胰岛β细胞中WTAP的缺失导致小鼠β细胞衰竭和糖尿病

Deficiency of WTAP in islet beta cells results in beta cell failure and diabetes in mice

作者信息Xinzhi Li, Ying Yang, Zhenzhi Li, Yuqin Wang, Jingting Qiao, Zheng Chen
PMID36920524
发布时间2023-06
DOI10.1007/s00125-023-05900-z

实验完整度

包含细胞实验、基因敲除小鼠模型、RNA-seq和MeRIP-seq等多层级证据,并进行功能验证和机制验证。

主要模型

INS-1 832/13细胞 Wtap-betaKO小鼠(β细胞特异性Wtap敲除) Wtap-betaKO/Mettl3-betaOE小鼠(β细胞特异性Mettl3过表达)

重点核对

Wtap-betaKO小鼠的基因型为Wtapflox/floxRIP-Cre+/−,对照为Wtapflox/flox小鼠 Wtap-betaKO小鼠从4周龄开始血糖升高,8周龄后持续高于20 mmol/l(360 mg/dl) 体外GSIS测定使用基础葡萄糖浓度2.8 mmol/l和高糖浓度16.7 mmol/l 细胞因子处理使用TNF-α 20 ng/ml、IL-1β 20 ng/ml和IFN-γ 200 ng/ml RNA-seq和MeRIP-seq数据已存储于GEO(GSE215156和GSE215360)

摘要

目的/假设:N6-甲基腺苷(m6A)mRNA甲基化及m6A相关蛋白(METTL3、METTL14和YTHDC1)已被证明可调节胰岛β细胞功能和糖尿病的发病机制。然而,WTAP(m6A RNA甲基转移酶复合物的关键调节因子)是否在糖尿病发病过程中调节胰岛β细胞衰竭在很大程度上尚不清楚。本研究旨在探讨WTAP在调节胰岛β细胞衰竭和糖尿病中的作用。方法:本研究构建了胰岛β细胞特异性Wtap敲除和β细胞特异性Mettl3过表达小鼠。检测了血糖、葡萄糖耐量、血清胰岛素、葡萄糖刺激的胰岛素分泌(体内和体外)、胰岛素水平、胰高血糖素水平和β细胞凋亡。进行了RNA-seq和MeRIP-seq,并对数据进行了充分分析。结果:在2型糖尿病中,由于脂毒性和慢性炎症,胰岛β细胞中WTAP下调,而胰岛β细胞特异性缺失Wtap(Wtap-betaKO)诱导β细胞衰竭和糖尿病。Wtap-betaKO小鼠从8周龄起表现出严重高血糖(高于20 mmol/l [360 mg/dl])。机制上,WTAP缺乏通过降低METTL3蛋白水平,减少m6A mRNA修饰,并降低胰岛β细胞特异性转录因子和胰岛素分泌相关基因的表达。胰岛β细胞特异性过表达Mettl3部分逆转了Wtap-betaKO小鼠观察到的异常。结论/解释:WTAP通过依赖METTL3调节m6A mRNA修饰,在维持β细胞功能中发挥关键作用,WTAP下调导致β细胞衰竭和糖尿病。数据可用性:本研究期间生成的RNA-seq和MeRIP-seq数据集可在Gene Expression Omnibus数据库存储库中获取(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE215156; https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE215360)。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
WTAP是否通过METTL3依赖的m6A mRNA修饰调节胰岛β细胞功能,其下调是否导致β细胞衰竭和糖尿病。
核心机制
WTAP通过与METTL3相互作用维持METTL3蛋白稳定性,调控m6A mRNA修饰,进而影响胰岛β细胞特异性转录因子(如Mafa、Nkx6-1、Pdx1等)和胰岛素分泌相关基因的表达。WTAP缺失导致METTL3蛋白水平下降,m6A修饰减少,最终导致β细胞功能衰竭。
主要证据
通过Wtap-betaKO小鼠模型,观察到高血糖、胰岛素分泌受损、β细胞凋亡增加和胰岛素阳性面积减少;RNA-seq和MeRIP-seq显示相关基因表达和m6A修饰降低;Mettl3过表达部分逆转这些异常。
研究意义
揭示WTAP在维持β细胞功能和血糖稳态中的关键作用,为理解糖尿病发病机制提供新视角,提示维持m6A水平可能成为治疗β细胞衰竭和糖尿病的潜在策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

