角膜中肌源性分化(MyoD)基因表达及其在角膜肌成纤维细胞去分化中的作用

Myogenic Differentiation (MyoD) Gene Expression in Cornea and Role in Corneal Myofibroblast Dedifferentiation

作者信息Ratnakar Tripathi, Nishant R Sinha, Swati Sood, Suneel Gupta, Rajnish Kumar, Prashant R Sinha, Praveen K Balne, Shyam S Chaurasia, Arkasubhra Ghosh, Rajiv R Mohan
PMID41784334
发布时间2026-03
DOI10.1167/iovs.67.3.7

实验完整度

高

包含体内兔模型、人供体角膜样本、体外细胞培养及分子检测,并进行了功能验证(shRNA沉默)和机制探索。

主要模型

新西兰白兔角膜纤维化模型 人供体角膜(非纤维化和纤维化) 人角膜基质成纤维细胞(CSFs)及角膜肌成纤维细胞(CMFs)体外模型

重点核对

MyoD在非纤维化和纤维化人及兔角膜中的表达差异 MyoD shRNA沉默对CMFs形态和αSMA表达的影响 MyoD shRNA沉默对促纤维化基因(FN、Col-I、Col-IV)mRNA水平的影响 MyoD shRNA沉默对中间丝(波形蛋白、结蛋白)和增殖标志物(Ki67)的影响 MyoD shRNA递送对兔角膜瘢痕形成的影响(Fantes评分)

摘要

目的:肌源性分化(MyoD)是一种II类碱性螺旋-环-螺旋转录因子,调控多种细胞功能,包括多个器官的纤维化,但在角膜中尚不清楚。本研究表征了MyoD在非纤维化和纤维化兔及人供体角膜中的表达,并研究了MyoD基因沉默对体外角膜肌成纤维细胞去分化和体内纤维化的影响。方法:使用新西兰白兔、人供体角膜、人角膜基质成纤维细胞(CSFs)和人角膜肌成纤维细胞(CMFs)。通过Lipofectamine 3000将MyoD shRNA或 scrambled shRNA递送至CMFs,并通过2-kDa聚乙烯亚胺偶联金纳米颗粒(PEI2-GNPs)递送至兔角膜。定量实时聚合酶链反应(qRT-PCR)、免疫荧光和蛋白质印迹定量了CMF中MyoD基因沉默前后促纤维化基因、中间丝、成纤维细胞特异性蛋白1(FSP1)和增殖标志物Ki67的表达。结果:在人及兔角膜上皮、基质和内皮中检测到MyoD表达。纤维化人角膜(P < 0.001)和兔角膜(P < 0.0001)中MyoD水平显著高于相应的非纤维化角膜。此外,CMF中MyoD水平显著高于CSF(P < 0.0001)。与scrambled shRNA递送的CMF相比,MyoD shRNA沉默的CMF获得了典型的成纤维细胞表型,并显示出纤维化基因、α平滑肌肌动蛋白(αSMA;P < 0.0001)、纤连蛋白(FN;P = 0.0015)、I型胶原(ColI;P = 0.0011)和IV型胶原(ColIV;P = 0.0053)mRNA水平降低。此外,免疫荧光显示,与scrambled shRNA递送的CMF相比,MyoD shRNA沉默的CMF中波形蛋白(P < 0.001)、FSP1(P < 0.01)和Ki67(P = 0.0349)表达增加,结蛋白表达降低(P < 0.001)。MyoD shRNA递送的兔角膜在体内疤痕较少(P = 0.368)。结论:MyoD在角膜中表达,可能改善受损角膜的CMF去分化和纤维化。需要进一步研究来确定MyoD在角膜纤维化管理中的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
MyoD在角膜中的表达及其在角膜肌成纤维细胞去分化和纤维化中的作用尚不清楚,本研究旨在探讨。
核心机制
MyoD作为转录因子,调控TGFβ1诱导的角膜肌成纤维细胞分化,通过影响αSMA、促纤维化基因及中间丝的表达来调节纤维化进程。
主要证据
在体内兔角膜纤维化模型和人纤维化角膜中,MyoD表达升高并与αSMA共定位;体外MyoD shRNA沉默导致CMFs向成纤维细胞表型去分化,降低αSMA、FN、Col-I、Col-IV表达,增加vimentin、Ki67和FSP1表达;体内MyoD shRNA递送观察到瘢痕减少(P=0.368)。
研究意义
该研究为通过MyoD沉默诱导肌成纤维细胞去分化以减轻角膜纤维化提供了概念验证,可能为角膜纤维化的治疗提供新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

