T1D模型诱导与ILC3表型评估
评估1型糖尿病小鼠胰腺和血液中ILC3的数量和功能变化。
通过多次低剂量链脲佐菌素(MLDS)诱导C57BL/6小鼠T1D,在诱导后第12天通过流式细胞术分析血液和胰腺中ILC3的比例、亚型、细胞因子产生和肠道归巢标志物。
Activation of Intestinal Type 3 Innate Lymphoid Cells and Regulatory T Cells Through Free Fatty Acid Receptor 2 Ameliorates Type 1 Diabetes in Mice
包含体内动物模型(MLDS诱导的C57BL/6小鼠和NOD小鼠)、体外细胞实验(Caco-2细胞、原代免疫细胞)和功能验证(IL-22中和实验),并通过流式、ELISA、组织学等多层次验证。
雄性C57BL/6小鼠(MLDS诱导1型糖尿病模型) 雌性NOD/ShiLtJ小鼠(自发性1型糖尿病模型) Rorc(γt)-GfpTG小鼠(用于ILC3分离) Caco-2细胞(肠道屏障体外模型)
Cpd1给药剂量:20 mg/kg(C57BL/6小鼠),10 mg/kg(NOD小鼠),口服给药 MLDS诱导方案:38 mg/kg链脲佐菌素腹腔注射 IL-22中和抗体剂量:50 µg/小鼠,腹腔注射,在第1次链脲佐菌素注射后第6天和第10天给予 Cpd1治疗持续时间:每日给药20天(早期治疗),或自8周龄起给药3个月(NOD小鼠)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估1型糖尿病小鼠胰腺和血液中ILC3的数量和功能变化。
通过多次低剂量链脲佐菌素(MLDS)诱导C57BL/6小鼠T1D,在诱导后第12天通过流式细胞术分析血液和胰腺中ILC3的比例、亚型、细胞因子产生和肠道归巢标志物。
评估FFAR2激动剂Cpd1在预防和治疗方案中对T1D小鼠血糖、胰岛炎症和胰岛素分泌的影响。
Cpd1分别以预防性(从首次STZ开始)、早期治疗(末次STZ后1天)和治疗(高血糖发作时)方案口服给药,每日20 mg/kg,持续20天,监测血糖、血清胰岛素、胰岛组织学和胰岛素表达。
检测Cpd1对小肠固有层ILC3和Treg的影响。
在早期治疗方案中,于第12天分离小肠固有层细胞,通过流式细胞术分析ILC3亚型、细胞因子产生以及Treg频率和功能标志物。
评估Cpd1对肠道屏障完整性和肠道微生物组成的影响。
进行FITC-葡聚糖肠道通透性体内实验,并用Caco-2细胞单层评估Cpd1的保护作用;通过16S rRNA测序分析回肠微生物组成。
分析Cpd1对胰腺免疫细胞谱的影响,特别是ILC3和Treg。
在早期治疗方案中,于第12天分离胰腺细胞,通过流式细胞术分析ILC3、Treg、促炎细胞亚群和巨噬细胞表型。
验证IL-22在Cpd1治疗效应中的作用。
在MLDS诱导的T1D小鼠中,给予Cpd1同时给予中和性抗IL-22抗体或同型对照抗体,监测血糖变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| T1D诱导 | 链脲佐菌素 | Sigma-Aldrich | -- |
| 药物处理 | 化合物1 | -- | WO 2011/073376 A1 |
| IL-22中和实验 | 抗小鼠IL-22抗体 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 同型对照抗体 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 肠道通透性测定 | 异硫氰酸荧光素-葡聚糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| 肠道屏障体外实验 | Caco-2细胞 | ATCC | -- |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 胎牛血清 | Capricorn Scientific | -- | |
| 细胞培养插入小室 | Sarstedt | -- | |
| 24孔板 | Sarstedt | -- | |
| 乙醇 | ZorkaPharma | -- | |
| xCELLigence RTCA DP分析仪 | Roche Diagnostics | -- | |
| EPlate 16板 | Roche Diagnostics | -- | |
| MycoAlert支原体检测试剂盒 | Lonza | -- | |
| 组织学 | Alexa Fluor 488偶联兔抗小鼠胰岛素抗体 | Cell Signaling Technology | -- |
| Hoechst 33342染料 | ChemoMetec | -- | |
