E2F1驱动的WDHD1转录增强细胞周期进程并促进胰腺癌进展

E2F1-Driven WDHD1 Transcription Enhances Cell-Cycle Progression and Promotes Pancreatic Cancer Progression

作者信息Xiaojuan Yang, Zhiwei Zhang, Shuangjuan Lv, Buzhe Zhang, Xue Tao, Chang Liu, Qing Zhu
PMID42041705
发布时间2026-03
DOI10.3390/curroncol33040186

实验完整度

结合TCGA数据库分析、体外细胞实验(增殖、凋亡、周期)、体内异种移植模型以及机制验证(ChIP、荧光素酶报告基因),包含多层级证据和功能验证。

主要模型

胰腺癌细胞系PANC-1和CFPAC-1 小鼠皮下异种移植瘤模型 临床胰腺癌组织样本

重点核对

PANC-1和CFPAC-1细胞中WDHD1敲低效率(shRNA序列见表1) 皮下异种移植模型中WDHD1敲低对肿瘤体积和生长曲线的影响(n=5) E2F1过表达对WDHD1 mRNA和蛋白水平的诱导效果 WDHD1敲低对CDK4和cyclin D1蛋白水平的影响 ChIP-qPCR验证E2F1与WDHD1启动子结合

摘要

WD重复和HMG-box DNA结合蛋白1(WDHD1)已被确定为多种肿瘤中的关键癌基因,但其在胰腺癌中的作用仍未明确。本研究探讨了WDHD1促进胰腺癌进展的机制。对癌症基因组图谱(TCGA)胰腺癌样本的差异分析鉴定出异常表达的基因。细胞实验,包括细胞增殖、流式细胞术和凋亡实验,证明了WDHD1的致癌作用。与正常对照相比,WDHD1在胰腺癌细胞和组织中的表达显著升高。敲低WDHD1抑制细胞增殖,诱导凋亡,并引起G1期细胞周期阻滞。体内异种移植模型进一步验证了WDHD1敲低抑制了胰腺癌细胞的生长。机制上,WDHD1敲低导致CDK4和细胞周期蛋白D1蛋白水平显著降低,而WDHD1过表达则产生相反效果。此外,E2F1过表达在mRNA和蛋白水平均增加WDHD1的表达。拯救实验表明,WDHD1敲低可以逆转E2F1诱导的CDK4和细胞周期蛋白D1蛋白水平的上调。总之,E2F1通过上调WDHD1促进胰腺癌细胞增殖和细胞周期进程,进而增强CDK4-细胞周期蛋白D1复合物的表达。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
WDHD1在胰腺癌中的表达、功能及调控机制是什么?
核心机制
E2F1直接转录激活WDHD1,上调的WDHD1增强CDK4-cyclin D1复合物的表达,从而促进细胞周期G1-S转换和胰腺癌进展。
主要证据
TCGA数据分析显示WDHD1高表达且与预后不良相关;体外敲低WDHD1抑制增殖、诱导凋亡和G1期阻滞;体内异种移植实验验证敲低WDHD1抑制肿瘤生长;ChIP和荧光素酶报告实验证实E2F1直接结合并激活WDHD1启动子。
研究意义
揭示了WDHD1作为胰腺癌潜在治疗靶点的可能性,为开发靶向E2F1-WDHD1轴的联合治疗策略提供理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

