通过靶向内皮细胞TRPV1/NF-κB/IL-6轴调节血管生成以调控增生性瘢痕形成

Modulating hypertrophic scar formation by targeting endothelial transient receptor potential vanilloid-1/nuclear factor kappa-B/interleukin-6 axis to regulate angiogenesis

作者信息Hao Ma, Liuhanghang Cheng, Ruoyu Ling, Jingyi Chen, Shunuo Zhang, Shujing Lin, Liang Ding, Chengliang Deng, Yixin Zhang, Peiru Min
PMID42131490
发布时间2026-01-16
DOI10.1093/burnst/tkag009

实验完整度

包含单细胞及批量RNA测序、临床样本分析、兔耳体内模型和HUVEC体外功能验证,并有机制干预(siRNA、抑制剂)和多层级验证。

主要模型

人增生性瘢痕组织及正常皮肤样本 兔耳增生性瘢痕模型 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人包皮成纤维细胞(HFF-1)

重点核对

人HS与NS样本中TRPV1、CD31、NF-κB、IL-6的表达差异(IHC、WB、qPCR) 兔耳HS模型中CAP剂量(0、50、100、200 mg/kg)对瘢痕形成及血管生成的影响 RTX消融TRPV1对CAP诱导效应的逆转作用 HUVECs中CAP处理浓度(0、5、15、25、35 μM)对增殖、凋亡、迁移和管形成的影响 si-NF-κB及BAY11-7082抑制NF-κB后IL-6/STAT3通路及血管生成标志物的变化

摘要

背景:不良生活方式因素,包括辛辣饮食和热水浴,可能导致瘢痕形成和复发。这些现象与瞬时受体电位香草酸亚型1(TRPV1)阳离子通道的激活有关。我们先前的研究显示增生性瘢痕(HS)真皮中TRPV1表达显著上调,但TRPV1在HS中激活的确切潜在机制仍不明确。本研究旨在阐明TRPV1激活对HS发病的贡献,特别是与异常血管生成的关系。方法:首先,本研究采用单细胞RNA测序技术分析血管内皮细胞与HS发展之间的关联。补充地,利用生物信息学分析结合组织学验证来研究TRPV1通道与HS形成中异常血管生成之间的关系。此外,在体内水平严格验证了TRPV1激活与HS表型之间的相关性。同时,进行体外实验以阐明TRPV1通道激活对血管内皮细胞生物学行为和功能的影响。随后,筛选TRPV1的关键下游信号通路,并系统验证其在调节血管内皮细胞介导的血管生成中的分子机制。最后,进行综合分析以确立TRPV1/NF-κB/IL-6轴与增生性瘢痕中血管化严重程度和不良预后结果之间的临床相关性。结果:单细胞RNA测序揭示了正常皮肤和HS之间血管内皮细胞的显著细胞异质性,表明在HS发展过程中血管生成被激活且血管内皮细胞发生显著改变。批量RNA测序和临床分析进一步证实了这种血管生成激活,并显示其与TRPV1通道激活密切相关。体内研究证实,辣椒素(CAP)诱导的TRPV1激活通过增强血管生成加剧了HS进展,而TRPV1消融或局部抑制显著减弱了这种效应。体外实验表明,TRPV1激活通过促进促血管生成表型来调节血管生成。转录组分析和功能验证确定了IL-6/信号转导与转录激活因子3通路是HS血管内皮细胞中TRPV1介导的NF-κB依赖性促血管生成轴。关键的是,HS患者真皮中TRPV1/NF-κB/IL-6轴的过表达与疾病严重程度和复发密切相关。结论:此处,我们表明HS的发展与内皮血管生成活性密切相关。CAP激活TRPV1通过TRPV1/NF-κB/IL-6轴增强促血管生成过程,包括内皮细胞增殖、迁移和管形成,同时减少凋亡。在兔耳HS模型中,TRPV1的刺激通过TRPV1/NF-κB/IL-6轴促进HS的形成,而TRPV1的药理学消融显著逆转了这些表型。这些发现阐明了潜在的分子机制,并为HS提供了潜在的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TRPV1通道激活是否通过调节血管生成参与增生性瘢痕的形成及其分子机制。
核心机制
TRPV1激活通过NF-κB/IL-6/STAT3信号轴促进血管内皮细胞增殖、迁移和管形成,并抑制凋亡,从而增强血管生成,加剧增生性瘢痕形成。
主要证据
通过scRNA-seq、bulk RNA-seq、临床样本分析发现TRPV1与血管生成相关;兔耳模型和HUVEC实验验证了TRPV1激活促进血管生成和瘢痕形成,且NF-κB/IL-6轴是关键通路。
研究意义
揭示了增生性瘢痕形成的新机制,并提出TRPV1/NF-κB/IL-6轴作为诊断、预后和治疗的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞转录组分析

鉴定正常皮肤和增生性瘢痕中血管内皮细胞的异质性,并揭示其与血管生成的相关性。

对3例NS和3例HS样本进行scRNA-seq,并与公共数据集GSE156326整合,通过UMAP聚类和差异表达分析,发现血管内皮细胞亚群及其血管生成相关基因表达上调。

2

组织学验证(人样本)

