目标基因筛选
通过生物信息学分析筛选胰腺癌中与预后相关的关键基因。
利用WGCNA分析TCGA中178例胰腺癌样本的RNA-seq数据,识别与生存相关的共表达模块,筛选出WDHD1作为候选基因。
E2F1-Driven WDHD1 Transcription Enhances Cell-Cycle Progression and Promotes Pancreatic Cancer Progression
结合TCGA数据库分析、体外细胞实验(增殖、凋亡、周期)、体内异种移植模型以及机制验证(ChIP、荧光素酶报告基因),包含多层级证据和功能验证。
胰腺癌细胞系PANC-1和CFPAC-1 小鼠皮下异种移植瘤模型 临床胰腺癌组织样本
PANC-1和CFPAC-1细胞中WDHD1敲低效率(shRNA序列见表1) 皮下异种移植模型中WDHD1敲低对肿瘤体积和生长曲线的影响(n=5) E2F1过表达对WDHD1 mRNA和蛋白水平的诱导效果 WDHD1敲低对CDK4和cyclin D1蛋白水平的影响 ChIP-qPCR验证E2F1与WDHD1启动子结合
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过生物信息学分析筛选胰腺癌中与预后相关的关键基因。
利用WGCNA分析TCGA中178例胰腺癌样本的RNA-seq数据,识别与生存相关的共表达模块,筛选出WDHD1作为候选基因。
验证WDHD1在胰腺癌组织和细胞系中的表达水平。
通过GEPIA数据库分析、免疫组化、qRT-PCR和Western blot检测WDHD1在胰腺癌组织、细胞系中的表达,并与正常对照比较。
评估WDHD1对胰腺癌细胞增殖、凋亡和细胞周期的影响。
在PANC-1和CFPAC-1细胞中敲低或过表达WDHD1,通过CCK-8、克隆形成、EdU、流式细胞术检测增殖、凋亡和细胞周期变化。
验证WDHD1敲低对胰腺癌细胞体内成瘤能力的影响。
将WDHD1敲低或对照PANC-1细胞皮下注射到免疫缺陷小鼠,定期测量肿瘤体积,35天后取材,进行Western blot和IHC检测。
阐明E2F1对WDHD1的转录调控及WDHD1对CDK4-cyclin D1复合物的影响。
通过数据库预测E2F1为WDHD1的转录因子,用荧光素酶报告基因和ChIP验证E2F1结合WDHD1启动子;通过Western blot检测WDHD1变化对CDK4和cyclin D1蛋白水平的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | -- |
| RPMI-1640培养基 | HyClone | -- | |
| IMDM培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 谷氨酰胺 | -- | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 抗WDHD1抗体 | abclonal | A15396 | |
| 抗E2F1抗体 | abclonal | A19579 | |
| 抗CDK4抗体 | abclonal | A0366 | |
| 抗CDK6抗体 | abclonal | A1545 | |
| 抗细胞周期蛋白D1抗体 | abclonal | A1301 | |
| 抗细胞周期蛋白D3抗体 | abclonal | A3589 | |
| 抗β-actin抗体 | ZSGB-BIO | TA-09 | |
| HRP标记二抗 | ZSGB-BIO | ZB-2301, | |
| 增强化学发光底物 | Millipore | -- | |
| qRT-PCR | 细胞总RNA提取试剂盒 | Foregene | RE-03111 |
| HiScript III逆转录预混液 | Vazyme | -- | |
| ChamQ SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Oriscience Biotechnology | -- |
| Epoch 2酶标仪 | BioTek | -- | |
| RNA干扰 | pLKO.1-TRC载体 | -- | -- |
| psPAX2包装质粒 | -- | -- | |
| pMD2.G包膜质粒 | -- | -- | |
| plenti-CMV-3HA载体 | -- | -- | |
| pcDNA3.1-3Flag载体 | -- | -- | |
| 聚乙烯亚胺 | -- | -- | |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| EdU实验 | EdU掺入检测试剂盒 | RiboBio | C10310-3 |
| 细胞周期分析 | 细胞周期染色试剂盒 | 4A BIOTECH | FXP0211 |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| BD Pharmingen流式细胞仪 | BD Pharmingen | -- | |
| FlowJo软件 | -- | -- | |
| 凋亡检测 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | 4A BIOTECH | -- |
| 免疫荧光 | 鬼笔环肽(CoraLite® 594) | Proteintech | -- |
| DAPI | -- | -- | |
| Zeiss LSM 880共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| ChIP | ChIP检测试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P2078 |
| 抗E2F1抗体 | Proteintech | 66515-1-Ig | |
| 荧光素酶报告基因 | Opti-MEM培养基 | -- | -- |
| Lipofectamine 3000转染试剂 | -- | -- | |
| P3000试剂 | -- | -- | |
| 荧光素酶检测试剂盒 | Beyotime Biotechnology | RG088S | |
| 动物实验 | 三溴乙醇 | -- | -- |
| NOD小鼠 | Jiangsu GemPharmatech | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源和培养条件:PANC-1, CFPAC-1, hTERT-HPNE等,培养基(DMEM, RPMI-1640, IMDM)与血清浓度(10%) 阅读提示:详见Materials and Methods 2.1 Cell Culture |
| 基因敲低与过表达 | shRNA序列(表1),载体构建(pLKO.1-TRC),病毒包装(psPAX2, pMD2.G),感染和筛选浓度(嘌呤霉素2.5 μg/mL),过表达载体(plenti-CMV-3HA, pcDNA3.1-3Flag) 阅读提示:详见Materials and Methods 2.5 Construction of shRNAs and Plasmids 和表1 |
| 体外功能检测 | CCK-8细胞密度(4×10^3细胞/孔),检测时间点(24-96h);克隆形成细胞数(2000/孔),培养时间(2-3周);EdU浓度(50 μM)和孵育时间(3h);流式细胞术检测细胞周期和凋亡的染色方案 阅读提示:详见Materials and Methods 2.4, 2.7, 2.8, 2.9 |
| 蛋白和RNA检测 | 抗体信息(品牌和货号),RT-qPCR引物(表S1),内参基因(GAPDH) 阅读提示:详见Materials and Methods 2.2, 2.3, 2.6 和补充材料 |
| 体内异种移植实验 | 小鼠品系和性别(NOD雌性,4-6周龄,20g),细胞接种量(1×10^7),每组数量(5),肿瘤测量频率(每两天),实验终点(35天) 阅读提示:详见Materials and Methods 2.15 Subcutaneous Tumor Xenograft Assay |
| 机制验证 | ChIP实验细胞数(3×10^6),抗体量(4 μg),qPCR引物(WDHD1启动子);荧光素酶报告基因的质粒量(firefly 1000 ng, Renilla 100 ng) 阅读提示:详见Materials and Methods 2.11, 2.12 |