人类队列分析
评估膀胱BCG是否诱导外周血HSPCs及髓系细胞的转录和表观遗传改变。
收集两独立队列(MSKCC n=8,McGill n=13)膀胱癌患者BCG治疗前后PBMC,进行PBMC-PIE富集和单细胞多组学(snRNA-seq和snATAC-seq)。比较治疗前后基因表达和染色质可及性,包括MAST差异表达、chromVAR转录因子活性、模块评分等。
Microbial cancer immunotherapy reprograms hematopoiesis to enhance myeloid-driven anti-tumor immunity
包含人类纵向队列和多个小鼠模型,整合单细胞多组学、功能验证(骨髓移植、细胞耗竭)及机制研究(IFNγ中和等)。
MB49膀胱癌小鼠模型 B16F10黑色素瘤小鼠模型 人类非肌层浸润性膀胱癌患者外周血 骨髓移植嵌合小鼠
人队列:MSKCC n=8,McGill n=13,膀胱BCG治疗前后配对PBMC-PIE分析 小鼠:MB49肿瘤模型,膀胱内BCG(3×10^6 CFU/只)或静脉BCG单次,给药后检测骨髓BCG定植和HSPC变化 骨髓移植:CD45.2供体小鼠(BCG或PBS处理)骨髓或LSK细胞移植至CD45.1受体,至少8周后肿瘤挑战 功能验证:IFNγ中和抗体(BioXCell BE0055)250 μg,TNF阻断抗体(BE0058)200 μg,Ly6G清除抗体(BE00775-1)250 μg,DT清除DC(200 ng) 肿瘤挑战:皮下MB49或B16F10(1×10^5细胞/只),MB49原位植入(5×10^4细胞/只)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估膀胱BCG是否诱导外周血HSPCs及髓系细胞的转录和表观遗传改变。
收集两独立队列(MSKCC n=8,McGill n=13)膀胱癌患者BCG治疗前后PBMC,进行PBMC-PIE富集和单细胞多组学(snRNA-seq和snATAC-seq)。比较治疗前后基因表达和染色质可及性,包括MAST差异表达、chromVAR转录因子活性、模块评分等。
确定膀胱BCG是否能迁移至骨髓并改变HSPC组成和功能。
MB49膀胱癌小鼠接受每周膀胱BCG(3×10^6 CFU/只),5周。检查骨髓BCG培养和PCR。流式分析HSPC亚群,菌落形成实验。对来自膀胱PBS或BCG处理小鼠的骨髓进行单核多组学(snMulti-ome)和ATAC-seq。检测血清细胞因子。
验证BCG重编程的HSPCs是否足以外导抗肿瘤效应。
从BCG或PBS处理的供体小鼠(CD45.2)中分选LSK或全骨髓,移植到经致死辐照的CD45.1受体。LSK细胞体外扩增两周(含polyvinyl alcohol培养基)。受体小鼠挑战皮下MB49或B16F10肿瘤,监测肿瘤生长。部分实验使用混合骨髓移植以区分供体来源细胞。
确定BCG诱导的HSPC依赖性肿瘤免疫所需的细胞和分子(IFNγ、TNF、中性粒细胞、T细胞、DC)。
对BCG经验骨髓嵌合体小鼠,在肿瘤挑战前后给予中和抗体(IFNγ、IFNAR1、TNF)或耗竭抗体(CD4、CD8、Ly6G)或DC清除(DT处理ZBTB46-DTR骨髓嵌合体)。观察肿瘤生长变化。
表征BCG处理后肿瘤浸润髓系细胞的变化、T细胞激活和抗原呈递。
MB49-YFP膀胱肿瘤小鼠接受BCG或PBS,第21天分选CD45+细胞进行scRNA-seq。流式分析肿瘤和脾脏中髓系细胞的MHC-II表达和TNF产生。OT-I和OT-II过继转移实验评估肿瘤特异性T细胞应答。
测试BCG诱导的HSPC重编程是否能增强PD-1检查点抑制剂的疗效。
BCG经验骨髓嵌合体小鼠植入皮下MB49肿瘤,用抗PD-1或PBS处理(5剂量,每2天一次)。测量肿瘤生长和生存。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI培养基 | Thermo Fisher | Cat#11875-093 |
| 胎牛血清 | Thermo Fisher | Cat#10082-147 | |
| L-谷氨酰胺 | Thermo Fisher | Cat#25030-081 | |
| 药物处理 | 异烟肼 | Enzo | Cat#ALX-450-357 |
| 抗体处理 | TNF阻断抗体 | BioXCell | Cat#BE0058 |
| IFNγ中和抗体 | BioXCell | Cat#BE0055 | |
| IFNAR1阻断抗体 | BioXCell | Cat#BE0241 | |
| Ly6G清除抗体 | BioXCell | Cat#BE00775 | |
| CD4清除抗体 | BioXCell | Cat#BE0003-1 | |
| CD8清除抗体 | BioXCell | Cat#BE0061 | |
| 细胞培养 | MethoCult培养基 | StemCell Technologies | Cat#M3434 |
| CD34微珠 | Miltenyi | Cat#130-046-702 | |
| LSK扩增培养基 | Sigma | Cat#polyvinyl alcohol | |
| 分子分析 | RNeasy微型试剂盒 | Qiagen | Cat#74104 |
| 10x多组学试剂盒 | 10x Genomics | Cat#CG000338 | |
| 测序 | NovaSeq 6000测序仪 | Illumina | -- |
| 细胞计数 | Countess II细胞计数仪 | Thermo Fisher | Cat#AMQAX1000 |
| 细胞分选 | FACSymphony S6分选仪 | BD | -- |
| 流式分析 | LSRFortessa流式细胞仪 | BD | -- |
| Aurora流式细胞仪 | Cytek | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本 | 患者队列特征和BCG治疗方案(MSKCC n=8,McGill n=13),PBMC采集时间点(治疗前和第5次BCG后1周),样本处理流程(PBMC-PIE) 阅读提示:STAR Methods, Clinical studies and participants; Figure 1A |
| 动物模型 | 小鼠品系和年龄(C57BL/6J雌性7-8周) 阅读提示:STAR Methods, Animals |
| 肿瘤植入 | MB49细胞剂量(5×10^4细胞/只原位,1×10^5皮下),植入体积和麻醉时间 阅读提示:STAR Methods, MB49 orthotopic tumor implantation; Subcutaneous tumor implantation |
| BCG给药 | BCG剂量(3×10^6 CFU/只),给药途径(膀胱内或静脉),给药频率(每周1次共5次) 阅读提示:STAR Methods, BCG administration |
| 骨髓移植 | 供体处理(BCG或PBS),细胞数量(全骨髓5×10^6或LSK 1×10^6),辐照剂量(9 Gy),移植后休息时间(≥8周) 阅读提示:STAR Methods, Bulk bone marrow chimeras; LSK culture and expansion |
| 抗体处理 | 抗体名称、剂量、给药时间(如TNF阻断抗体200 μg,IFNγ中和抗体250 μg,Ly6G清除抗体250 μg,给药频率和时机) 阅读提示:STAR Methods, Mouse antibody administration |
| DC耗竭 | DT剂量(200 ng/只)和给药方案(每3天一次) 阅读提示:STAR Methods, Diphtheria toxin treatment |
| 流式分析 | 表面标记组合和门控策略 阅读提示:STAR Methods, Flow cytometry |
| 数据分析 | 单细胞数据预处理参数(如Cell Ranger ARC 2.0.2,Seurat/Signac流程),差异表达方法(MAST),motif分析(chromVAR)等 阅读提示:STAR Methods, Preprocessing and analysis sections |