抗NMDAR1抗体与IL-17信号通路共同塑造NMDAR脑炎

The anti-NMDAR1 antibodies and IL-17 signaling pathway shape NMDAR encephalitis

作者信息Zhenhong Xu, Hongye Yan, Bo Wang, Juan Wan, Huimin Wang, Ye Xia, Yong U Liu, Xuejing Wang, Heng Wu, Jiamei Jiang, Lin Zeng, Beisha Tang, Qingtuan Meng
PMID41436585
发布时间2026-05
DOI10.1038/s41380-025-03434-x

实验完整度

体外hFOs模型、小鼠体内模型及患者CSF样本多层级验证,结合转录组、代谢组、蛋白质组及电生理等多项功能验证。

主要模型

人前脑类器官(hFOs) C57BL/6小鼠模型(脑室内输注患者CSF) HEK 293T细胞(细胞基测定)

重点核对

hFOs处理分组:NMDAR1-Ab(10 μg/mL)或患者CSF处理24小时 CSF样本来源:6例NMDARE患者及6例非受影响对照,处理前收集 NMDAR1-Ab浓度:10 μg/mL(单克隆抗体或患者CSF纯化IgG) 小鼠模型:C57BL/6雄性,8-10周龄,脑室内输注CSF(0.25 μL/h),7天后PTZ(40 mg/kg)诱发癫痫 IL-17处理浓度:100 ng/mL,处理24小时

摘要

抗N-甲基-D-天冬氨酸受体(NMDAR)脑炎(NMDARE)是一种破坏性的自身免疫性疾病,与患者脑脊液(CSF)和血清中靶向NMDAR1的自身抗体相关。除了抗NMDAR1自身抗体的关键作用外,研究还提示脑炎症等其他因素参与NMDARE。为全面揭示NMDARE的分子机制,我们基于人类前脑类器官(hFOs)进行了多组学分析。转录组学和代谢组学分析显示,单独暴露于单克隆抗NMDAR1 IgG抗体或纯化的患者CSF来源IgG抗体的hFOs导致NMDAR功能减退,引起谷氨酸含量和神经活性降低。有趣的是,暴露于患者CSF或去除IgG的患者CSF的hFOs表现出神经元过度兴奋而非神经活性减退。随后的蛋白质组学分析和电生理检测确定,患者CSF中激活的白细胞介素(IL)-17信号通路导致了神经元过度兴奋。中和IL-17可减轻hFOs的神经元过度兴奋以及暴露于NMDARE患者CSF的小鼠的癫痫样行为。总之,本研究表明抗NMDAR1抗体和IL-17信号通路塑造了NMDARE。失活IL-17信号通路可能成为NMDARE治疗的潜在策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
抗NMDAR1抗体和脑炎症(如IL-17信号)在NMDARE发病中各自的作用及机制是什么?
核心机制
抗NMDAR1抗体导致NMDAR功能减退,引起谷氨酸降低和神经活性减退;患者CSF中激活的IL-17信号通路导致神经元过度兴奋和癫痫行为。
主要证据
hFOs暴露于抗NMDAR1抗体后,细胞表面NMDAR1密度显著降低,相关基因(GRIN1, GRIA2)表达下调,代谢组显示谷氨酸含量降低,电生理显示神经活性减退;患者CSF或去除IgG的CSF导致神经元过度兴奋,Olink蛋白质组显示IL-17信号通路激活,中和IL-17可缓解hFOs过度兴奋和小鼠癫痫行为。
研究意义
本研究提出IL-17信号通路是NMDARE的潜在治疗靶点,中和IL-17可能改善癫痫症状,为NMDARE治疗提供新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

患者CSF样本收集与IgG分离

获取NMDARE患者和对照的CSF及纯化IgG,用于后续实验。

收集6例NMDARE患者和6例对照的CSF,离心后保存;使用Protein G Spin Kit从CSF中纯化IgG,并制备IgG去除的CSF。

2

hFOs生成与表征

建立人前脑类器官模型,验证其包含主要脑细胞类型且表达NMDAR1。

从hiPSC(U2F)生成hFOs,培养至第110天;通过免疫染色表征神经祖细胞、神经元、星形胶质细胞、少突胶质细胞及NMDAR1表达。

3

检测抗NMDAR1抗体在hFOs中的功能

验证抗NMDAR1抗体是否导致NMDAR功能减退。

将hFOs暴露于单克隆NMDAR1抗体或患者CSF纯化IgG,通过免疫染色检测细胞表面NMDAR1密度和神经元密度。

4

转录组学分析(RNA-seq)

