TCGA转录组分析CD8+ T细胞浸润及临床病理特征
比较HT-PTC与非HT-PTC在临床特征和CD8+ T细胞浸润上的差异。
从TCGA数据库获取PTC患者的RNA表达数据和临床信息,根据HT状态分组,使用CIBERSORT算法估计CD8+ T细胞浸润比例,并比较临床病理特征。
CD8+ T Cells in Hashimoto's Thyroiditis-Associated Papillary Thyroid Carcinoma
包含TCGA转录组分析、临床组织样本验证、原代CD8+ T细胞分离及功能实验(细胞因子分泌、共培养抑制、增殖迁移)等多个独立实验层级,并进行了机制相关验证。
TCGA PTC患者队列 临床手术切除的PTC组织样本(HT-PTC与非HT-PTC) 原代CD8+ T细胞(来源于肿瘤组织、癌旁组织及外周血) 甲状腺乳头状癌细胞系TPC-1
HT-PTC与非HT-PTC的分组标准(病理学淋巴ocytic甲状腺炎及甲状腺自身抗体阳性) 原代CD8+ T细胞分离组织来源及纯度(>70%) 共培养实验效靶比(5:1)及时间点(6、12、24、48小时) 功能检测的刺激条件(PMA、离子霉素、BFA)及时间(6小时)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
比较HT-PTC与非HT-PTC在临床特征和CD8+ T细胞浸润上的差异。
从TCGA数据库获取PTC患者的RNA表达数据和临床信息,根据HT状态分组,使用CIBERSORT算法估计CD8+ T细胞浸润比例,并比较临床病理特征。
在独立临床样本中验证HT-PTC中CD8+ T细胞浸润的增加。
收集71例PTC手术标本(19例HT-PTC,52例非HT-PTC),通过RT-PCR检测CD8A mRNA表达,IHC检测CD8A阳性细胞,流式细胞术检测CD3+CD8+ T细胞比例。
评估HT-PTC来源的CD8+ T细胞的耗竭相关特征、细胞因子分泌和细胞毒功能。
从17例肿瘤较大的患者(6例HT-PTC,11例非HT-PTC)及对照外周血中分离原代CD8+ T细胞,通过流式检测PD-1表达和刺激后细胞因子分泌,并通过mIF分析TIM-3、LAG-3和颗粒酶B表达。
验证HT-PTC肿瘤来源的CD8+ T细胞是否抑制甲状腺癌细胞增殖和迁移。
将扩增的CD8+ T细胞与TPC-1细胞按5:1效靶比共培养48小时,通过CCK8检测增殖抑制率,通过划痕实验和Transwell实验检测迁移能力,并检测共培养上清中细胞因子水平。
探索HT-PTC与非HT-PTC之间转录组差异及涉及的信号通路。
基于TCGA数据识别差异表达基因,进行GO、KEGG富集分析,构建PPI网络并鉴定枢纽基因。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Gibco | 11875093 |
| 胎牛血清 | BI | 04-001-1B | |
| 青霉素-链霉素 | Solarbio | P1400 | |
| CD8+ T细胞培养 | 重组人白细胞介素-2 | PeproTech | 200-02-50UG |
| 组织采集 | 组织保存液 | Bio-channel | BC-CFM-03 |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Life Technologies Corporation | -- |
| RT-PCR | 逆转录试剂盒 | TaKaRa | RR036A |
| 实时PCR试剂盒 | TaKaRa | RR820A | |
| IHC | 免疫组化封闭液 | Beyotime | P0102 |
| CD8a抗体 | Servicebio | GB115692-100 | |
| mIF | CD8a抗体 | Proteintech | 66868-1-Ig |
| TIM3抗体 | Proteintech | 11872-1-AP | |
| LAG3抗体 | Proteintech | 29548-1-AP | |
| 颗粒酶B抗体 | Proteintech | 13588-1-AP | |
| iF440-酪胺 | Servicebio | G1250 | |
| iF488-酪胺 | Servicebio | G1231 | |
| iF555-酪胺 | Servicebio | G1233 | |
| iF647-酪胺 | Servicebio | G1232 | |
| mIF扫描 | Pannoramic MIDI数字切片扫描仪 | 3DHISTECH | -- |
| mIF分析 | HALO平台 | Indica Labs | -- |
| 细胞因子检测 | IL-2 ELISA试剂盒 | 4A BIOTECH | CHE0057-096 |
| IFN-γ ELISA试剂盒 | 4A BIOTECH | CHE0017-096 | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | 4A BIOTECH | CHE0019-096 | |
