TET3在KCs中的表达验证
验证TET3在Kupffer细胞中的高表达,并确认其与M2极化的相关性。
通过Human Protein Atlas和TISCH数据库预测TET3分布,分离KCs并通过流式细胞术确认CD68阳性率,RT-qPCR和Western blot检测TET3表达。
ZMIZ1 Upregulation of TET3-Mediated Hydroxymethylation Induces M2 Polarization of Kupffer Cells in Hepatocellular Carcinogenesis by Mediating Notch1/c-Myc Signaling
包含体外细胞共培养、体内异种移植瘤模型、临床样本分析及多种分子机制验证(如ChIP、Co-IP、荧光素酶报告基因等),证据层级多样。
Kupffer细胞 Huh-7细胞 SNU-423细胞 BALB/c裸鼠异种移植瘤模型
KCs经20 ng/mL IL-10刺激诱导M2极化 sh-TET3或sh-ZMIZ1慢病毒载体感染KCs,并以嘌呤霉素筛选 KCs与HCC细胞共培养72小时 体内实验中,每只小鼠注射1×10^5个KCs和4×10^5个Huh-7细胞 使用sh-TET3-1#和sh-TET3-2#进行体外实验,体内实验仅用sh-TET3-1#
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证TET3在Kupffer细胞中的高表达,并确认其与M2极化的相关性。
通过Human Protein Atlas和TISCH数据库预测TET3分布,分离KCs并通过流式细胞术确认CD68阳性率,RT-qPCR和Western blot检测TET3表达。
评估TET3敲低对KCs M2极化的影响及其对共培养HCC细胞恶性行为的作用。
用sh-TET3慢病毒感染KCs,通过ELISA检测细胞因子(IL-6、TNF-α、IL-10、TGF-β),流式细胞术检测CD206+细胞比例,并与Huh-7或SNU-423共培养后检测HCC细胞活力、迁移和侵袭。
在体内验证TET3敲低对HCC肿瘤生长的抑制作用。
将sh-TET3感染的KCs与Huh-7细胞混合注射入裸鼠皮下,监测肿瘤体积和重量,并通过免疫组化和流式检测肿瘤组织中的KI67和CD206表达。
预测并验证TET3的下游靶标,重点关注ZMIZ1。
分析GEO数据集GSE39186和UALCAN数据库,筛选与TET3相关的基因,交叉得到15个基因,通过TISCH数据库选出ZMIZ1,并验证其在临床样本和KCs中的表达。
验证TET3是否通过DNA羟甲基化修饰调控ZMIZ1表达。
在KCs中敲低TET3后,通过ChIP-qPCR检测TET3与ZMIZ1启动子的结合,通过亚硫酸盐测序检测启动子甲基化水平,通过葡萄糖基化DNA和甲基化敏感qPCR检测羟甲基化水平。
验证ZMIZ1过表达是否逆转TET3敲低导致的M2极化抑制和HCC细胞恶性表型降低。
在sh-TET3的KCs中过表达ZMIZ1,检测细胞因子、CD206+比例,共培养HCC细胞检测活力、迁移、侵袭,并利用异种移植瘤模型验证体内效应。
验证ZMIZ1是否通过Notch1/c-Myc通路发挥作用。
通过Co-IP验证ZMIZ1与Notch1相互作用,ChIP-qPCR检测Notch1与c-Myc启动子结合,双荧光素酶报告基因检测c-Myc启动子活性,并在sh-ZMIZ1基础上过表达Notch1或c-Myc观察恢复效应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 白细胞介素-10 | -- | -- | |
| 细胞感染 | 慢病毒载体 | VectorBuilder Inc | -- |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| PrimeScript RT试剂盒 | Takara Biotechnology Ltd | -- | |
| TB Green Fast qPCR Mix | Takara | -- | |
| LightCycler 480实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| ELISA | 人IL-10 ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnologies | E-EL-H6154 |
| 人TGF-β1 ELISA试剂盒 | BioVision | K4342 | |
| 人IL-12 ELISA试剂盒 | BioVision | K4226 | |
| 人IL-6 ELISA试剂盒 | BioVision | K4143 | |
| 人TNF-α ELISA试剂盒 | Bio-Techne | HSTA00E | |
| 小鼠IL-10 ELISA试剂盒 | R&D Systems | M1000B | |
| 小鼠TGF-β1 ELISA试剂盒 | BioVision | K4343 | |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | BMS603HS | |
| 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | R&D Systems | MHSTA50 | |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| BCA蛋白浓度测定试剂盒 | -- | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| ZMIZ1抗体 | Cell Signaling Technology | 89500S | |
