PFKFB3抑制剂3PO介导的糖酵解重编程促进炎性牙髓修复:一项体外和体内研究

PFKFB3-Inhibitor 3PO-Mediated Glycolytic Reprogramming Promotes Inflammatory Dental Pulp Repair: An In Vitro and In Vivo Study

作者信息Yanqiang Zhao, Yuqing Peng, Dan Wang, Lixin Zhang, Yijia Qiu, Jingyi Cui, Fei Xie, Ningxin Zhu, Man Qin, Yuanyuan Wang
PMID40788622
发布时间2025-12
DOI10.1111/iej.70016

实验完整度

高

包含体外细胞实验、共培养体系、动物模型等多个独立证据层级,并有功能验证和机制验证(信号通路验证)。

主要模型

人牙髓干细胞(hDPSCs) THP-1来源巨噬细胞与DPSCs共培养体系 SD大鼠牙髓炎模型

重点核对

LPS刺激浓度(1 μg/mL)和持续时间(3小时) 3PO处理浓度(10 μM)和时间(6小时) siRNA靶向PFKFB3的序列和转染浓度(25 nM) 3PO@GelMA水凝胶中3PO浓度(10 μmol/L)和作用时间(20分钟) 大鼠分组及每组样本量(每组4只)

摘要

目的:本研究探讨PFKFB3在牙髓炎中的作用,以及通过调节牙髓干细胞(DPSCs)中的糖酵解重编程,其作为治疗靶点的潜力。牙髓炎是一种常见的炎症性疾病,会对牙齿结构造成长期损害。最近的证据表明,代谢重编程可以调节炎症反应并促进组织修复。本研究旨在通过体内和体外实验,探讨糖酵解抑制剂对炎性牙髓的抗炎和修复作用。方法:体外,人牙髓干细胞(hDPSCs)用脂多糖(LPS)(1 μg/mL,3小时)刺激模拟牙髓炎。通过海马分析评估PFKFB3抑制剂3PO(10 μM)和靶向PFKFB3的siRNA(50 nM)对糖酵解的影响,同时通过ELISA和qRT-PCR评估其对炎症的影响。使用DPSCs和巨噬细胞的共培养体系研究3PO对炎症相互作用和炎性微环境糖酵解重编程的影响。通过qRT-PCR、Western blotting、ALP染色和ARS染色检测3PO对成牙本质分化的影响。通过Western blot(WB)实验验证相关信号通路。采用SD大鼠模型验证3PO@GelMA盖髓剂的体内疗效,并用HE染色和免疫组织化学评估牙髓炎症程度和修复性牙本质形成。结果:体外,LPS升高了DPSCs中的糖酵解活性和炎性因子(IL-6、IL-1β、TNF-α)。3PO和si-PFKFB3减轻了这些因子并促进了成牙本质分化,表现为DSPP和ALP表达增加。通过Seahorse XF分析评估,3PO和si-PFKFB3介导的代谢重编程表明从糖酵解转向氧化磷酸化。此外,3PO诱导了共培养体系的代谢重编程,降低了促炎细胞因子的水平,并促进巨噬细胞向M2表型极化。PFKFB3抑制激活了AMPK/SIRT1/PGC-1α/NF-κB和AMPK/mTOR/NF-κB信号通路。体内,在大鼠牙髓炎模型中,与LPS组相比,3PO@GelMA水凝胶的应用显著降低了IL-6并增加了DSPP表达(p < 0.001),同时伴随着炎症减轻和修复性牙本质形成增加。结论:PFKFB3抑制剂3PO通过代谢重编程和特定信号通路减轻牙髓炎中的炎症并促进修复性牙本质形成,提供了一种新的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PFKFB3在牙髓炎中的作用及其作为治疗靶点的潜力,通过调节牙髓干细胞中的糖酵解重编程来减轻炎症并促进牙髓修复。
核心机制
3PO抑制PFKFB3,激活AMPK/SIRT1/PGC-1α/NF-κB和AMPK/mTOR/NF-κB信号通路,抑制NF-κB活性,从而减轻炎症并促进成牙本质分化。
主要证据
体外:3PO和si-PFKFB3降低炎症因子和ROS,促进成牙本质分化,代谢转向氧化磷酸化。体内:3PO@GelMA在大鼠模型中显著降低IL-6、增加DSPP表达,减轻炎症并促进修复性牙本质形成。
研究意义
作者提出3PO介导的代谢重编程为牙髓炎提供了一种有前景的治疗策略,可能同时解决炎症反应和组织再生问题。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立LPS诱导的牙髓炎细胞模型

