评估[18F]F-DPA作为头颈癌中TSPO靶点,在正常条件和放疗后的作用

Evaluation of [18F]F-DPA as a target for TSPO in head and neck cancer under normal conditions and after radiotherapy

作者信息Sanni Tuominen, Thomas Keller, Nataliia Petruk, Francisco López-Picón, Dominik Eichin, Eliisa Löyttyniemi, Alejandra Verhassel, Johan Rajander, Jouko Sandholm, Johanna Tuomela, Tove J Grönroos
PMID33340054
发布时间2021-05
DOI10.1007/s00259-020-05115-z

实验完整度

包含体外细胞实验、体内异种移植瘤模型、离体生物分布、放射自显影、放射性代谢物分析及免疫组化等多层次验证,并通过TSPO siRNA和PK11195阻断实验进行功能性验证。

主要模型

FaDu细胞系 Cal33细胞系 FaDu肿瘤异种移植模型 Cal33肿瘤异种移植模型

重点核对

FaDu和Cal33细胞系;异种移植模型使用雌性裸鼠(Hsd:athymic Nude-Foxn1nu) 放疗方案:肿瘤局部照射5 Gy×2天(总10 Gy),细胞照射2 Gy×5天(总10 Gy) 示踪剂[18F]F-DPA注射剂量(MBq)和质量(ng) PK11195预处理剂量(1 mg,腹膜内注射,注射前30分钟) TSPO siRNA沉默效率(蛋白降低80%,mRNA降低54%)

摘要

背景:许多恶性肿瘤中TSPO表达增加,这与不良预后相关。TSPO-PET示踪剂在周围性肿瘤中尚未得到全面评估。本研究旨在评估N,N-二乙基-2-(2-(4-([18F]氟)苯基)-5,7-二甲基吡唑并[1,5-a]嘧啶-3-基)乙酰胺([18F]F-DPA)是否能反映放疗(RT)诱导的头颈部鳞状细胞癌(HNSCC)中TSPO活性的变化。方法:使用RT诱导HNSCC异种移植瘤和细胞中的炎症反应。在体内测量非照射和照射肿瘤中[18F]F-DPA的摄取,随后进行离体生物分布、放射自显影和放射性代谢物分析。在亲本和TSPO沉默(TSPO siRNA)细胞中进行体外研究。同时评估TSPO蛋白和mRNA表达,以及肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)。结果:体内成像和离体测量显示,与未照射肿瘤相比,照射肿瘤中[18F]F-DPA摄取显著升高。体外细胞标记研究证实了这一发现,而在TSPO siRNA细胞中未检测到RT对[18F]F-DPA摄取的影响。放射性代谢物分析显示,肿瘤中未改变的[18F]F-DPA含量为95%,照射后也是如此。PK11195预处理使异种移植瘤中[18F]F-DPA的肿瘤-血液比降低73%,在细胞中降低88%。RT后TSPO蛋白和mRNA水平升高,但变异性很大。RT后M1/M2 TAMs的比例下降,而单核细胞和迁移性单核细胞/巨噬细胞的比例增加。结论:[18F]F-DPA可以检测HNSCC中RT后TSPO表达水平的变化,这似乎并不反映炎症。但是,仍需要进一步的研究来阐明RT后TSPO调控的生理机制。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
评估[18F]F-DPA作为TSPO PET示踪剂,在放疗诱导的炎症条件下,能否反映头颈鳞状细胞癌(HNSCC)中TSPO活性的变化。
核心机制
放疗后HNSCC细胞和肿瘤中[18F]F-DPA摄取增加,且该摄取依赖于TSPO表达,但不依赖于炎症巨噬细胞;RT可能通过影响细胞代谢或ROS稳态(推测)导致TSPO表达变化。
主要证据
体内成像和离体测量显示照射肿瘤摄取显著升高;体外细胞实验证实RT诱导摄取增加,TSPO siRNA细胞无此效应;PK11195阻断使T/B比降低73%(肿瘤)和88%(细胞)。
研究意义
研究表明[18F]F-DPA可用于癌症TSPO成像,可能有助于评估预后和治疗反应;但需进一步研究RT后TSPO调控的生理机制。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

