肿瘤组织采集与移植
获取高危EC患者新鲜肿瘤组织,并移植到免疫缺陷小鼠中建立PDTX模型。
收集18例高危EC患者手术新鲜肿瘤组织,经组织学确认后,移植到NOD/SCID小鼠皮下或肾包膜下。
Establishment of Patient-Derived Tumor Xenograft Models of High-Risk Endometrial Cancer
包含患者肿瘤组织移植、组织学与免疫组化验证、WES和RNA-seq遗传验证等多层次独立证据,明确功能验证与机制验证。
高危子宫内膜癌患者肿瘤组织 NOD/SCID小鼠皮下及肾包膜下移植模型 Balb/c-nu/nu小鼠扩增模型
移植方法(皮下 vs 肾包膜下) 移植成功率(77.8%) 肿瘤形成时间(2-11周) 原发肿瘤与移植瘤的组织学相似性 原发肿瘤与移植瘤的基因突变频率相关性(r=0.61)和基因表达相关性(r=0.82/0.86)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取高危EC患者新鲜肿瘤组织,并移植到免疫缺陷小鼠中建立PDTX模型。
收集18例高危EC患者手术新鲜肿瘤组织,经组织学确认后,移植到NOD/SCID小鼠皮下或肾包膜下。
在Balb/c-nu/nu小鼠中连续传代扩增PDTX肿瘤。
将建立的PDTX肿瘤切碎后移植到Balb/c-nu/nu小鼠皮下或肾包膜下,连续传代(F1-F3等)。
评估原发肿瘤和不同代PDTX肿瘤的组织学相似性。
对患者肿瘤和异种移植瘤组织切片进行HE染色和IHC染色,检测细胞角蛋白、ER、PR和P53表达。
验证原发肿瘤和PDTX肿瘤在基因突变和表达谱上的相似性。
对2个模型(EM0006和EM0007)的原发肿瘤和F4代移植瘤进行WES和RNA-seq,分析突变谱和基因表达相关性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 组织采集 | RPMI 1640培养基 | GENOM | -- |
| 免疫组化 | DAB HRP试剂盒 | NeoBioscience | -- |
| 细胞角蛋白抗体 | Abcam | ab9021 | |
| 雌激素受体抗体 | Cell Signaling Technology | 2511S | |
| 孕激素受体抗体 | Cell Signaling Technology | 8757S | |
| P53抗体 | Cell Signaling Technology | 2527S | |
| 显微镜观察 | 奥林巴斯BX53显微镜 | Olympus | -- |
| DNA提取 | 基因组DNA提取试剂盒 | UnigeneDx | -- |
| RNA提取 | Direct-zol RNA小量制备试剂盒 | Zymo Research | -- |
| 文库构建 | KAPA Hyper Prep试剂盒 | KAPA | -- |
| 外显子捕获 | SeqCapEZ MedExome试剂盒 | Roche | -- |
| RNA-seq | KAPA Riboerase-RNA Hyper Prep试剂盒 | KAPA | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物准备 | 小鼠品系(NOD/SCID和Balb/c-nu/nu)、年龄(6-8周)、雌性,去势处理 阅读提示:见Materials and Methods中的Animals和Ovariectomy部分 |
| 肿瘤移植 | 皮下移植和肾包膜下移植的具体步骤,肿瘤块大小1×1.5×1.5 mm³ 阅读提示:见Materials and Methods中的Subcutaneous Grafting和Subrenal Capsular Grafting部分 |
| 肿瘤传代 | 移植成功率(皮下50%,肾包膜下62.5%),传代代数(F1-F3) 阅读提示:见Results中的PDTX Establishment Rates和Table 1 |
| 组织学验证 | HE染色和IHC标记物(CK、ER、PR、P53) 阅读提示:见Materials and Methods中的Histological Evaluation和Results中的Histological Evaluation部分 |
| 遗传学验证 | WES和RNA-seq的样本(F0和F4),相关性分析(r值) 阅读提示:见Materials and Methods中的Next-Generation Sequencing和Results中的Genetic Analysis部分 |