检测WTAP在糖尿病胰岛中的表达

评估WTAP在2型糖尿病胰岛β细胞中的表达变化及其潜在调控因素。

分析公开的胰岛单细胞RNA-seq数据(GSE153855)中Wtap的表达;分离C57BL/6小鼠原代胰岛和培养INS-1 832/13细胞,用PA或细胞因子处理,通过qRT-PCR和免疫印迹检测Wtap mRNA和WTAP蛋白水平。

2

构建β细胞特异性Wtap敲除小鼠并评估表型

确定β细胞特异性Wtap缺失是否导致β细胞衰竭和糖尿病。

通过Wtapflox/flox小鼠与RIP-Cre小鼠杂交构建Wtap-betaKO小鼠,监测血糖、葡萄糖耐量、血清胰岛素、胰岛素含量、β细胞凋亡和胰高血糖素水平。

3

转录组和表观转录组分析

揭示Wtap缺失对胰岛基因表达和m6A修饰的影响。

对Wtap-betaKO和对照小鼠分离的胰岛进行RNA-seq和MeRIP-seq,分析差异表达基因、KEGG通路、GO富集以及m6A峰变化。

4

验证WTAP与METTL3的相互作用及METTL3稳定性

确认WTAP是否与METTL3结合并影响其蛋白稳定性。

在INS-1 832/13细胞中过表达FLAG-METTL3或FLAG-WTAP,通过免疫共沉淀和免疫印迹检测相互作用;在Wtap-betaKO胰岛中检测METTL3蛋白和mRNA水平。

5

通过Mettl3过表达进行功能恢复实验

检验METTL3过表达能否挽救Wtap缺失引起的β细胞衰竭和糖尿病。

将Wtap-betaKO小鼠与Mettl3-betaOE小鼠杂交,构建Wtap-betaKO/Mettl3-betaOE小鼠,评估血糖、体重、葡萄糖耐量、胰岛素敏感性、血清胰岛素、胰岛素含量和胰岛素阳性面积等指标。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
CRISPR-Cas9----
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
β-巯基乙醇----
肿瘤坏死因子-α----
白细胞介素-1β----
干扰素-γ----
棕榈酸----
胶原酶PRoche Diagnostics--
抗FLAG抗体SigmaF1804
抗METTL3抗体CST96391
抗FLAG抗体Proteintech20543-1-AP
抗β-肌动蛋白抗体Proteintech60008-1-lg
抗WTAP抗体Proteintech10200-1-lg
山羊抗小鼠IgG(H+L)HRP二抗ZSGB-BIOZB-2305
山羊抗兔IgG(H+L)HRP二抗ZSGB-BIOZB-2301
抗胰岛素抗体DakoA0564
抗胰高血糖素抗体SigmaG2654
山羊抗豚鼠IgG(H+L)AF488二抗Biossbs-0358G-AF488
cy3山羊抗小鼠IgG(H+L)二抗APExBIOK1207
细胞死亡检测试剂盒Roche Diagnostics--
胰高血糖素ELISA试剂盒R&D SystemsDGCG0
胰岛素ELISA试剂盒EZassayMS100
GraphPad PrismGraphPad Softwareversion 6.02
SPSSSPSS21.0

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型构建
基因型:Wtap-betaKO为Wtapflox/floxRIP-Cre+/−;对照为Wtapflox/flox。品系背景:C57BL/6J。
阅读提示:Methods: Animal experiments
细胞培养与处理
INS-1 832/13细胞培养条件:37°C,5% CO2,RPMI-1640+10% FBS+50 mmol/l β-巯基乙醇。处理:PA 0.5 mmol/l或细胞因子(TNF-α 20 ng/ml, IL-1β 20 ng/ml, IFN-γ 200 ng/ml)过夜。
阅读提示:Methods: Cell culture
胰岛分离
使用HBSS(pH 7.4)含5 mmol/l葡萄糖和1 mg/ml胶原酶P,37°C孵育10分钟。
阅读提示:Methods: Pancreatic islet isolation
GSIS测定
体外GSIS检测基础葡萄糖浓度2.8 mmol/l,高糖浓度16.7 mmol/l。体内GSIS方法见ESM。
阅读提示:Methods: Pancreatic islet isolation; Figure 2 legend; ESM Methods
组织学分析
胰腺固定:4% PFA 3小时,30%蔗糖过夜;切片厚度10 μm,间距>200 μm;每个小鼠取5张切片。
阅读提示:Methods: Immunostaining and TUNEL assays