分离、鉴定和分组ADSC-EVs
获得并验证具有典型特征的ADSC-EVs,用于后续实验。
培养ADSCs至第3代,通过超速离心法分离ADSC-EVs。使用透射电镜观察形态,NTA分析粒径,Western blot检测表面标志物(CD9、CD81、TSG101、Calnexin)。ADSC-EVs分为GW组(EV抑制剂GW4869处理)和EVs组。
Mechanism of adipose-derived stem cell-derived extracellular vesicles affecting macrophage efferocytosis by mediating ADAM17/MerTK in the apoptosis of tubular epithelial cells after sepsis-associated acute kidney injury
研究包含细胞实验(巨噬细胞、Jurkat细胞)和动物模型(CLP诱导的S-AKI小鼠),并进行了功能获得和丧失实验(oe-ADAM17、si-MerTK)及体内验证,证据层级完整。
CLP诱导的S-AKI小鼠模型 小鼠肾巨噬细胞(CP-M187) 凋亡Jurkat细胞共培养体系
小鼠模型:C57BL6/J雄性小鼠,10周龄,22±2g 分组:Sham、S-AKI、S-AKI+EVs、S-AKI+GW、S-AKI+EVs+Adoe-ADAM17、S-AKI+EVs+Adoe-NC,每组12只 ADSC-EVs处理:200μg EVs静脉注射,CLP后立即进行 细胞实验:LPS浓度10μg/mL,EVs浓度20μg/mL,处理时间24小时 si-MerTK和oe-ADAM17转染浓度100nM 凋亡Jurkat细胞制备:254nm紫外照射15分钟 胞葬作用检测:pHrodo-red标记凋亡细胞,共培养45分钟
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得并验证具有典型特征的ADSC-EVs,用于后续实验。
培养ADSCs至第3代,通过超速离心法分离ADSC-EVs。使用透射电镜观察形态,NTA分析粒径,Western blot检测表面标志物(CD9、CD81、TSG101、Calnexin)。ADSC-EVs分为GW组(EV抑制剂GW4869处理)和EVs组。
建立S-AKI模型,并评估ADSC-EVs对S-AKI小鼠肾损伤的影响。
通过CLP建立S-AKI小鼠模型,小鼠分为Sham、S-AKI、S-AKI+EVs、S-AKI+GW、S-AKI+EVs+Adoe-ADAM17、S-AKI+EVs+Adoe-NC组。EVs组、GW组、Adoe-ADAM17组和Adoe-NC组在CLP后立即静脉注射相应物质。术后24h收集血液和肾组织。
验证ADSC-EVs对LPS诱导的巨噬细胞ADAM17表达、胞葬作用和M2极化的影响。
小鼠肾巨噬细胞用LPS诱导,并同时用ADSC-EVs或GW处理。通过EV摄取实验验证内化。RT-qPCR和Western blot检测ADAM17表达。共培养凋亡Jurkat细胞后,免疫荧光检测胞葬作用,流式细胞术检测M1/M2极化,ELISA检测炎症因子水平。
探究ADSC-EVs是否通过抑制ADAM17减少MerTK裂解来促进胞葬作用和M2极化。
在LPS+EVs组巨噬细胞中转染oe-ADAM17或si-MerTK,检测ADAM17、MerTK和sMerTK表达,以及胞葬作用、M1/M2极化和炎症因子水平。
在体内验证ADAM17上调是否逆转ADSC-EVs对S-AKI小鼠的保护作用。
在S-AKI小鼠中,通过Adoe-ADAM17过表达ADAM17,检测肾组织ADAM17和MerTK表达、肾功能(Scr、BUN)、肾小管损伤、TEC凋亡和炎症因子水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜氏改良 Eagle 培养基 | Invitrogen | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 脂肪间充质干细胞 | Otwo Biotech | HTX2309 | |
| EV分离与鉴定 | PKH67荧光染料 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞培养 | GW4869 | Sigma-Aldrich | D1692 |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
| 罗哌卡因 | -- | -- | |
| EV分离 | 磷酸盐缓冲液 | -- | -- |
| EV鉴定 | 磷钨酸 | -- | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Sigma-Aldrich | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 蛋白酶抑制剂 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 聚偏二氟乙烯膜 | -- | -- | |
| 抗Bcl-2抗体 | Abcam | ab182858 | |
| 抗Bax抗体 | Abcam | ab32503 | |
| 抗Cleaved Caspase-3抗体 | Abcam | ab32042 | |
| 抗ADAM17抗体 | Abcam | ab39162 | |
| 抗MerTK抗体 | Abcam | ab300136 | |
| 抗GAPDH抗体 | Abcam | ab181602 | |
| 辣根过氧化物酶偶联二抗 | Abcam | ab6721 | |
| 辣根过氧化物酶偶联二抗 | Abcam | ab205719 | |
| RT-qPCR | 总RNA提取试剂盒 | Invitrogen | -- |
| 逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | -- | |
| SYBR Green实时PCR预混液 | Toyobo | -- | |
| ELISA | IL-6 ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0007 |