揭示抗NMDAR1抗体暴露对hFOs基因表达的影响。

对处理组和对照组hFOs进行RNA-seq,鉴定差异表达基因,进行GO/KEGG富集分析和PPI网络分析。

5

代谢组学分析

验证抗NMDAR1抗体暴露是否影响谷氨酸等代谢物水平。

对处理组和对照组hFOs进行靶向代谢组学分析(LC-MS/MS),鉴定差异代谢物,并ELISA验证谷氨酸水平。

6

电生理学检测(MEA和钙成像)

评估抗NMDAR1抗体及患者CSF对hFOs神经活性的影响。

使用MEA记录hFOs的放电活动,钙成像检测钙瞬变,比较不同处理组的神经活性。

7

蛋白质组学分析(Olink)

鉴定患者CSF中差异表达的炎症蛋白,寻找导致神经元过度兴奋的关键因子。

使用Olink炎症面板检测6例NMDARE患者和6例对照CSF中92种炎症相关蛋白,鉴定差异蛋白并富集分析。

8

验证IL-17信号通路的作用

验证IL-17是否导致神经元过度兴奋及其机制。

将hFOs暴露于IL-17,检测IL-17信号通路激活(ACT1, TRAF6)及神经活性;使用抗IL-17中和抗体(AIN457)处理,观察是否能缓解过度兴奋。

9

体内验证(小鼠模型)

验证患者CSF是否导致癫痫行为,并验证IL-17中和抗体的保护作用。

通过脑室内微渗透泵向小鼠输注患者CSF或对照CSF(含或不含抗IL-17抗体),7天后注射PTZ诱导癫痫,评估Racine评分。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
NAb™ 蛋白G离心柱试剂盒Thermo Fisher89979
基质胶Corning354277
mTeSR Plus培养基STEMCELL Technologies05825
DMEM培养基GibcoC11995500BT
胎牛血清GibcoA3161001C
青霉素/链霉素Gibco10378016
pcDNA3.1质粒----
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo FisherL3000001
兔抗NMDAR1一抗Abcamab109182
FITC标记抗人IgG抗体Abcamab81051
Alexa Fluor 594偶联山羊抗兔IgGThermo FisherA11012
DAPI核酸染料InvitrogenD1306
显微镜(Axio Vert A1)ZeissAxio Vert A1
Accutase消化液Sigma-AldrichA6964
96孔圆底超低吸附板Corning7007
O.C.T包埋剂Tissue-Tek4583
低温恒温切片机(CM1950)LeicaCM1950
牛血清白蛋白SolarbioA8020
小鼠抗NMDAR1抗体Abcamab134308
miRNeasy Mini试剂盒Qiagen217004
HiScript III RT SuperMix(用于qPCR,含gDNA去除)VazymeR323-01
ChamQ SYBR qPCR预混液VazymeQ711-02
实时荧光定量PCR系统(QuantStudio 3)Thermo FisherQuantStudio 3
SCIEX QTRAP 6500+质谱仪SCIEX--
600MRM平台Biotree--
Fluo-4 AM钙离子荧光探针BeyotimeS1060
Olink® Target 96炎症面板Olink Proteomics AB--
微型渗透泵(型号1002)Alzet1002
脑输注套件3Alzet0008851
抗IL-17单克隆抗体(AIN457)SelleckA2025
戊四唑----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
CSF样本处理
CSF样本来源(NMDARE患者及对照)、收集时间、离心条件
阅读提示:见Materials and methods: CSF sample collection
hFOs培养与处理
hFOs培养方法、处理时天数(110天)、处理物浓度(NMDAR1-Ab 10 μg/mL)、处理时间(24小时)
阅读提示:见Materials and methods: Generation of hFOs, Results: NMDAR1-Ab exposure
电生理检测
MEA记录参数(15分钟)、钙成像参数(Fluo-4 AM 5 μM, 2Hz, 3分钟)
阅读提示:见Materials and methods: Microelectrode array (MEA) assay, Calcium imaging analysis
蛋白质组学
样本量(各6例)、检测平台(Olink炎症面板)、差异蛋白筛选标准(P<0.05)
阅读提示:见Materials and methods: Olink proteomic analysis
动物模型
小鼠品系、性别、年龄、体重、饲养条件、CSF输注量、泵速率、PTZ剂量(40 mg/kg)、Racine评分标准
阅读提示:见Materials and methods: Animals, Intracerebroventricular infusion, Evaluation of seizure stages