| Zeiss Axio Imager Z1荧光显微镜 | Carl Zeiss Meditec AG | -- | |
| 细胞分离 | 肝素真空采血管 | Improve Medical Instruments | -- |
| 红细胞裂解液 | eBioscience | -- | |
| 细胞培养 | Dynabeads小鼠T细胞活化磁珠CD3/CD28 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 转化生长因子-β | R&D Systems | -- | |
| 白细胞介素-6 | R&D Systems | -- | |
| 白细胞介素-2 | R&D Systems | -- | |
| 刀豆蛋白A | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 流式细胞术 | 固定/透化缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 透化缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞刺激混合物(含蛋白转运抑制剂) | eBioscience | -- | |
| ELISA | 胰岛素ELISA试剂盒 | Mercodia AB | -- |
| DuoSet ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | -- | -- |
| M-MLV逆转录酶 | -- | -- | |
| 16S rRNA测序 | ZymoBIOMICS DNA小提试剂盒 | Zymo Research | -- |
| 动物实验 | 异氟烷 | Virbac | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| T1D模型诱导 | 小鼠品系、性别、年龄、体重,STZ剂量(38 mg/kg)、给药途径(腹腔注射)、频率(多次低剂量)、溶剂(柠檬酸缓冲液),对照组(柠檬酸缓冲液) 阅读提示:Research Design and Methods: Type 1 Diabetes Induction and Treatments |
| Cpd1治疗 | Cpd1剂量(20 mg/kg,C57BL/6;10 mg/kg,NOD)、给药途径(口服)、给药方案(预防性、早期治疗、治疗)、给药频率(每日)、持续时间(20天或3个月),对照组(等体积水) 阅读提示:Research Design and Methods: Type 1 Diabetes Induction and Treatments |
| IL-22中和实验 | 抗IL-22抗体和同型对照的剂量(50 μg/小鼠)、给药途径(腹腔)、给药时间(STZ后第6天和第10天),Cpd1治疗起始时间 阅读提示:Research Design and Methods: Type 1 Diabetes Induction and Treatments |
| 肠道通透性测定 | FITC-葡聚糖剂量、给药途径(口服)、禁食时间(过夜)、采血时间(4小时后)、检测波长(488/534nm),对照背景荧光 阅读提示:Research Design and Methods: In Vivo Intestinal Permeability Assay |
| Caco-2细胞屏障实验 | Caco-2细胞来源(ATCC)、培养基(RPMI 1640+10%FBS)、种子密度(6×10^3细胞/insert)、孔板规格(24孔)、孔径(0.4 μm)、Cpd1浓度(100 μmol/L)、预处理时间(20分钟)、乙醇浓度(7.5%)、FITC-葡聚糖浓度(1 mg/mL)、检测时间(1和2小时) 阅读提示:Research Design and Methods: In Vitro Intestinal Barrier Assessment |
| 流式细胞术 | 细胞表面和胞内染色条件(温度、时间)、固定/透化缓冲液、刺激条件(Cell Stimulation Cocktail 4小时)、抗体克隆号(见补充表1)、门控策略(见补充图1-4)、仪器(BD FACSAria III 或 CytoFlex) 阅读提示:Research Design and Methods: Flow Cytometry |
| 胰岛培养和胰岛素测定 | 胰岛分离方法(胶原酶V)、培养条件(RPMI 1640+10%FBS,37°C,5%CO2)、Cpd1浓度(25 μmol/L)、培养时间(24小时)、每组胰岛数量(10个/孔) 阅读提示:Research Design and Methods: Cell Isolation and Cultivation |