人类CEP120基因变异损害减数分裂纺锤体构建导致非整倍体

A human CEP120 gene variant impairs meiotic spindle building causing aneuploidy†

作者信息Marlena Duke, Cecilia S Blengini, Sophia Maddocks, Mansour Aboelenain, Christine Prorock-Rogers, Karen Schindler
PMID42096526
发布时间2026-05-07
DOI10.1093/biolre/ioag094

实验完整度

包含体外卵母细胞培养、敲入小鼠模型活体受精实验、冷处理和玻璃化冷冻诱导微管解聚后的恢复实验、PCNT敲降改变纺锤体构建机制等独立验证层级,并有明确的功能验证与机制验证。

主要模型

敲入小鼠模型(CEP120R950H) 小鼠卵母细胞

重点核对

CEP120基因型(WT、杂合、纯合)对卵子非整倍体率影响:文中提供了具体数据,如年轻纯合突变小鼠非整倍体率增加9% 冷处理恢复30分钟后,纯合突变小鼠MII纺锤体体积和像素强度均低于WT,且30%出现三极纺锤体 玻璃化冷冻后恢复30分钟,纯合突变小鼠MII纺锤体体积显著小于WT,而像素强度无显著差异 通过Trim21介导的PCNT敲降,建立无aMTOCs的“人源化”纺锤体构建模型,PCNT缺失导致非整倍体率进一步增加,但相互作用趋势未达显著(p=0.06)

摘要

不孕症日益增多,导致比以往更多的女性寻求辅助生殖治疗。不孕和流产的主要原因之一是非整倍体,即胚胎或发育中的胎儿染色体数目异常,阻碍正常发育。非整倍体绝大多数源于母源减数分裂过程中染色体的错误分离,该过程产生单倍体卵母细胞(或卵子)。在寻找非整倍体的遗传原因时,涉及纺锤体构建的基因变异是首要关注对象,因为卵母细胞减数分裂纺锤体负责染色体的忠实分离。我们先前发现人类中心体基因CEP120的一个遗传变异与高胚胎非整倍体相关。为评估该遗传变异的功能意义,我们构建了敲入小鼠模型,发现雌性小鼠生育力降低,卵子非整倍体增加。通过评估冷暴露后和玻璃化冷冻后复温时的微管重建,我们发现携带该遗传变异的小鼠卵母细胞微管成核效率降低。由于小鼠和人类卵母细胞在纺锤体构建机制上存在差异,我们通过pericentrin耗竭改变了小鼠卵母细胞纺锤体构建方式,使其更接近人类卵母细胞,结果发现CEP120变异卵子的非整倍体水平显著增加。尽管PGT-A允许选择排除非整倍体胚胎,但开发非整倍体易感性的生物标志物可用于识别生育力低下的患者并模拟其非整倍体风险。因此,我们的数据表明,携带CEP120常见遗传变异的患者在接受卵子冷冻保存程序时可能需要额外的咨询。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
人类CEP120基因变异(p.Arg947His)是否以及如何影响卵母细胞减数分裂纺锤体构建、染色体分离和非整倍体发生,并最终影响生育力?
核心机制
CEP120变异导致同源二聚化域功能受损,降低微管成核效率,使减数分裂纺锤体构建异常(纺锤体缩短、体积减小、染色体排列错乱),导致染色体分离错误和非整倍体增加。
主要证据
敲入小鼠模型显示纯合突变小鼠在年轻和老年阶段均显著增加卵子非整倍体率,纺锤体长度缩短约5%,体积减小约11%,冷处理和玻璃化冷冻后微管成核和恢复效率降低,PCNT敲降后非整倍体率进一步增加,支持CEP120在纺锤体构建中的关键作用。
研究意义
该研究首次使用模拟人类卵母细胞纺锤体构建机制的临床前小鼠模型评估人类基因变异对生育的影响,提示携带CEP120常见变异的患者可能需要在卵子冷冻保存时接受额外咨询,并为开发非整倍体风险生物标志物提供依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

敲入小鼠模型构建与生育力分析

评估CEP120 p.Arg950His变异是否影响小鼠生育力。

通过CRISPR/Cas9构建CEP120R950H敲入小鼠,将WT、杂合、纯合雌性小鼠与WT雄性连续交配6个月,记录产仔数。

2

卵子非整倍体评估

检测CEP120变异是否引起减数分裂II阶段卵子染色体数目异常。

收集幼龄(6-10周)和老龄(24-28周)雌鼠GV期卵母细胞,体外成熟至MII,用monastrol处理使纺锤体解体,进行原位染色体计数。

3

微管成核效率评估(冷处理)

