帕金森病脑组织中α-突触核蛋白寡聚体的大规模可视化

Large-scale visualization of α-synuclein oligomers in Parkinson's disease brain tissue

作者信息Rebecca Andrews, Bin Fu, Christina E Toomey, Jonathan C Breiter, Joanne Lachica, Joseph S Beckwith, Ru Tian, Emma E Brock, Lisa-Maria Needham, Gregory J Chant, Camille Loiseau, Angèle Deconfin, Kenza Baspin, Rebeka Popovic, James Evans, Yen Goh, Begüm Kurt, Lenart Senicar, Marisa Edmonds, Tim Bartels, Nora Bengoa-Vergniory, Peter J Magill, Zane Jaunmuktane, Oliver J Freeman, Benjamin J M Taylor, John Hardy, Tammaryn Lashley, Mina Ryten, Michele Vendruscolo, Nicholas W Wood, Lucien E Weiss, Sonia Gandhi, Steven F Lee
PMID41034512
发布时间2026-06
DOI10.1038/s41551-025-01496-4

实验完整度

包含人体组织样本的多层级实验:ASA–PD成像分析、PLA、SEC-ELISA、SAA和蛋白酶K抗性验证,并进行了不同脑库、抗体和抗原修复条件的验证。

主要模型

帕金森病患者死后脑组织(前扣带回皮层) 健康对照死后脑组织(前扣带回皮层)

重点核对

使用AB_2819037抗体检测pS129 α-突触核蛋白,稀释度1:500 组织切片经0.1% Sudan Black处理10 min以抑制自发荧光 使用100× NA 1.49油镜在561 nm激光(功率密度25.9 W/cm²)下成像,EMCCD增益250 每个样本采集3×3网格视野,间隔150 μm,共17层z-stack,步长0.5 μm 疾病特异性亚群定义为亮度超过健康对照第99.7百分位(10,280光子)的纳米级聚集体

摘要

帕金森病(PD)是一种神经退行性疾病,其特征是含有纤维状α-突触核蛋白的神经元内聚集体(称为路易体)的存在。这些大的终末期物种由较小的可溶性蛋白质纳米级组装体(通常称为寡聚体)形成,这些寡聚体被认为是发病机制的早期驱动因素。到目前为止,这一假说仍存在争议,部分原因在于无法直接在人类脑组织中可视化纳米级组装体。在这里,我们介绍一种成像方法“帕金森病聚集体高级传感”(ASA–PD),用于在死后人类脑组织中生成大规模的α-突触核蛋白聚集体图谱。我们将自发荧光抑制与单分子荧光显微镜相结合,从而能够检测纳米级α-突触核蛋白聚集体。为了展示该平台的用途,我们分析了来自帕金森病患者和健康对照的死后人脑样本前扣带回皮层中的约120万个纳米级聚集体。我们的数据揭示了纳米级组装体亚群的疾病特异性转变,这代表了PD基础的蛋白病的早期特征。我们预期,ASA–PD提供的关于这种分布的定量信息将使机制研究能够揭示由α-突触核蛋白聚集引起的病理过程。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
帕金森病脑组织中是否存在可通过直接成像检测的纳米级α-突触核蛋白聚集体,以及这些聚集体在健康与疾病状态下的分布和性质如何变化?
核心机制
帕金森病脑中存在一个连续的α-突触核蛋白聚集体大小谱,其中纳米级聚集体占绝对多数。与健康对照相比,疾病组织中出现一个明亮的纳米级聚集体亚群,该亚群具有形成种子能力(seed-competent)和蛋白酶K抗性,可能是从生理性聚集体向病理性纤维结构转变的中间态。
主要证据
ASA–PD成像分析了约120万个纳米级聚集体,发现PD中明亮亚群(>10,280光子)占所有纳米级聚集体的约10%,而HC中仅占0.26%;通过PLA、SEC-ELISA和SAA验证了该亚群的存在和种子能力;并通过与神经元、小胶质细胞和星形胶质细胞标志物共染色,发现该亚群倾向于聚集在这些细胞附近。
研究意义
作者提出ASA–PD平台有助于设计机制研究,以揭示α-突触核蛋白聚集引起的病理过程,并可能用于其他神经退行性疾病中蛋白聚集的研究。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