模拟牙髓炎的体外炎症环境

用LPS(1 μg/mL)刺激hDPSCs 3小时,建立炎症模型,并通过qPCR和Seahorse验证炎症反应和代谢变化。

2

鉴定PFKFB3表达和活性

验证PFKFB3在LPS诱导的牙髓炎中的上调

通过qPCR和Western blot检测LPS刺激后hDPSCs中PFKFB3的mRNA和蛋白表达水平。

3

评估3PO和siRNA的细胞毒性和基因敲低效率

确定3PO的非毒性浓度和siRNA的最佳敲低序列

用不同浓度的3PO处理DPSCs,通过CCK-8评估细胞活性;设计三条siRNA序列,筛选敲低效率最高的用于后续实验。

4

代谢重编程分析

检测3PO和si-PFKFB3对细胞代谢的影响

使用Seahorse XF分析仪检测hDPSCs及共培养体系的氧化磷酸化和糖酵解速率。

5

炎症因子和ROS水平检测

评估3PO和si-PFKFB3的抗炎效果

通过qPCR和ELISA检测炎症因子(IL-6、IL-1β、TNF-α)的表达,使用DCFH-DA探针和流式细胞术检测ROS水平。

6

划痕实验或共培养实验(原文为共培养实验)

研究3PO对巨噬细胞和DPSCs相互作用的影响

建立DPSCs与THP-1来源巨噬细胞的共培养体系,LPS刺激,用3PO处理,检测代谢、炎症因子表达和巨噬细胞极化。

7

成牙本质分化能力评估

评估3PO和si-PFKFB3对成牙本质分化的影响

对DPSCs进行成骨诱导,通过qPCR检测分化相关基因表达,Western blot检测DSPP和DMP1蛋白水平,ALP和ARS染色评估矿化能力。

8

机制通路验证

验证3PO对AMPK/SIRT1/PGC-1α/NF-κB和AMPK/mTOR/NF-κB信号通路的影响

通过Western blot检测相关蛋白表达和磷酸化水平,免疫荧光检测p65的核转位。

9

体内动物模型验证

验证3PO@GelMA在大鼠牙髓炎模型中的疗效

建立SD大鼠牙髓炎模型,施加MTA、GelMA或3PO@GelMA盖髓剂,1个月后通过H&E和免疫组化评估炎症和修复性牙本质形成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基Gibco/BRL--
胎牛血清Gibco--
RPMI-1640培养基Gibco--
佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯----
细胞计数试剂盒-8Dojindo--
TRIzol试剂Invitrogen--
PrimeScript RT试剂盒TaKaRa--
SYBR Green预混液Roche--
ELISA试剂盒Liankebio--
Lipofectamine RNAi Max转染试剂Invitrogen13778-150
海马XF细胞线粒体压力测试试剂盒Agilent Technologies--
XF糖酵解速率分析试剂盒Agilent Technologies--
寡霉素----
鱼藤酮----
抗霉素----
2-脱氧-D-葡萄糖----
蛋白裂解液Applygen Technologies Inc.--
BCA蛋白定量试剂盒CWbio--
PVDF膜Millipore--
抗DSPP抗体Santa Cruz Biotechnologysc-73632
抗p65抗体Cell Signalling Technology8242
抗磷酸化p65抗体Cell Signalling Technology3033
抗AMPK抗体Cell Signalling Technology5832
抗磷酸化AMPK抗体Cell Signalling Technology2535
抗mTOR抗体Cell Signalling Technology2983
抗磷酸化mTOR抗体Cell Signalling Technology2971
抗DMP1抗体BIOSSBS1223
抗PGC-1α抗体ProteinTech11217-1-AP
抗SIRT1抗体Cell Signalling Technology9472
抗β-肌动蛋白抗体Cell Signalling Technology4970
增强化学发光检测试剂盒Solibro--
L-抗坏血酸Sigma--
β-甘油磷酸钠Sigma--
地塞米松Sigma--
NBT/BCIP染色液Beyotime--
ALP活性检测试剂盒Jiancheng--
三氧化矿物凝聚体----
3PO----
甲基丙烯酰化明胶水凝胶----
EDTA脱钙液Boster--
H&E染色试剂盒Solarbio--
SABC-POD试剂盒----
DAB显色液----
CY3标记山羊抗兔IgG----
FITC标记山羊抗小鼠IgG----
DAPI----
抗CD86抗体Proteintech18704-1-AP
抗CD206抗体Proteintech60143-1-Ig
鬼笔环肽560Proteintech10060-1-AP
2',7'-二氯荧光素二乙酸酯Sigma--
FACS Calibur流式细胞仪BD Biosciences--
尼康显微镜成像系统Nikon Ltd.--
激光共聚焦显微镜FV3000Olympus--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与刺激
hDPSCs的分离来源和培养条件;LPS浓度(1 μg/mL)和刺激时间(3小时)
阅读提示:2.1 细胞分离与培养;3.1结果部分
药物处理和siRNA转染
3PO浓度(10 μM)和处理时间(6小时);siRNA序列和转染浓度(25 nM)
阅读提示:2.5 siRNA干扰;3.3结果部分
代谢分析
Seahorse实验的具体步骤:细胞接种密度、校准时间、试剂浓度
阅读提示:2.6 代谢分析
共培养体系
THP-1分化条件(PMA浓度和时间)、共培养比例(2:1)
阅读提示:2.1 细胞分离与培养
体内动物模型
大鼠品系、年龄、体重;分组(每组4只);LPS诱导时间;3PO@GelMA处理条件
阅读提示:2.9 大鼠牙髓炎模型的建立