检测CEP120变异是否影响冷诱导纺锤体解聚后的微管重新成核能力。

将MII卵母细胞置于冰上1小时,然后37°C复苏,在不同时间点固定,免疫荧光染色评估纺锤体体积和微管强度。

4

玻璃化冷冻后纺锤体重建评估

模拟临床卵子冷冻过程,评估CEP120变异对玻璃化冷冻-复温后纺锤体重建能力的影响。

对MII卵母细胞进行玻璃化冷冻和复温,复温后培养30分钟,免疫荧光染色评估纺锤体恢复情况。

5

PCNT敲降建立人源化纺锤体模型

通过去除小鼠卵母细胞中的aMTOC(PCNT),模拟人类卵母细胞依赖染色体介导的微管成核机制,评估CEP120变异在该模型下的非整倍体效应。

采用Trim Away技术,将Trim21 mRNA与抗PCNT抗体共注射进GV期卵母细胞,敲降PCNT,然后培养至MII,进行原位染色体计数。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
高保真Cas9IDT--
下一代测序----
孕马血清促性腺激素Lee BioSolutions493-10
米力农Sigma-AldrichM4659
CZB培养基----
矿物油Sigma-AldrichM5310
Trim21-mCherry mRNAAddgene105522
Asc1限制性内切酶New England BiolabsR558S
小鼠抗PCNT抗体BD Biosciences611814
正常小鼠IgGMilliporeSigma12-371
过滤装置MilliporeSigmaUFC503096
Xenoworks显微注射器Sutter Instruments--
人绒毛膜促性腺激素MilliporeSigmaCG5
透明质酸酶MilliporeSigmaH3506
氯化锶MilliporeSigma255521
细胞松弛素BMilliporeSigmaC6762
KSOM培养基MilliporeSigmaMR106D
VectaShield封片剂Vector LaboratoriesH-1000
DAPI染料Life TechnologiesD1306
小鼠抗Cdx2抗体BioGenexMU392A-UC
人抗着丝粒抗原抗体Antibodies Incorporated15-234
兔抗CEP192抗体Proteintech18832-1-AP
绵羊抗α/β-微管蛋白抗体CytoskeletonATN02
抗绵羊Alexa-488二抗Life TechnologiesA11015
抗小鼠Alexa-568二抗Life TechnologiesA11031
抗人Alexa-633二抗Life TechnologiesA21091
抗兔Alexa-647二抗Life TechnologiesA31573
FITC标记的鬼笔环肽Sigma-AldrichP5282
Monastrol(kinesin-5抑制剂)MilliporeSigmaM8515
二甲基亚砜MilliporeSigma472301
玻璃化冷冻试剂盒Kitazato CorporationVT601
Cryotop冷冻载体Kitazato Corporation81185
复温试剂盒Kitazato CorporationVT602
Leica SP8共聚焦显微镜Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型与生育力分析
小鼠遗传背景、基因型、年龄、交配方案、观察时间长度、产仔数定义
阅读提示:Methods: Mouse strains, Fertility analysis; Figure 1C-D
卵母细胞收集与体外成熟
PMSG注射剂量、收集时间、培养基、milrinone浓度、培养时间(0h, 7h, 16h)
阅读提示:Methods: Oocyte collection and in vitro maturation
非整倍体评估
monastrol浓度、处理时间、染色体计数标准、样本量、统计方法
阅读提示:Methods: In situ chromosome counting; Figure 2
微管成核效率
冷处理温度和时间、恢复时间点、固定时间点、免疫荧光染色、纺锤体体积和强度测量
阅读提示:Methods: Microtubule nucleation assay; Figure 4
玻璃化冷冻后纺锤体重建
玻璃化冷冻和复温的具体步骤、试剂体积与时间、恢复时间、纺锤体测量
阅读提示:Methods: Microtubule re-establishment assay; Figure 5
PCNT敲降模型
Trim21 mRNA和抗PCNT抗体注射浓度、注射后培养时间、PCNT敲降验证、成熟时间(16h vs 24h)
阅读提示:Methods: Trim Away depletion of PCNT; Figure 7; Supplemental Figure S4