组织制备和免疫荧光染色

对死后人脑组织切片进行抗原修复和抗体标记,以可视化α-突触核蛋白聚集体。

8 μm厚的FFPE组织切片经脱蜡、水化、内源性过氧化物酶阻断、热介导抗原修复(柠檬酸缓冲液,pH6.0)和封闭后,与抗pS129 α-突触核蛋白抗体(AB_2819037)孵育,再用荧光二抗标记。

2

高灵敏度荧光显微镜成像

利用自发荧光抑制和高数值孔径物镜提高信噪比,以检测纳米级聚集体。

使用自建宽场荧光显微镜,以561 nm激光激发,通过100× NA 1.49油镜成像;对每个视野采集17层z-stack(步长0.5 μm),并用EMCCD记录图像。

3

图像分析和聚集体定量

从图像中检测和区分纳米级与微米级聚集体,并量化其亮度作为尺寸的替代指标。

开发定制代码,通过背景减除和Ricker小波滤波增强衍射极限尺寸特征,应用阈值创建掩膜,将掩膜分离为纳米级(<19像素)和大型(≥19像素)物体;并量化每个聚集体的积分亮度。

4

正交生化验证

通过独立于成像的方法验证ASA–PD检测到的纳米级聚集体及其疾病特异性变化。

对脑组织切片进行PLA检测;对脑裂解液进行SEC分级分离,用ELISA定量各组分α-突触核蛋白,并用SAA评估种子活性;还测定了蛋白酶K抗性。

5

空间分布分析

评估纳米级聚集体在组织中的空间聚类及其与不同细胞类型的邻近关系。

使用空间聚类检验(基于点到点距离的似然分析)评估聚集体的聚类程度;通过共染不同细胞标志物(神经丝、P2RY12、GFAP、Olig2),分析聚集体与这些细胞的距离。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
苏丹黑B----
LB509抗体--AB_2832854
抗α-突触核蛋白磷酸化S129兔多克隆抗体--AB_2270761
抗α-突触核蛋白磷酸化S129小鼠单克隆抗体--AB_2819037
抗P2RY12抗体--AB_2669027
抗神经丝抗体(RT-97)--AB_2941917
抗GFAP抗体(5C10)--AB_2747779
抗Olig2抗体--AB_570666
Alexa Fluor 488抗小鼠二抗--AB_2534069
Alexa Fluor 568抗小鼠二抗--AB_144696
Alexa Fluor 488抗兔二抗--AB_143165
Alexa Fluor 568抗兔二抗--AB_143157
Vectashield PLUS封片剂Vector LaboratoriesH-1900
CoverGrip密封剂Biotium23005
iBeam-SMART激光器Toptica--
LaserBoxx 561 nm激光器Oxxius--
100× Plan Apo TIRF物镜Nikon--
EMCCD相机(Evolve 512 Delta)Photometrics--
40 nm荧光珠--F10720
ImageJ2--Micromanager plugin

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
组织来源
脑库来源(QSBB和Imperial),PD病例Braak分期(3/4级和6级),健康对照匹配
阅读提示:查看Methods中的Tissue selection和补充表2、3
免疫荧光染色
一抗选择(AB_2819037 pS129)、稀释度(1:500)、抗原修复条件(柠檬酸热修复,部分加用甲酸)、Sudan Black浓度和孵育时间(0.1%,10分钟)
阅读提示:检查Methods中的Immunofluorescence tissue preparation和补充图2-4
荧光成像
物镜NA(1.49)、激光功率密度(561 nm: 25.9 W/cm²)、EMCCD增益(250)、曝光时间(1秒)、z-stack参数(17层,步长0.5 μm)
阅读提示:参阅Methods中的Microscopy部分
图像分析
特征检测参数(Ricker σ=1.1,阈值百分位97.5,大小阈值19像素)、亮度阈值(10,280光子)用于定义疾病特异性亚群
阅读提示:详读Methods中的Feature detection部分和补充方法笔记3.1
生化验证
PLA探针、SEC分级范围(200 kDa–5 MDa)、SAA条件(重组α-突触核蛋白、ThT监测)、蛋白酶K处理条件
阅读提示:查看补充方法笔记和补充图19-21