验证TRPV1和血管生成标志物在人体HS与NS中的表达差异。

通过免疫荧光、Western blot和qPCR检测人皮肤样本中TRPV1、CD31、NF-κB、IL-6的表达。

3

体内兔耳模型建立与TRPV1激动剂处理

评估TRPV1激活对HS形成和血管生成的影响。

在新西兰白兔耳建立HS模型,皮下注射不同剂量CAP(0、50、100、200 mg/kg),观察瘢痕形成、组织学和分子标记。

4

TRPV1消融实验

验证TRPV1消融是否可逆转CAP诱导的HS表型和血管生成。

使用RTX(30、70、100 μg/kg)连续皮下注射消融TRPV1,然后建立HS模型并加或不加CAP处理,评估瘢痕相关指标。

5

体外内皮细胞功能验证

探究TRPV1激活对HUVECs生物学行为和血管生成功能的影响。

用不同浓度CAP处理HUVECs,检测细胞活力、增殖、凋亡、迁移和管形成能力,并检测血管生成相关基因和蛋白表达。

6

机制通路筛选与验证

确定TRPV1下游关键信号通路及分子机制。

通过RNA-seq和GO/KEGG分析筛选下游通路,验证IL-6/STAT3和NF-κB通路在HUVECs和HS组织中的变化,并使用siRNA和抑制剂进行功能干预。

7

临床相关性分析

评估TRPV1/NF-κB/IL-6轴与HS血管化严重程度和预后的关系。

对20例HS患者样本进行IHC染色和VSS评分,进行相关性分析和ROC曲线评估预后价值。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
10x Chromium单细胞3'试剂盒10x Genomics--
Illumina NovaSeq 6000测序仪Illumina--
TRIzol试剂Thermo Fisher15596018
生物分析仪2100Agilent--
RNA 6000 Nano LabChip试剂盒Agilent5067-1511
Ribo-Zero™ rRNA去除试剂盒EPICENTRE--
低糖培养基Gibco--
胎牛血清CellMax--
链霉素-青霉素溶液Gibco--
细胞计数试剂盒-8Dojindo--
Cell-Light EdU Apollo567体外试剂盒RiboBio--
Annexin V-FITCDojindo--
碘化丙啶Dojindo--
NoveCyte 3000流式细胞仪Agilent Technologies--
Matrigel基质胶BD Biosciences--
人IL-6 ELISA试剂盒ProteintechKE00139
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
BAY 11-7082Selleck Chemicals--
重组人IL-6MedChemExpress--
辣椒素Abcamab141000
树脂毒素Alomone LabsR-400
辣椒平MCEHY-15640
阿昔替尼Selleck ChemicalsAG-013736
马松三色染色----
天狼星红染色----
抗α-SMA抗体InvitrogenMA1-06110
山羊抗小鼠IgG-HRP二抗Abcamab6789
抗CD31抗体Abcamab182981
抗VEGFA抗体Abcamab1316
抗TRPV1抗体AlomoneACC030
抗NF-κB p65抗体CST8242
抗IL-6抗体CST12912
Alexa Fluor 488偶联山羊抗兔二抗Abcamab150077
Alexa Fluor 594偶联山羊抗小鼠二抗InvitrogenA-11005
DAPI----
RIPA裂解液Fude Biotechnology--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime Biotechnology--
抗GAPDH抗体Abcamab8245
抗α-SMA抗体Abcamab7817
抗col1a1抗体Proteintech66761-1-Ig
抗VEGFR2抗体InvitrogenMA5-15157
抗CD31抗体Abcamab182981
抗TRPV1抗体Abcamab305299
抗IL-6抗体CST12912
抗STAT3抗体CST4904
抗磷酸化STAT3(Tyr705)抗体CST9145
抗NF-κB p65抗体CST8242
山羊抗兔IgG H&L二抗Abcamab6702
山羊抗小鼠IgG H&L二抗Abcamab6708
Odyssey CLx红外成像系统LI-COR Biosciences--
FastKing cDNA合成试剂盒TIANGEN Biotech--
TB Green预混液Takara--
TRIzol试剂Invitrogen--
RNAlater保存液Invitrogen--
死细胞去除磁珠Miltenyi130-090-101
Miltenyi®死细胞去除试剂盒Miltenyi130-090-101
LS分离柱Miltenyi--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
转录组分析
单细胞和批量RNA测序的样本量(人NS n=3,HS n=3)、质控参数(基因数、UMI、线粒体比例)、差异表达阈值(|log2FC|>1且P<0.05)
阅读提示:Methods 的 'Single-cell RNA sequencing and analysis' 和 'Bulk RNA sequencing and analysis' 小节
动物模型建立
兔耳HS模型建立步骤:雌雄、周龄、手术方式(四个直径10mm伤口达软骨)、麻醉剂量(30mg/kg戊巴比妥钠)
阅读提示:Methods 的 'Animal models' 小节
体内给药方案
CAP剂量(50、100、200 mg/kg)、RTX剂量(30、70、100 μg/kg)、CPZ浓度(40 μg/ml, 400 μg/ml, 4 mg/ml)、axitinib浓度(1.25 mg/ml),以及注射时间点(术前/术后周数)
阅读提示:Methods 的 'In vivo capsaicin and resiniferatoxin treatment'、'In vivo capsazepine treatment'、'In vivo axitinib treatment' 小节
体外细胞实验
HUVECs培养条件(低糖DMEM、10%FBS、1%双抗)、CAP处理浓度(0、5、15、25、35 μM)、处理时间(24-72h)、Matrigel管形成实验接种密度和培养时间(1×10^4细胞/孔,4-8h)
阅读提示:Methods 的 'Cell culture'、'Cell viability analysis'、'EdU proliferation assay'、'Annexin V-FITC apoptosis assay'、'Cell migration test'、'Matrigel tube-formation assay' 小节
分子机制干预
si-NF-κB序列、转染试剂及浓度(Lipofectamine 3000)、BAY11-7082浓度(5μM)和处理时间(2h)、rhIL-6浓度(4 ng/ml)和预处理时间(1h)
阅读提示:Methods 的 'RNA interference'、'NF-κB inhibitor BAY11-7082 treatment'、'Recombinant human IL-6 treatment' 小节