生成Syk(Y317F)敲入小鼠
建立Y317磷酸化缺失的体内模型,用于研究该位点在血小板中的功能。
利用CRISPR/Cas9技术生成Syk(Y317F)敲入小鼠,并通过PCR、酶切及测序确认基因型,通过Western blot确认蛋白水平。
Phosphorylation at Y317 on Syk negatively regulates both ITAM- and hemITAM-mediated signaling and function in platelets
包含体外血小板功能实验(聚集、分泌、流式)、信号通路蛋白磷酸化检测、体内血栓模型(FeCl3损伤)及泛素化机制验证,多层证据相互支撑。
Syk(Y317F)敲入小鼠 小鼠血小板 FeCl3颈动脉损伤模型
Syk Y317F基因型确认(测序及AdhI酶切) 血小板CRP及CLEC-2抗体刺激浓度 血小板聚集、ATP分泌、P-selectin及αIIbβ3活化检测 信号蛋白磷酸化(Syk Y346, Y519/520, LAT Y191, PLCγ2 Y1217) 体内血栓形成时间(FeCl3损伤)及尾出血时间
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立Y317磷酸化缺失的体内模型,用于研究该位点在血小板中的功能。
利用CRISPR/Cas9技术生成Syk(Y317F)敲入小鼠,并通过PCR、酶切及测序确认基因型,通过Western blot确认蛋白水平。
评估Syk Y317F突变对血小板聚集、分泌及整合素活化的影响。
分离Syk(Y317F)和WT血小板,用不同浓度CRP或CLEC-2抗体刺激,检测聚集、ATP分泌、P-selectin暴露及αIIbβ3活化。
确定Y317F突变对GPVI和CLEC-2下游信号分子磷酸化的影响。
用CRP或CLEC-2抗体刺激血小板,通过Western blot检测Syk Y346, Y519/520, LAT Y191, PLCγ2 Y1217的磷酸化水平。
在体内水平验证Y317F突变对血栓形成及止血功能的影响。
通过FeCl3诱导颈动脉损伤模型测定血栓闭塞时间,尾出血实验评估止血功能。
验证Y317F突变是否影响Syk的泛素化水平。
通过Western blot检测Syk pY346高分子量条带,及使用泛素亲和磁珠富集后检测Syk泛素化,比较WT和突变体差异。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 血小板聚集与分泌检测 | 发光聚集仪 | Chrono-log | -- |
| 发光试剂 | Chrono-log | -- | |
| Western blot | 抗磷酸化Syk (Y525/526)抗体 | Cell Signaling Technology | 2710 |
| 抗磷酸化PLCγ2 (Y1217)抗体 | Cell Signaling Technology | 3871 | |
| 抗磷酸化Syk (Y323)抗体 | Cell Signaling Technology | 2715 | |
| 抗磷酸化Syk (Y352)抗体 | Cell Signaling Technology | 2701 | |
| 抗磷酸化LAT (Y191)抗体 | Cell Signaling Technology | 3584 | |
| 抗Syk抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-51703 | |
| 抗PLCγ2抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-5283 | |
| 抗LAT抗体 | OriGene | TA327925 | |
| 封闭缓冲液 | Genesee Scientific | -- | |
| IRDye 800CW山羊抗兔二抗 | LI-COR | -- | |
| IRDye 680LT山羊抗小鼠二抗 | LI-COR | -- | |
| 血小板刺激 | 胶原相关肽 (CRP-XL) | CambCol Ltd | -- |
| CLEC-2激活抗体 | BioLegend | -- | |
| 驴抗大鼠免疫球蛋白 | Novex | -- | |
| AYPGKF肽 | GenScript | -- | |
| 泛素化检测 | ChromoTek泛素捕获磁珠 | Proteintech | -- |
| 流式细胞术 | 抗GPVI抗体 | Emfret Analytics | M011-1 |
| 同型对照IgG-FITC | Emfret Analytics | P190-1 | |
| 抗CD41抗体 | BioLegend | 133914 | |
| 抗CD62P P-选择素FITC | Emfret Analytics | D200 | |
| 抗JON/A-PE | Emfret Analytics | D200 | |
| Annexin V结合缓冲液 | BD Pharmingen | 51-66121E | |
| 抗CD41-BUV395 | BD Bioscience | 752966 | |
| Alexa Fluor 647标记Annexin V | BD Pharmingen | 567356 | |
| FACSymphony A5流式分析仪 | -- | -- | |
| 蛋白质印迹 | iBlot转印系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| LI-COR Odyssey红外成像系统 | LI-COR | -- | |
| 体内血栓模型 | Transonic T402血流仪 | Transonic | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 基因型确认 | Syk Y317F突变确认(AdhI酶切产物大小及Sanger测序结果,小鼠品系C57BL/6) 阅读提示:见Materials and methods 'Generation and housing of Syk(Y317F) mice' 及图1 |
| 血小板制备与刺激 | 血小板浓度(1.5×10^8/mL)、Tyrode's缓冲液成分、CRP和CLEC-2抗体浓度梯度、刺激时间(CRP 3分钟,CLEC-2抗体5分钟) 阅读提示:见Materials and methods 'Platelets preparation' 及 'Western blotting' |
| 功能检测 | 聚集和分泌检测条件(37°C搅拌)、P-selectin和JON/A检测的刺激时间(15分钟)及抗体用量 阅读提示:见Materials and methods 'Platelets preparation' 和 'Flow cytometry' 及图2、图4 |
| 体内模型 | FeCl3浓度(7.5%)、损伤时间(90秒)、小鼠周龄(10-12周);尾出血实验小鼠周龄(4-6周)及截尾长度(3mm) 阅读提示:见Materials and methods 'Tail-bleeding assay' 和 'Carotid artery injury' |
| 泛素化检测 | 血小板浓度(0.6×10^9/mL)、CRP刺激条件(1 μg/mL, 60秒)、裂解缓冲液成分、泛素捕获磁珠用量及孵育时间 阅读提示:见Materials and methods 'Ubiquitin-trap assay' 及图7 |