或1021基因panel进行靶向测序 免疫组化:使用PANO 7-plex IHC试剂盒检测PD-1、PD-L1、CD3、CD8、CD68、CD163、CD56等标志物 生存分析:基于Kaplan-Meier曲线和log-rank检验,比较SRCC(n=37)与AC(n=128)的DFS和OS 统计校正:使用倾向性评分匹配(PSM)调整年龄、性别和TNM分期
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
比较SRCC与AC患者的临床病理特征,评估其侵袭性和预后差异。
回顾性收集37例SRCC和172例AC患者的临床病理数据,包括年龄、性别、肿瘤大小、TNM分期、肿瘤分级、神经血管浸润、CEA和CA19-9水平、MSI状态和TMB,并比较3年DFS和OS。
通过NGS检测并比较SRCC与AC的基因突变谱、TMB和MSI状态。
对37例SRCC和172例AC的FFPE组织进行DNA提取,使用520或1021基因panel进行靶向测序,分析基因突变、TMB和MSI状态,并比较两组间的差异。
通过多重免疫组化评估SRCC与AC的免疫细胞浸润模式差异。
对33例SRCC和60例AC的未治疗组织样本进行PANO 7-plex免疫组化染色,检测PD-1、PD-L1、CD3、CD8、CD56、CD68、CD163和Pan-CK的表达,定量分析瘤内和基质区域的免疫细胞比例。
评估免疫细胞浸润水平与SRCC患者预后的关系。
对33例SRCC患者,以免疫细胞浸润比例的中位数为界分为高、低浸润组,使用Kaplan-Meier曲线和log-rank检验比较DFS和OS,并使用Cox回归分析。
探索SRCC和AC中基因突变与免疫细胞浸润之间的相关性。
使用统计方法分析基因突变状态与免疫细胞浸润比例之间的关联,以确定可能影响免疫微环境的遗传因素。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| DNA提取 | QIAamp DNA FFPE组织试剂盒 | Qiagen | -- |
| 靶向测序 | OncoScreen Plus检测 | Burning Rock Biotech | -- |
| 吉因加panel | Geneplus-Beijing | -- | |
| 多重免疫组化 | PANO 7-plex免疫组化试剂盒 | Panovue | 0004100100 |
| 免疫组化 | PD-L1抗体(克隆E1L3N) | CST | CST13684 |
| PD-1抗体(克隆EH33) | CST | CST43248 | |
| CD3抗体(克隆SP7) | Abcam | Ab16669 | |
| CD8抗体(克隆C8/144B) | CST | CST70306 | |
| Pan-CK抗体(克隆C11) | CST | CST4545 | |
| CD68抗体(克隆BP6036) | Biolynx | BX50031 | |
| CD163抗体(克隆D6U1J) | CST | CST93498 | |
| CD56抗体(克隆123C3) | CST | CST3576 | |
| 核染色 | DAPI | Sigma-Aldrich | -- |
| 图像扫描 | 奥林巴斯VS200系统 | Olympus | -- |
| 图像分析 | Mantra系统 | PerkinElmer | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床病理数据收集 | 样本来源:北京协和医院;纳入标准:直肠和乙状结肠SRCC或AC,肿瘤细胞含量≥10%,排除多原发CRC;核对年龄、性别、TNM分期、肿瘤分级、CEA和CA19-9水平 阅读提示:Methods 2.1 研究设计、数据和样本收集 |
| NGS检测 | 使用的基因panel(520或1021基因);DNA提取试剂盒及流程;变异 calling和分析流程;TMB和MSI评估方法 阅读提示:Methods 2.2 大panel DNA测序和数据分析 |
| 多重免疫组化 | 染色面板(Panel 1和Panel 2);抗体克隆和稀释度;TSA信号放大和微波处理条件;图像扫描和分析软件 阅读提示:Methods 2.3 多重免疫组织化学检测及图像分析 |
| 生存分析 | 随访时间;DFS和OS定义;cutoff值选择(中位数);Cox模型中包含的协变量 阅读提示:Methods 2.4 统计和生存分析;图4和图5图注 |