靶向癌症相关成纤维细胞中的LRRC15可修饰细胞外基质并增强肿瘤免疫应答,从而抑制肺癌进展

Targeting LRRC15 in Cancer-Associated Fibroblasts Modifies the Extracellular Matrix and Enhances Tumor Immune Responses to Suppress Lung Cancer Progression

作者信息Lu Qi, Guohui Dang, Xinnan Ling, Yuhui Miao, Yufei Bo, Yuhang Zhai, Xiaowei Chen, Qianting Zhai, Liangtao Zheng, Yu Zhang, Yanjie Li, Chang Liu, Hongtao Fan, Wen Si, Dan Tong, Zhenlin Yang, Xueda Hu, Dongfang Wang, Sijin Cheng, Zemin Zhang, Linnan Zhu
PMID41591362
发布时间2026-05-15
DOI10.1158/0008-5472.CAN-25-2871

实验完整度

包含单细胞转录组学分析、体外共培养、CRISPR敲除、多种小鼠肿瘤模型(皮下、转移及自发模型)及双特异性抗体治疗验证,涵盖功能验证和机制验证。

主要模型

TC1-GFP和LLC细胞与CAF共注射的C57BL/6J小鼠皮下肿瘤模型 KPS细胞(源自KrasLSL-G12D; p53fl/fl; Sftpc-iCre小鼠的自发肺肿瘤)皮下移植模型 LLC-Luc细胞尾静脉注射的肺转移模型 人PBMC来源的单核细胞分化巨噬细胞(mo-MΦ)与人肺癌CAF共培养体系

重点核对

验证LRRC15在CAF中的特异性表达及在正常组织中的低表达 验证LRRC15缺失对肿瘤生长的抑制作用依赖于免疫系统 验证LRRC15缺失通过减少ECM产生(尤其是胶原蛋白I)抑制CD206+巨噬细胞极化 验证LRRC15-TGFβ双特异性抗体的体内靶向性和抗肿瘤效果

摘要

癌症相关成纤维细胞(CAF)在塑造肿瘤微环境和驱动肿瘤进展中发挥着至关重要的作用。尽管单细胞转录组学已揭示CAF的表型和功能异质性,但针对CAF的有效治疗策略仍然迫切需求。在本研究中,我们确定了LRRC15+ CAF是肺癌中肿瘤特异性的CAF亚群,并提出LRRC15是一个潜在的治疗靶点。LRRC15缺失通过调节巨噬细胞极化和增强CD8+ T细胞活化来抑制小鼠肺癌进展。机制上,LRRC15缺失通过减少CAF中细胞外基质(ECM)的产生来抑制CD206+巨噬细胞极化,导致CD8+ T细胞细胞毒性增加。最后,开发了一种靶向LRRC15和TGFβ的双特异性抗体,能有效下调CAF中LRRC15的表达并限制小鼠肿瘤进展。本研究突出了LRRC15作为有前景的治疗靶点,并为CAF导向的癌症治疗策略提供了见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LRRC15+ CAF在肺癌中发挥促肿瘤作用的机制及其作为治疗靶点的潜力。
核心机制
LRRC15通过促进CAF产生细胞外基质(尤其是胶原蛋白I),诱导CD206+巨噬细胞(M2型)极化,进而抑制CD8+ T细胞的细胞毒性,从而促进肺癌进展。
主要证据
通过scRNA-seq和mIHC证实LRRC15+ CAF在肿瘤中富集并与不良预后相关;通过多种小鼠模型(TC1/LLC共注射、KPS皮下、LLC-Luc转移)证明LRRC15缺失抑制肿瘤生长且依赖免疫;通过共培养和ECM实验证明LRRC15缺失减少胶原产生并降低M2极化;双特异性抗体治疗降低LRRC15表达并抑制肿瘤。
研究意义
LRRC15是CAF功能的关键调控因子,并代表一个有前景的治疗靶点,为肺癌的CAF导向免疫治疗策略提供了见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞转录组图谱构建与LRRC15+ CAF鉴定