模型建立与放疗处理

建立HNSCC异种移植瘤模型,并通过局部放疗诱导炎症反应,以模拟临床放疗场景。

皮下接种FaDu或Cal33细胞于裸鼠后肢,当肿瘤直径达5-6 mm时,分为非照射(Ctrl)和照射(RT)组。对肿瘤局部照射5 Gy两次(总10 Gy)。同时培养FaDu细胞,照射2 Gy五次(总10 Gy)。

2

体内PET/CT成像

评估放疗后[18F]F-DPA在肿瘤中的摄取变化,并与[18F]FDG摄取比较。

分别在放疗后1周或2周,对FaDu和Cal33荷瘤小鼠进行PET/CT成像。注射[18F]F-DPA后20-40分钟采集静态图像,[18F]FDG在注射后60-80分钟采集。分析肿瘤摄取(% ID/mL)。

3

离体生物分布与放射自显影

定量评估[18F]F-DPA在不同组织中的分布,并可视化肿瘤内的放射性分布。

注射[18F]F-DPA后40分钟,处死小鼠,采集血液和组织,测量放射性并计算% ID/g。肿瘤切片进行放射自显影。

4

放射性代谢物分析

评估[18F]F-DPA在肿瘤和血浆中的代谢稳定性,以确认摄取是否代表完整的示踪剂。

注射后40分钟,取血浆和肿瘤样本,沉淀蛋白后通过薄层色谱(TLC)分析放射性代谢物,计算未变化示踪剂比例。

5

体外细胞摄取实验

在体外验证RT对[18F]F-DPA摄取的影响,并评估TSPO特异性和PK11195阻断效果。

对亲本FaDu、NT siRNA和TSPO siRNA细胞进行体外摄取实验。细胞暴露于[18F]F-DPA(0.5 MBq/mL)60分钟,部分实验用PK11195(10 μM)预处理。测量放射性计数并归一化至活细胞数。

6

分子表达分析

评估放疗后TSPO蛋白和mRNA表达变化,以及放疗诱导的DNA损伤。

通过Western blot检测TSPO和γH2Ax蛋白表达,通过RT-qPCR检测TSPO mRNA水平。

7

肿瘤微环境分析

评估放疗对肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)亚群的影响,以探讨巨噬细胞在[18F]F-DPA摄取中的作用。