目标基因筛选

通过生物信息学分析筛选胰腺癌中与预后相关的关键基因。

利用WGCNA分析TCGA中178例胰腺癌样本的RNA-seq数据,识别与生存相关的共表达模块,筛选出WDHD1作为候选基因。

2

表达验证

验证WDHD1在胰腺癌组织和细胞系中的表达水平。

通过GEPIA数据库分析、免疫组化、qRT-PCR和Western blot检测WDHD1在胰腺癌组织、细胞系中的表达,并与正常对照比较。

3

体外功能实验

评估WDHD1对胰腺癌细胞增殖、凋亡和细胞周期的影响。

在PANC-1和CFPAC-1细胞中敲低或过表达WDHD1,通过CCK-8、克隆形成、EdU、流式细胞术检测增殖、凋亡和细胞周期变化。

4

体内实验

验证WDHD1敲低对胰腺癌细胞体内成瘤能力的影响。

将WDHD1敲低或对照PANC-1细胞皮下注射到免疫缺陷小鼠,定期测量肿瘤体积,35天后取材,进行Western blot和IHC检测。

5

机制探索

阐明E2F1对WDHD1的转录调控及WDHD1对CDK4-cyclin D1复合物的影响。

通过数据库预测E2F1为WDHD1的转录因子,用荧光素酶报告基因和ChIP验证E2F1结合WDHD1启动子;通过Western blot检测WDHD1变化对CDK4和cyclin D1蛋白水平的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基HyClone--
RPMI-1640培养基HyClone--
IMDM培养基Gibco--
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
谷氨酰胺----
RIPA裂解液----
PVDF膜Millipore--
抗WDHD1抗体abclonalA15396
抗E2F1抗体abclonalA19579
抗CDK4抗体abclonalA0366
抗CDK6抗体abclonalA1545
抗细胞周期蛋白D1抗体abclonalA1301
抗细胞周期蛋白D3抗体abclonalA3589
抗β-actin抗体ZSGB-BIOTA-09
HRP标记二抗ZSGB-BIOZB-2301,
增强化学发光底物Millipore--
细胞总RNA提取试剂盒ForegeneRE-03111
HiScript III逆转录预混液Vazyme--
ChamQ SYBR qPCR预混液Vazyme--
CCK-8试剂盒Oriscience Biotechnology--
Epoch 2酶标仪BioTek--
pLKO.1-TRC载体----
psPAX2包装质粒----
pMD2.G包膜质粒----
plenti-CMV-3HA载体----
pcDNA3.1-3Flag载体----
聚乙烯亚胺----
嘌呤霉素----
EdU掺入检测试剂盒RiboBioC10310-3
细胞周期染色试剂盒4A BIOTECHFXP0211
碘化丙啶----
BD Pharmingen流式细胞仪BD Pharmingen--
FlowJo软件----
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒4A BIOTECH--
鬼笔环肽(CoraLite® 594)Proteintech--
DAPI----
Zeiss LSM 880共聚焦显微镜Zeiss--
ChIP检测试剂盒Beyotime BiotechnologyP2078
抗E2F1抗体Proteintech66515-1-Ig
Opti-MEM培养基----
Lipofectamine 3000转染试剂----
P3000试剂----
荧光素酶检测试剂盒Beyotime BiotechnologyRG088S
三溴乙醇----
NOD小鼠Jiangsu GemPharmatech--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源和培养条件:PANC-1, CFPAC-1, hTERT-HPNE等,培养基(DMEM, RPMI-1640, IMDM)与血清浓度(10%)
阅读提示:详见Materials and Methods 2.1 Cell Culture
基因敲低与过表达
shRNA序列(表1),载体构建(pLKO.1-TRC),病毒包装(psPAX2, pMD2.G),感染和筛选浓度(嘌呤霉素2.5 μg/mL),过表达载体(plenti-CMV-3HA, pcDNA3.1-3Flag)
阅读提示:详见Materials and Methods 2.5 Construction of shRNAs and Plasmids 和表1
体外功能检测
CCK-8细胞密度(4×10^3细胞/孔),检测时间点(24-96h);克隆形成细胞数(2000/孔),培养时间(2-3周);EdU浓度(50 μM)和孵育时间(3h);流式细胞术检测细胞周期和凋亡的染色方案
阅读提示:详见Materials and Methods 2.4, 2.7, 2.8, 2.9
蛋白和RNA检测
抗体信息(品牌和货号),RT-qPCR引物(表S1),内参基因(GAPDH)
阅读提示:详见Materials and Methods 2.2, 2.3, 2.6 和补充材料
体内异种移植实验
小鼠品系和性别(NOD雌性,4-6周龄,20g),细胞接种量(1×10^7),每组数量(5),肿瘤测量频率(每两天),实验终点(35天)
阅读提示:详见Materials and Methods 2.15 Subcutaneous Tumor Xenograft Assay
机制验证
ChIP实验细胞数(3×10^6),抗体量(4 μg),qPCR引物(WDHD1启动子);荧光素酶报告基因的质粒量(firefly 1000 ng, Renilla 100 ng)
阅读提示:详见Materials and Methods 2.11, 2.12