鉴定肺癌中肿瘤富集且与不良预后相关的成纤维细胞亚群。

整合12个scRNA-seq数据集(145例供者,26091个基质细胞),通过无监督聚类鉴定出13个基质细胞簇,并将成纤维细胞分为9个亚群,其中LRRC15+ CAF(fibro-LRRC15, c03)为肿瘤富集的肌成纤维细胞亚群。

2

LRRC15作为潜在治疗靶点的筛选与验证

筛选在LRRC15+ CAF中高表达且在正常组织中低表达的膜蛋白,评估其作为治疗靶点的可行性。

通过差异表达分析和组织特异性分析,筛选在LRRC15+ CAF中高表达且在肿瘤中富集的膜蛋白,并通过GTEx数据、GEPIA和流式细胞术验证LRRC15的特异性。

3

体外CAF诱导模型建立和CRISPR敲除

建立TGF-β诱导的LRRC15+ CAF样细胞模型,并敲除LRRC15以研究功能。

用TGF-β处理小鼠肺成纤维细胞和人肺成纤维细胞3天,诱导LRRC15表达;通过CRISPR-Cas9敲除小鼠和人的LRRC15,并验证敲除效率。

4

多种小鼠肿瘤模型验证LRRC15缺失的抗肿瘤作用

验证LRRC15缺失对肿瘤生长的影响,并确定是否依赖免疫系统。

建立肿瘤细胞与CAF共注射模型(TC1-GFP、LLC)、KPS皮下模型和LLC-Luc肺转移模型,比较WT与Lrrc15-KO或条件敲除小鼠的肿瘤生长;在NSG免疫缺陷小鼠中重复共注射模型。

5

肿瘤微环境中免疫细胞分析

评估LRRC15缺失对肿瘤浸润免疫细胞的影响。

通过多色流式细胞术分析肿瘤中淋巴细胞和髓系细胞亚群,并利用mIHC验证CD8+ T细胞和巨噬细胞的浸润变化。

6

体外共培养验证LRRC15在巨噬细胞极化中的作用

验证LRRC15缺陷CAF对巨噬细胞M2极化的影响。

将BMDMs或人mo-MΦ与WT或LRRC15-KO CAF共培养,检测CD206+巨噬细胞的比例和数量;通过Transwell和ECM共培养实验区分可溶性因子和直接接触的作用。

7

机制研究:LRRC15调节ECM产生并影响巨噬细胞极化

阐明LRRC15促进M2极化的机制是否通过ECM产生(尤其是胶原蛋白I)实现。

通过bulk RNA-seq比较WT和LRRC15-KO CAF的转录组,富集ECM通路;通过Sirius Red染色和Western blot检测胶原蛋白产生;在ECM上培养巨噬细胞检测CD206表达。