从肿瘤中制备单细胞悬液,通过流式细胞术分析单核细胞、未成熟/迁移性巨噬细胞、M1和M2巨噬细胞的比例。

8

免疫组化分析

评估放疗后肿瘤中TSPO、cleaved caspase-3和phospho-histone H3的表达,以关联细胞增殖和凋亡。

对肿瘤切片进行免疫组化染色,使用QuPath软件定量阳性细胞百分比。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
L-谷氨酰胺----
MEM非必需氨基酸----
青霉素-链霉素----
HEPES缓冲液----
Accell siRNADharmacon Horizon Discovery--
TSPO siRNA----
非靶向siRNA----
Faxitron MultiRad 350照射仪Faxitron--
Inveon小动物PET/CTSiemens--
x-和β-cube小动物PET/CTMolecubes--
PK11195Sigma--
薄层色谱板Merck Millipore1.05567
γ计数器(2480 WIZARD2)PerkinElmer--
Fuji Analyzer BAS5000成像扫描仪Fuji--
低温恒温切片机(Microm HM 500 OM)Microm--
Cellometer auto 2000细胞计数仪Nexcelom--
RIPA裂解液----
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Thermo Scientific--
Mini-PROTEAN TGX预制蛋白凝胶Bio-Rad--
硝酸纤维素膜----
IRDye 800CW荧光二抗LI-COR Biosciences926-32213
IRDye 680 RD荧光二抗LI-COR Biosciences926-68072
LI-COR Odyssey CLx成像系统LI-COR--
TSPO抗体Abcamab109497
γH2A.x抗体Abcamab22551
GAPDH抗体Abcamab181602
RNeasy Plus Mini RNA提取试剂盒Qiagen--
Oligo d(T) 18 mRNA引物New England BioLabs--
dNTP混合物----
RiboLock RNA酶抑制剂Thermo Scientific--
反转录缓冲液----
Maxima反转录酶Thermo Scientific--
SsoAdvanced通用SYBR Green SupermixBio-Rad--
hTSPO引物Bio-Rad--
hTBP引物----
hRPLP0引物----
TSPO抗体Abcamab109497
Cleaved caspase-3抗体Cell Signaling Technology9664
Phospho-histone H3抗体Cell Signaling Technology9701
胶原酶DRoche--
DNA酶1Roche--
可固定活力染料eFluor 780eBioscience65-0865-14
CD11b FITC抗体BioLegend101206
Ly6G PerCP-Cy5.5抗体BD560602
F4/80 APC抗体eBiosience17-4801-82
MHCII PE抗体BD557000
Ly6C-BV421抗体BD562727
LSR Fortessa流式细胞仪BD Biosciences--
QuPath----
SAS系统SAS Institute--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系:FaDu和Cal33;培养基:DMEM补充10% FBS、L-谷氨酰胺、MEM NEAA、青霉素-链霉素;Cal33培养基额外含HEPES和丙酮酸钠
阅读提示:参见Materials and methods中的Cell culture部分
TSPO沉默
siRNA类型:Accell siRNA;浓度:1 μM;处理时间:72小时;细胞接种量:1×10^4/96孔板
阅读提示:参见Materials and methods中的TSPO silencing in cells部分
放疗
肿瘤照射:5 Gy/次,共2次,间隔1天;细胞照射:2 Gy/次,共5次,间隔1天;X射线条件:320 kV,10 mA,SnCuAl过滤器(肿瘤)或Al 0.5 mm(细胞),源皮距45.0 cm(肿瘤)或37.0 cm(细胞),剂量率1 Gy/min(肿瘤)或6 Gy/min(细胞)
阅读提示:参见Materials and methods中的Irradiation of xenografts and cells部分
体内PET/CT成像
示踪剂注射途径:静脉注射;PET扫描时间:注射后20-40分钟;[18F]FDG扫描时间:注射后60-80分钟;PK11195预处理剂量:1 mg,i.p.,注射前30分钟
阅读提示:参见Materials and methods中的PET/CT imaging and data analysis部分及Figure 1
离体生物分布
取样时间:注射后40分钟;计算% ID/g、T/B比和M/B比;注意PK11195预处理组可能因血池影响导致肿瘤摄取变化
阅读提示:参见Materials and methods中的Ex vivo tissue counting and autoradiography部分及Figure 4 legend
体外摄取实验
[18F]F-DPA浓度:0.5 MBq/mL;孵育时间:60分钟;PK11195浓度:10 μM,预孵育30分钟;细胞活力计数;siRNA细胞实验使用低Am(10 GBq/μmol)示踪剂
阅读提示:参见Materials and methods中的In vitro uptake of [18F]F-DPA in FaDu cells部分
放射性代谢物分析
注射后40分钟取样;血浆蛋白沉淀方法;TLC分析条件(如展开剂和检测方法)
阅读提示:参见Materials and methods中的Radiometabolite analyses部分及Figure 5 legend
TSPO表达分析
Western blot蛋白上样量30 μg;抗体稀释比例;RT-qPCR使用引物序列
阅读提示:参见Materials and methods中的Western blot analysis和Real-time quantitative PCR部分
肿瘤微环境分析
肿瘤消化条件:Collagenase D和DNAse 1,37°C孵育45分钟;流式抗体组合;门控策略
阅读提示:参见Materials and methods中的Proportion of monocytes and tumour-associated macrophages部分及Supplementary Fig. 4