光感受器炎症信号通过c-Fos调控病理性视网膜血管生成

Inflammatory signals from photoreceptor modulate pathological retinal angiogenesis via c-Fos

作者信息Ye Sun, Zhiqiang Lin, Chi-Hsiu Liu, Yan Gong, Raffael Liegl, Thomas W Fredrick, Steven S Meng, Samuel B Burnim, Zhongxiao Wang, James D Akula, William T Pu, Jing Chen, Lois E H Smith
PMID28465464
期刊J Exp Med
发布时间2017-06-05
DOI10.1084/jem.20161645

实验完整度

包含体外光感受器细胞实验(661W细胞)、Vldlr−/−小鼠模型、AAV介导的基因敲低、化学抑制剂处理、视网膜层切片定量、功能学ERG检测等多层级验证。

主要模型

Vldlr−/−小鼠(病理性视网膜血管生成模型) 661W光感受器细胞系

重点核对

Vldlr−/−小鼠在P12–P17出现光感受器层新生血管 AAV2-hRK-sh_c-fos亚视网膜注射在P1,注射后约60%knockdown效率 SR11302处理剂量(低剂量0.5mg/kg,高剂量1mg/kg,P5至P15) si_c-fos池(三个siRNA序列,Ambion cat. 4390771) AAV2-hRK-sh_Vegfa敲低VEGFA验证

摘要

病理性新生血管长入通常无血管的光感受器层导致许多眼病(如年龄相关性黄斑变性和黄斑毛细血管扩张症)中的视力丧失。眼部新生血管与炎症密切相关,但炎症信号的来源及这些信号调控光感受器无血管特权破坏的机制尚不清楚。本研究发现,在病理性血管侵入光感受器的模型——极低密度脂蛋白受体缺陷(Vldlr−/−)小鼠中,光感受器中的c-Fos(一种主炎症调节因子)增加。升高的c-Fos诱导炎症细胞因子白细胞介素6(IL-6)和肿瘤坏死因子(TNF),导致Vldlr−/−光感受器中信号转导与转录激活因子3(STAT3)的激活及TNFα诱导蛋白3(TNFAIP3)的增加。IL-6直接激活STAT3/血管内皮生长因子A(VEGFA)通路,而升高的TNFAIP3间接抑制SOCS3(细胞因子信号转导抑制因子3)激活的STAT3/VEGFA。使用光感受器特异性AAV(腺相关病毒)-hRK(人视紫红质激酶)-sh_c-fos或化学抑制剂抑制c-Fos能显著减少Vldlr−/−小鼠的病理性新生血管并挽救视觉功能。这些发现提示光感受器c-Fos通过炎症信号诱导的STAT3/VEGFA通路控制血管长入通常无血管的光感受器层。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在Vldlr−/−小鼠模型中,光感受器产生的炎症信号是否以及如何调控病理性血管侵入无血管的光感受器层?
核心机制
光感受器中c-Fos的升高诱导IL-6和TNF,分别通过直接激活STAT3/VEGFA通路和通过TNFAIP3抑制SOCS3间接增强STAT3/VEGFA信号,从而促进病理性血管生成。
主要证据
Vldlr−/−小鼠光感受器层c-Fos表达升高,AAV-sh_c-fos敲低c-Fos或化学抑制剂SR11302可减少新生血管并改善ERG功能;661W细胞中敲低Vldlr升高c-Fos及其下游基因,敲低c-Fos可逆转表达变化。
研究意义
该研究提出靶向c-Fos可能为阻断病理性视网膜血管生成提供新方法,特别是对anti-VEGF治疗不敏感的患者,并可能对涉及光感受器微环境炎症的其他血管性疾病具有治疗价值。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