| c-Myc抗体 | Cell Signaling Technology | 18583S | |
| Notch1抗体 | Abcam | ab52627 | |
| GAPDH抗体 | Abcam | ab9485 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | ABclonal Technology | AS014 | |
| 增强化学发光试剂盒 | ABclonal Technology | RM00021 | |
| UVP成像系统 | Bio-Rad Laboratories | -- | |
| Co-immunoprecipitation | 蛋白A/G琼脂糖珠 | -- | -- |
| 免疫共沉淀 | ZMIZ1抗体 | CST | 89500S |
| Notch1抗体 | CST | 3608S | |
| IgG抗体 | CST | 3900S | |
| 染色质免疫沉淀 | SimpleChIP Plus超声染色质IP试剂盒 | CST | 56383 |
| TET3抗体 | CST | 99980S | |
| Notch1抗体 | CST | 3608S | |
| IgG抗体 | CST | 3900S | |
| 双荧光素酶报告基因 | pGL3质粒 | Promega Corporation | -- |
| Lipofectamine 2000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 双荧光素酶系统 | Promega | -- | |
| 甲基化特异性PCR | QIAamp DNA微型试剂盒 | Qiagen GmbH | 51304 |
| 甲基化敏感性qPCR | EpiMark 5-hmC和5-mC分析试剂盒 | New England Biolabs Ltd | E3317S |
| 流式细胞术 | CD68磁珠 | -- | -- |
| FITC-CD68抗体 | Abcam | ab134351 | |
| PE-CD206抗体 | Thermo Fisher Scientific | 12-2061-82 | |
| FACS Aria II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| 肿瘤解离试剂盒 | Miltenyi Biotec GmbH | 130-096-730 | |
| 红细胞裂解液 | Miltenyi Biotec | 130-094-183 | |
| CD16/32抗体 | Thermo Fisher Scientific | 14-0161-81 | |
| 免疫组织化学 | KI67抗体 | GeneTex Inc | GTX16667 |
| CD206抗体 | Abcam | ab64693 | |
| 山羊抗兔IgG | GeneTex | GTX213110-01 | |
| 细胞培养 | Huh-7细胞系 | Procell Life Science & Technology | CL-0120 |
| SNU-423细胞系 | American Type Culture Collection | CRL-2238 | |
| THLE-2细胞系 | American Type Culture Collection | CRL-2706 | |
| THLE-3细胞系 | American Type Culture Collection | CRL-11233 | |
| 统计分析 | GraphPad Prism软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| KCs分离与培养 | KCs来源、培养条件(DMEM、10% FBS、1%抗生素),IL-10刺激浓度(20 ng/mL)和时间(24小时) 阅读提示:Methods - Cells |
| 基因敲低/过表达 | 慢病毒载体类型(shRNA或OE),感染时间(48小时),筛选药物(嘌呤霉素)及浓度 阅读提示:Methods - Cell Infection |
| 共培养实验 | Transwell孔径,KCs和HCC细胞接种数量,共培养时间(72小时) 阅读提示:Methods - Coculture of Kupffer Cells With Hepatocellular Carcinoma Cells |
| 体内肿瘤模型 | 小鼠品系、性别、年龄、体重,细胞注射数量(KCs 1×10^5,Huh-7 4×10^5),注射部位(右胁),肿瘤测量时间(每周),实验周期(5周) 阅读提示:Methods - Animals |
| 分子机制验证 | 抗体信息(ZMIZ1、Notch1、TET3等),ChIP实验的固定条件、抗体用量、洗涤条件,Co-IP实验的裂解条件、免疫沉淀时间,荧光素酶报告基因的转染试剂和方法 阅读提示:Methods - Western Blot Analysis, Co-immunoprecipitation, Chromatin Immunoprecipitation, Dual Luciferase Reporter Assay |