8

双特异性抗体开发与体内验证

开发靶向LRRC15和TGFβ的双特异性抗体,评估其抗肿瘤效果和安全性。

设计LRRC15-TGFβ-trap双特异性抗体,在KPS皮下模型中评估抗肿瘤效果,用AF555标记抗体检测肿瘤内靶向性,并检测LRRC15表达和ECM密度。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco11965-092
RPMI 1640培养基Gibco11875-093
胎牛血清Gibco10091148
青霉素-链霉素溶液----
重组人TGFβ1R&D Systems7754-BH-005
重组小鼠TGFβ1R&D Systems7666-MB-005
博来霉素----
抗LRRC15抗体(克隆#huM25)AbbVie--
抗LRRC15抗体(克隆#Abio-1)Analytical Biosciences--
LRRC15-TGFβ-trap双特异性抗体Jiangsu Hoekbio Biotech--
抗小鼠IL13抗体BioLegend522903
抗小鼠IL4抗体BioLegend504121
抗小鼠IL10抗体BioLegend504907
抗小鼠TGFβRII抗体Jiangsu Hoekbio Biotech--
抗COL1A1抗体Cell Signaling Technology72026
抗GAPDH抗体Cell Signaling Technology5174
HRP标记的二抗Cell Signaling Technology7074
SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物Thermo Fisher Scientific34577
IP裂解液Thermo Fisher Scientific87787
蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物BeyotimeP1045
增强型BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0010
RNAprep Pure Micro总RNA提取试剂盒TIANGENDP420
HiScript III反转录预混液VazymeR323-01
ChamQ SYBR qPCR预混液(Low ROX预混)VazymeQ331-02
改良天狼星红染色试剂盒SolarbioG1472
可溶性胶原检测试剂盒Cell BiolabsMET-5016
PanoPANEL试剂盒Panovue10234100100
肿瘤解离试剂盒Miltenyi Biotec130-095-929/130-096-730
CD14微珠Miltenyi Biotec130-050-201
EasySep小鼠CD8+ T细胞分选试剂盒STEMCELL Technologies19853
人CD8+ T细胞分选试剂盒Miltenyi Biotec130-096-495
Foxp3/转录因子染色缓冲液eBioscience00-5523
Dynabeads小鼠T细胞活化磁珠CD3/CD28Gibco11453D
重组小鼠巨噬细胞集落刺激因子Gibco315-02
重组人巨噬细胞集落刺激因子Gibco300-25
白细胞介素-2PeproTech200-02
人T细胞活化剂Miltenyi Biotec130-111-160
人I型胶原蛋白MedChemExpressHY-NP160
Alexa Fluor 555 NHS酯Thermo Fisher ScientificA37571
Zeba染料和生物素去除离心柱Thermo Fisher ScientificA44296
Transwell插入式培养皿(0.4 μm)Corning07-200-165
MycoBlue支原体检测试剂VazymeD101-02
Equalbit RNA高灵敏度检测试剂盒VazymeEQ211-02
TruePrep RNA文库制备试剂盒(Illumina)VazymeTR501-TR503
FACSymphony A5 SE流式细胞仪BD Biosciences--
LSRFortessa流式细胞仪BD Biosciences--
SLIDEVIEW VS200扫描仪Olympus--
IVIS Lumina XRMS系列III活体成像系统PerkinElmer--
ChemiDoc成像系统Bio-Rad--
Qubit 2.0荧光计Invitrogen--
NovaSeq 6000测序仪Novogene--
FlowJo 10.8.1软件FlowJo--
OlyVIA软件(版本3.3)Olympus--
HALO 3.3软件Indica Labs--
ImageJ软件----
GraphPad Prism软件版本9.3.1GraphPad Software--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠模型
小鼠品系(C57BL/6J、NSG、Lrrc15-KO、Col1a2-CreER; Lrrc15fl/fl等);肿瘤细胞系(TC1-GFP、LLC、KPS、LLC-Luc)及接种数量;注射方式(皮下、尾静脉);肿瘤体积测量时间和公式
阅读提示:Methods: Mouse tumor models
CAF诱导与培养
TGF-β浓度(10 ng/mL)和处理时间(3天);基础培养基(DMEM/F12或DMEM);FBS浓度(10%);低氧培养条件;酶消化液组成及时间
阅读提示:Methods: Primary fibroblast isolation and culture
CRISPR敲除
sgRNA序列(人LRRC15 sgRNA-1/2,小鼠Lrrc15 sgRNA-1/2,对照sgRNA);载体(LentiCRISPRv2GFP,LentiGuide);转染/感染方法
阅读提示:Methods: CRISPR KO
共培养实验
细胞比例(CAF:巨噬细胞为1:1,CAF:T细胞为1:10);共培养时间(2天);细胞密度(1×10^5等);Transwell孔径(0.4 μm);细胞因子浓度(IL2 200 U/mL,阻断抗体浓度等)
阅读提示:Methods: Coculture of CAFs and macrophages; CAF and CD8+ T-cell coculture; Coculture of ECM of CAFs and macrophages
抗体处理
双特异性抗体剂量(200 μg)和给药方案(腹腔注射,从第8天开始,每2天一次);对照抗体(ISO-hIgG1);体内成像标记(AF555)
阅读提示:Methods: LRRC15 antibodies; Mouse tumor models
流式细胞术
抗体克隆和稀释度;染色缓冲液;消化方法;仪器型号;分析软件版本
阅读提示:Methods: Flow cytometry
关键试剂
胶原蛋白检测试剂盒(Soluble Collagen Assay Kit);天狼星红染色试剂盒;TGF-β重组蛋白;M-CSF;CD8+ T细胞分选试剂盒等
阅读提示:Methods: Collagen concentration assay; Sirius Red staining; Cell culture; Coculture assays