检测MyoD在正常角膜和角膜细胞中的表达

确认MyoD在角膜中的基础表达情况。

通过RT-PCR、Western blot和免疫荧光检测人角膜上皮、基质和内皮细胞及组织切片中MyoD的表达。

2

比较纤维化与非纤维化角膜中MyoD和αSMA的表达

探究MyoD是否在角膜纤维化中表达上调并共表达。

对碱烧伤诱导的兔纤维化角膜和患者纤维化角膜进行MyoD和αSMA的免疫荧光双标,并定量阳性细胞数。

3

体外诱导角膜肌成纤维细胞并验证MyoD表达

在体外验证MyoD在TGFβ1诱导的肌成纤维细胞转分化过程中的表达。

用TGFβ1(5 ng/mL)处理CSFs 72小时,通过qRT-PCR、Western blot和免疫荧光检测αSMA和MyoD表达及时间变化。

4

shRNA沉默MyoD并评估CMFs去分化表型

验证MyoD沉默是否导致CMFs去分化为成纤维细胞表型。

将MyoD shRNA或scrambled shRNA通过Lipofectamine 3000递送至CMFs(TGFβ1处理),观察细胞形态变化,并检测αSMA、FN、ColI、ColIV、vimentin、desmin、Ki67、FSP1等表达。

5

体内MyoD基因沉默对兔角膜纤维化的影响

评估MyoD shRNA递送是否减少兔角膜瘢痕形成。

碱烧伤后1天,通过PEI2-GNPs递送MyoD shRNA或scrambled shRNA至兔角膜,在1、2、3周通过裂隙灯检查评估角膜混浊(Fantes评分)。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Lipofectamine 3000InvitrogenL3000001
RNeasy微型试剂盒QIAGEN74126
NanoDrop微量分光光度计----
AMV逆转录酶Promega--
GoTaq Flexi缓冲液Promega--
GoTaq热启动聚合酶Promega--
MyCycler热循环仪Bio-Rad Laboratories--
StepOnePlus实时PCR系统Applied Biosystems--
SYBR Green qPCR SuperMixApplied Biosystems--
MyoD抗体Santa Cruz Biotechnologysc-377460
αSMA抗体DakoM0851
Ki67抗体Cell Signaling Technology9129T
FSP1抗体Abcamab-41532
波形蛋白多克隆抗体InvitrogenPA1-16759
结蛋白多克隆抗体InvitrogenPA5-19063
二抗InvitrogenA-11042,
VECTASHIELD封片剂Vector LaboratoriesH1200
Leica DM4000B荧光显微镜Leica Microsystems--
SPOT RT KE数码相机SPOT Imaging--
RIPA裂解缓冲液Thermo Fisher Scientific89900
蛋白酶抑制剂混合物Santa Cruz Biotechnologysc-506202
NuPAGE LDS样品缓冲液Thermo Fisher Scientific--
Invitrogen Bis-Tris微型蛋白凝胶Invitrogen--
Trans-Blot Turbo转印系统Bio-Rad Laboratories17041150
GAPDH抗体Santa Cruz Biotechnologysc-47724
C-DiGit印迹扫描仪LI-COR Biosciences--
ImageJNational Institutes of Health--
Prism 9.2GraphPad--
丙美卡因----
转化生长因子β1PeproTech--
PEI2-金纳米颗粒----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外细胞培养和CMF诱导
CSFs培养代数、血清饥饿时间、TGFβ1浓度(5 ng/mL)和处理时间(72小时)
阅读提示:Methods: Primary Human Corneal Cell Cultures and In Vitro Corneal Fibrosis Model
shRNA基因沉默
shRNA质粒序列、转染试剂(Lipofectamine 3000)用量(2 μg质粒+10 μL试剂)、细胞密度(70%)、孵育条件(20分钟RT,37°C 72小时)
阅读提示:Methods: shRNA Gene Silencing in Human CMFs In Vitro and Rabbit Cornea In Vivo
兔角膜纤维化模型和MyoD shRNA递送
碱烧伤条件(0.5-N NaOH,8mm滤纸,30秒)、PEI2-GNPs与DNA比例(N/P=180)、递送时间(碱烧伤后1天)
阅读提示:Methods: In Vivo Rabbit Studies and shRNA Gene Silencing in Rabbit Cornea In Vivo
免疫荧光检测
抗体稀释倍数(1:500)、孵育条件(4°C过夜)、二抗稀释倍数(1:1000)和孵育时间(1小时RT)
阅读提示:Methods: Immunofluorescence
Western blot检测
细胞裂解液(RIPA)、蛋白上样量(60 μg)、凝胶类型(10% Bis-Tris)、转膜条件(25V)、一抗稀释(1:1000)和二抗稀释(1:5000)
阅读提示:Methods: Western Blot
基因表达分析
qRT-PCR引物序列、反应条件(95°C 10分钟初始变性,40个循环95°C 15秒,60°C 60秒)、内参基因(GAPDH)
阅读提示:Methods: Quantitative Real-Time PCR and Table
体内纤维化评估
裂隙灯检查时间点(1、2、3周)、Fantes评分标准和观察者盲法
阅读提示:Methods: In Vivo Rabbit Studies and Results