样本收集和病理学分析
收集不同阶段的HDGC肿瘤样本并进行组织病理学分类,以区分早期、过渡期和晚期病变。
从病理档案收集38个DGC病变(来自26名CDH1生殖系PV携带者)的FFPE组织样本,进行H&E染色和E-cadherin免疫组化,并使用深度学习模型检测和计数不同类型细胞(典型SRC、小/不规则SRC、PDC)。
Mapping the genetic landscape of hereditary diffuse-type gastric cancer progression
该研究主要基于回顾性患者样本的全外显子组测序和免疫组化分析,包含肿瘤分期比较和瘤内区域分析,但缺乏功能验证实验,因此不属于高完整度。
38个HDGC肿瘤(原发灶和转移灶) 26名携带CDH1生殖系致病变异的患者
全外显子组测序覆盖深度(约400×) 肿瘤分期分组(pT1a、pT1a+、pT3/4及转移灶) CDH1第二等位基因失活事件(体细胞突变和LOH) E-cadherin表达状态(免疫组化)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
收集不同阶段的HDGC肿瘤样本并进行组织病理学分类,以区分早期、过渡期和晚期病变。
从病理档案收集38个DGC病变(来自26名CDH1生殖系PV携带者)的FFPE组织样本,进行H&E染色和E-cadherin免疫组化,并使用深度学习模型检测和计数不同类型细胞(典型SRC、小/不规则SRC、PDC)。
全面鉴定各阶段HDGC肿瘤中的体细胞突变和拷贝数变异,以揭示与进展相关的遗传改变。
从FFPE切片中宏切割分离肿瘤区域,提取DNA,构建文库并进行全外显子组测序,使用生物信息学流程进行比对、变异鉴定和拷贝数分析,并比较不同阶段间的突变负荷、突变谱和CNV模式。
确定与HDGC进展相关的具体基因突变和拷贝数改变。
比较早期(pT1a和pT1a+)与晚期(pT3/4和转移灶)肿瘤的TMB、癌症相关基因突变频率和CNV模式,并与TCGA中的散发性DGC数据进行比较。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫组织化学 | Dako Omnis平台 | Agilent Technologies | -- |
| 抗E-钙黏蛋白抗体(NCH-38) | Dako Omnis | GA059 | |
| 组织切片扫描 | Pannoramic 1000 DX玻片扫描仪 | 3DHistech | -- |
| 全外显子组测序 | Covaris R230超声波破碎仪 | Covaris | -- |
| Twist文库制备试剂盒(含机械打断用Amp Mix) | Twist Bioscience | -- | |
| Twist Comprehensive Exome 2.0探针 | Twist Bioscience | -- | |
| Illumina NovaSeq6000测序仪 | Illumina | -- | |
| DNA提取 | Chelex-100树脂 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本收集 | 样本来源:三家医院的FFPE组织样本;患者携带CDH1生殖系致病变异;肿瘤分期和样本编号;组织选择(表层、深层、转移灶)。 阅读提示:Materials and methods: Human tissue samples; Table 1 |
| 免疫组织化学 | E-cadherin染色模式分类标准(完全缺失、弱至中度膜染色、强膜染色);抗体克隆号NCH-38;染色平台Dako Omnis。 阅读提示:Materials and methods: Histology and immunohistochemistry |
| 细胞类型检测 | 深度学习模型对H&E染色切片中三种细胞类型(典型SRC、小/不规则SRC、PDC)的检测和计数。 阅读提示:Materials and methods: Detection of cell-types; Figure 1 |
| 全外显子组测序 | DNA提取方法(Chelex-100)、机械剪切(Covaris R230)、文库制备试剂盒、捕获探针、测序平台(NovaSeq6000)、目标覆盖深度(400×);生物信息学流程(bwa-mem2、Mutect2、PureCN)。 阅读提示:Materials and methods: Whole exome sequencing; Supplementary Methods |