| MCP-1 ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0108 | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0034 | |
| IL-1β ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0002 | |
| IL-13 ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0014 | |
| iNOS ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0270 | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0010 | |
| IL-4 ELISA试剂盒 | Solarbio | SEKM-0005 | |
| MerTK ELISA试剂盒 | Abcam | ab210572 | |
| 细胞功能实验 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| pHrodo-red荧光染料 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | -- | -- |
| 动物模型 | ADAM17过表达腺病毒 | VectorBuilder | -- |
| 阴性对照腺病毒 | VectorBuilder | -- | |
| 组织病理学 | HE染色试剂盒 | Solarbio | G1120-100 |
| TUNEL检测试剂盒 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 柠檬酸盐缓冲液 | Solarbio | -- | |
| 蛋白酶K | -- | -- | |
| 过氧化氢 | -- | -- | |
| 免疫荧光 | 抗CD68抗体 | Abcam | ab213363 |
| 抗ADAM17抗体 | Abcam | ab39162 | |
| 抗MerTK抗体 | Abcam | ab300136 | |
| 抗CD206抗体 | Abcam | ab64693 | |
| 抗CD86抗体 | Abcam | ab213045 | |
| 山羊抗兔IgG H&L (Alexa Fluor 594)二抗 | Abcam | ab150080 | |
| 山羊抗小鼠IgG H&L (Alexa Fluor 488)二抗 | Abcam | ab150113 | |
| 山羊抗兔IgG H&L (Alexa Fluor 488)二抗 | Abcam | ab150077 | |
| DAPI染色液 | Solarbio | C0065 | |
| 流式细胞术 | 抗CD68抗体 | Abcam | ab283654 |
| 抗CD86抗体 | Abcam | ab242142 | |
| 抗CD206抗体 | Bioss | bs-4727R | |
| 山羊抗兔IgG (Alexa Fluor 488)二抗 | Abcam | ab150081 | |
| 肾功能检测 | 肌酐检测试剂盒 | JianCheng Bioengineering Institute | C011-2-1 |
| 尿素氮检测试剂盒 | JianCheng Bioengineering Institute | C013-1-1 | |
| 细胞处理 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞培养 | 小鼠肾巨噬细胞完全培养基 | Punosai Life Technology | CM-M187 |
| 小鼠肾巨噬细胞 | Punosai Life Technology | CP-M187 | |
| Jurkat细胞 | -- | -- | |
| EV分离 | 0.22 μm细胞过滤器 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ADSC-EVs分离与鉴定 | ADSCs培养条件、EV分离参数(转速、时间)、GW4869处理浓度和时长,以及表面标志物抗体用量。 阅读提示:Materials and methods 中的“Separation, identification and grouping of ADSC-EVs”部分。 |
| S-AKI小鼠模型建立 | 小鼠品系、性别、周龄、体重、CLP手术细节(结扎位置、针头规格、穿刺次数)、术后镇痛和补液、分组数及每组动物数。 阅读提示:Materials and methods 中的“Establishment and grouping of the S-AKI mouse model”部分。 |
| 细胞处理与转染 | LPS和EVs的浓度、处理时间,oe-ADAM17和si-MerTK的转染浓度、转染试剂及时间。 阅读提示:Materials and methods 中的“Cell grouping and treatment”部分。 |
| 胞葬作用检测 | 凋亡Jurkat细胞的制备(紫外照射时间和剂量)、pHrodo-red标记浓度、共培养比例和时间。 阅读提示:Materials and methods 中的“Cell grouping and treatment”和“Immunofluorescence”部分。 |
| 肾功能检测 | 血清收集方法、离心参数、检测试剂盒的型号和使用步骤。 阅读提示:Materials and methods 中的“Kidney function tests”部分。 |
| 组织病理学检测 | 固定剂和固定时间、切片厚度、染色试剂盒和染色步骤、评分标准。 阅读提示:Materials and methods 中的“HE staining”和“TUNEL staining”部分。 |
| 免疫荧光 | 一抗和荧光二抗的浓度、孵育时间和温度、封片剂和图像分析软件。 阅读提示:Materials and methods 中的“Immunofluorescence”部分。 |
| Western blot | 蛋白提取方式、抗体种类、稀释比例、孵育条件和内参蛋白。 阅读提示:Materials and methods 中的“Western blot”部分。 |