Vldlr−/−小鼠模型表型分析

确认Vldlr−/−小鼠是否存在光感受器层新生血管、血管渗漏及炎症相关基因表达变化。

通过3D重建、FFA、HE染色及RT-PCR检测,评估新生血管、血管渗漏及炎症因子表达。

2

c-Fos表达定位与定量

确定c-Fos在Vldlr−/−视网膜中的表达水平、细胞定位及其与Vldlr表达的关系。

采用IHC、Western blot和视网膜分层切片的RT-PCR分析c-Fos mRNA和蛋白表达。

3

敲低c-Fos验证功能

验证通过RNA干扰或AAV-shRNA敲低c-Fos是否能抑制新生血管并保护视觉功能。

使用si_c-fos(P1玻璃体腔注射或亚视网膜注射)和AAV2-hRK-sh_c-fos亚视网膜注射,通过RT-PCR、Western blot、IB4染色、FFA和ERG评估。

4

信号通路验证

验证c-Fos下游IL-6/STAT3/VEGFA和TNF/TNFAIP3/SOCS3通路在调节VEGFA和新生血管中的作用。

检测通路分子表达,使用AAV-sh_Vegfa敲低VEGFA,使用lenti-Socs3过表达SOCS3。

5

药理学抑制c-Fos

评估c-Fos抑制剂SR11302能否通过抑制AP-1活性减少新生血管。

SR11302口服给药于Vldlr−/−小鼠P5–P15,然后分析新生血管数量与大小。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RIPA裂解液Thermo Fisher Scientific89900
蛋白酶抑制剂混合物Sigma-AldrichP8340
NuPAGE Novex Bis-Tris凝胶InvitrogenNP0321BOX
DMEM培养基----
胎牛血清----
氢化可的松Sigma-AldrichH-2270
孕酮Sigma-AldrichP-8783
腐胺Sigma-AldrichP-7505
β-巯基乙醇Sigma-AldrichM-6250
聚乙烯亚胺Sigma-Aldrich--
SR11302Tocris Bioscience2476
异凝集素IB4Invitrogen121413
DAPIInvitrogenD3571
SOCS3抗体Cell Signaling Technology2923
IBA1抗体Wako Pure Chemical Industries019-19741
CX3CR1抗体Biossbs-1728R
β-肌动蛋白抗体Sigma-AldrichA1978
AK-FLUOR荧光素Akorn--
si_c-fos混合物Ambion4390771
RNeasy试剂盒QIAGEN--
SuperScript III逆转录酶Thermo Fisher Scientific--
SYBR FAST qPCR试剂盒Kapa Biosystems--
小鼠WG6表达BeadChipIllumina--
BeadArray读板器Illumina--
AxioObserver.Z1显微镜ZEISS--
AxioCam MRm相机ZEISS--
TCS SP2 AOBS共聚焦显微镜Leica Biosystems--
ImageJ软件National Institutes of Health--
Volocity软件PerkinElmer--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
Vldlr−/−小鼠来源(The Jackson Laboratory stock no. 002529)、基因型鉴定方法、饲养条件(SPF)
阅读提示:Materials and methods: Animals
新生血管定量
定量方法(SWIFT_MACTEL)、n值(每眼)、病灶最小尺寸(100像素)、图像采集标准(P16)
阅读提示:Materials and methods: Neovascularization analysis
AAV基因敲低
AAV血清型(AAV2)、启动子(hRK)、shRNA序列、病毒滴度(约2×10^12 GC/ml)、注射时间(P1)、注射体积(约0.5µl)、转染效率(75-80%)
阅读提示:Materials and methods: Preparation of AAV2-hRK-sh_c-fos vector and AAV2, Subretinal injection
siRNA敲低
siRNA靶序列、剂量、注射方式(亚视网膜)、敲低效率(约40-50%)
阅读提示:Materials and methods: Subretinal injection
药物处理
SR11302剂量(0.5或1 mg/kg/天)、给药方式(口服灌胃)、时间(P5-P15)、溶剂(玉米油)
阅读提示:Materials and methods: Animals
信号通路验证
lenti-Socs3构建、注射剂量、SOCS3过表达效率、VEGFA检测条件
阅读提示:Materials and methods: Preparation of lenti-Socs3 vector and virus, Results 4