敲入小鼠模型构建与生育力分析
评估CEP120 p.Arg950His变异是否影响小鼠生育力。
通过CRISPR/Cas9构建CEP120R950H敲入小鼠,将WT、杂合、纯合雌性小鼠与WT雄性连续交配6个月,记录产仔数。
A human CEP120 gene variant impairs meiotic spindle building causing aneuploidy†
包含体外卵母细胞培养、敲入小鼠模型活体受精实验、冷处理和玻璃化冷冻诱导微管解聚后的恢复实验、PCNT敲降改变纺锤体构建机制等独立验证层级,并有明确的功能验证与机制验证。
敲入小鼠模型(CEP120R950H) 小鼠卵母细胞
CEP120基因型(WT、杂合、纯合)对卵子非整倍体率影响:文中提供了具体数据,如年轻纯合突变小鼠非整倍体率增加9% 冷处理恢复30分钟后,纯合突变小鼠MII纺锤体体积和像素强度均低于WT,且30%出现三极纺锤体 玻璃化冷冻后恢复30分钟,纯合突变小鼠MII纺锤体体积显著小于WT,而像素强度无显著差异 通过Trim21介导的PCNT敲降,建立无aMTOCs的“人源化”纺锤体构建模型,PCNT缺失导致非整倍体率进一步增加,但相互作用趋势未达显著(p=0.06)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估CEP120 p.Arg950His变异是否影响小鼠生育力。
通过CRISPR/Cas9构建CEP120R950H敲入小鼠,将WT、杂合、纯合雌性小鼠与WT雄性连续交配6个月,记录产仔数。
检测CEP120变异是否引起减数分裂II阶段卵子染色体数目异常。
收集幼龄(6-10周)和老龄(24-28周)雌鼠GV期卵母细胞,体外成熟至MII,用monastrol处理使纺锤体解体,进行原位染色体计数。
检测CEP120变异是否影响冷诱导纺锤体解聚后的微管重新成核能力。
将MII卵母细胞置于冰上1小时,然后37°C复苏,在不同时间点固定,免疫荧光染色评估纺锤体体积和微管强度。
模拟临床卵子冷冻过程,评估CEP120变异对玻璃化冷冻-复温后纺锤体重建能力的影响。
对MII卵母细胞进行玻璃化冷冻和复温,复温后培养30分钟,免疫荧光染色评估纺锤体恢复情况。
通过去除小鼠卵母细胞中的aMTOC(PCNT),模拟人类卵母细胞依赖染色体介导的微管成核机制,评估CEP120变异在该模型下的非整倍体效应。
采用Trim Away技术,将Trim21 mRNA与抗PCNT抗体共注射进GV期卵母细胞,敲降PCNT,然后培养至MII,进行原位染色体计数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型构建 | 高保真Cas9 | IDT | -- |
| 基因分型 | 下一代测序 | -- | -- |
| 超数排卵 | 孕马血清促性腺激素 | Lee BioSolutions | 493-10 |
| 卵母细胞培养 | 米力农 | Sigma-Aldrich | M4659 |
| CZB培养基 | -- | -- | |
| 矿物油 | Sigma-Aldrich | M5310 | |
| Trim Away敲降 | Trim21-mCherry mRNA | Addgene | 105522 |
| Asc1限制性内切酶 | New England Biolabs | R558S | |
| 小鼠抗PCNT抗体 | BD Biosciences | 611814 | |
| 正常小鼠IgG | MilliporeSigma | 12-371 | |
| 过滤装置 | MilliporeSigma | UFC503096 | |
| 显微注射 | Xenoworks显微注射器 | Sutter Instruments | -- |
| 排卵诱导 | 人绒毛膜促性腺激素 | MilliporeSigma | CG5 |
| 卵子收集 | 透明质酸酶 | MilliporeSigma | H3506 |
| 卵子激活 | 氯化锶 | MilliporeSigma | 255521 |
| 细胞松弛素B | MilliporeSigma | C6762 | |
| 胚胎培养 | KSOM培养基 | MilliporeSigma | MR106D |
| 免疫荧光封片 | VectaShield封片剂 | Vector Laboratories | H-1000 |
| DAPI染料 | Life Technologies | D1306 | |
| 免疫荧光染色 | 小鼠抗Cdx2抗体 | BioGenex | MU392A-UC |
| 人抗着丝粒抗原抗体 | Antibodies Incorporated | 15-234 | |
| 兔抗CEP192抗体 | Proteintech | 18832-1-AP | |
| 绵羊抗α/β-微管蛋白抗体 | Cytoskeleton | ATN02 | |
| 抗绵羊Alexa-488二抗 | Life Technologies | A11015 | |
| 抗小鼠Alexa-568二抗 | Life Technologies | A11031 | |
| 抗人Alexa-633二抗 | Life Technologies | A21091 | |
| 抗兔Alexa-647二抗 | Life Technologies | A31573 | |
| FITC标记的鬼笔环肽 | Sigma-Aldrich | P5282 | |
| 染色体计数 | Monastrol(kinesin-5抑制剂) | MilliporeSigma | M8515 |
| 二甲基亚砜 | MilliporeSigma | 472301 | |
| 玻璃化冷冻 | 玻璃化冷冻试剂盒 | Kitazato Corporation | VT601 |
| Cryotop冷冻载体 | Kitazato Corporation | 81185 | |
| 玻璃化冷冻复温 | 复温试剂盒 | Kitazato Corporation | VT602 |
| 成像 | Leica SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型与生育力分析 | 小鼠遗传背景、基因型、年龄、交配方案、观察时间长度、产仔数定义 阅读提示:Methods: Mouse strains, Fertility analysis; Figure 1C-D |
| 卵母细胞收集与体外成熟 | PMSG注射剂量、收集时间、培养基、milrinone浓度、培养时间(0h, 7h, 16h) 阅读提示:Methods: Oocyte collection and in vitro maturation |
| 非整倍体评估 | monastrol浓度、处理时间、染色体计数标准、样本量、统计方法 阅读提示:Methods: In situ chromosome counting; Figure 2 |
| 微管成核效率 | 冷处理温度和时间、恢复时间点、固定时间点、免疫荧光染色、纺锤体体积和强度测量 阅读提示:Methods: Microtubule nucleation assay; Figure 4 |
| 玻璃化冷冻后纺锤体重建 | 玻璃化冷冻和复温的具体步骤、试剂体积与时间、恢复时间、纺锤体测量 阅读提示:Methods: Microtubule re-establishment assay; Figure 5 |
| PCNT敲降模型 | Trim21 mRNA和抗PCNT抗体注射浓度、注射后培养时间、PCNT敲降验证、成熟时间(16h vs 24h) 阅读提示:Methods: Trim Away depletion of PCNT; Figure 7; Supplemental Figure S4 |