| 组织消化 | II型胶原酶 | MKbio | 9001-12-1 |
| 脱氧核糖核酸酶 | MKbio | 9003-98-9 | |
| PBMC分离 | 淋巴细胞分离液 | Solarbio | P8610 |
| CD8+ T细胞分选 | CD8+ T细胞分选试剂盒 | Biolegend | 480011 |
| 细胞刺激 | 佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯 | GLPBIO | GN10444 |
| 离子霉素 | GLPBIO | GC15148 | |
| 布雷菲德菌素A | GLPBIO | GC17683 | |
| 流式细胞术 | PD1-APC抗体 | 4A BIOTECH | -- |
| IL-2-APC抗体 | Elabscience | -- | |
| IFN-γ-APC抗体 | 4A BIOTECH | -- | |
| TNF-α-APC抗体 | 4A BIOTECH | -- | |
| T细胞活化 | CD3/CD28 T细胞激活剂 | STEMCELL | 10991 |
| 流式细胞术 | CD3-PE抗体 | Elabscience | -- |
| CD8a-FITC抗体 | Elabscience | -- | |
| 流式细胞仪(BD FACSCanto) | BD | -- | |
| CCK8实验 | CCK8试剂盒 | TargetMol | C0005 |
| 细胞培养 | TPC-1细胞系 | American Type Culture Collection | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| TCGA数据分析 | HT状态判定标准(病理学淋巴细胞性甲状腺炎注释);纳入的PTC亚型(经典型和滤泡型);排除标准;CIBERSORT算法参数 阅读提示:Materials and Methods: Analysis of immune cell infiltration |
| 临床样本收集 | 样本来源中心;纳入和排除标准;HT定义(组织学+自身抗体);肿瘤大小选择标准(≥1cm) 阅读提示:Materials and Methods: Clinical tissue samples |
| RT-PCR检测CD8A | 引物序列;RNA提取方法;逆转录和PCR试剂盒;内参基因(GAPDH) 阅读提示:Materials and Methods: Total RNA extraction and real-time PCR (RT-PCR) |
| IHC和mIF染色 | 一抗抗体信息(CD8a, TIM3, LAG3, Granzyme B);稀释比例;抗原修复条件;TSA试剂及顺序;扫描仪和定量平台 阅读提示:Materials and Methods: Immunohistochemistry (IHC) staining and multiplex immunofluorescence (mIF) analysis |
| 原代CD8+ T细胞分离 | 样本来源(肿瘤组织、癌旁组织、外周血);分离方法(负选磁珠);纯度评估标准(>70%);细胞活力(92.6%±2.1%) 阅读提示:Materials and Methods: Isolation of primary CD8+ T cells |
| CD8+ T细胞功能检测 | 刺激物及浓度(PMA 50 ng/mL, Ionomycin 1 μg/mL, BFA 10 μg/mL);刺激时间(6小时);检测的细胞因子(IL-2, IFN-γ, TNF-α)和表面分子(PD-1) 阅读提示:Materials and Methods: Functional assay of primary CD8+ T cells |
| CD8+ T细胞活化 | 活化剂及浓度(CD3/CD28 activator 25 μL/mL);培养时间(3天);细胞密度(1×10^6 cells/mL) 阅读提示:Materials and Methods: Activation of primary CD8+ T cells |
| 共培养实验 | 效靶比(5:1);共培养时间(48小时);CD8+ T细胞扩增时间(14天);TPC-1培养时间(14天);重复孔设置(双复孔) 阅读提示:Materials and Methods: Coculture of TPC-1 and CD8+ T cells |
| 增殖和迁移检测 | CCK8检测时间点(1-7天);划痕实验初始创口(200 μL枪头);观察时间(24、48、72小时);Transwell迁移时间(24小时);细胞密度 阅读提示:Materials and Methods: CCK8 proliferation assay, Wound healing assay, Transwell migration assay |