构建人类和猕猴PFC发育的时空图谱
为了全面描述人类和猕猴出生后PFC发育过程中的细胞类型和分子特征。
整合snRNA-seq、snATAC-seq和scSpatial数据,覆盖人类GW16至25岁和猕猴E90至4岁共87个样本,鉴定出24种主要细胞类型,并建立空间图谱。
Single-cell spatiotemporal transcriptomic and chromatin accessibility profiling in developing postnatal human and macaque prefrontal cortex
包含snRNA-seq、snATAC-seq、scSpatial多组学数据,并结合免疫荧光、体外培养敲降、轨迹分析、细胞通讯等多种验证,形成多层级证据。
人前额叶皮层组织样本 猕猴前额叶皮层组织样本 人皮层离体切片培养 猕猴(食蟹猴)
人类和猕猴PFC样本的年龄范围和样本数(人类GW16至25岁,猕猴E90至4岁,共87个样本) snRNA-seq、snATAC-seq和scSpatial测序方法及平台(10x Genomics) 免疫荧光染色的抗体和稀释比例(如Anti-VAMP2 1:500, Anti-PSD95 1:100) 体外敲降实验的慢病毒滴度(5.79e6-2.2e7 TU/ml)及培养时间(14天) 统计分析方法和显著性阈值(如log2FC>0.25, P<0.05)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
为了全面描述人类和猕猴出生后PFC发育过程中的细胞类型和分子特征。
整合snRNA-seq、snATAC-seq和scSpatial数据,覆盖人类GW16至25岁和猕猴E90至4岁共87个样本,鉴定出24种主要细胞类型,并建立空间图谱。
为了确定人类和猕猴PFC发育的物种差异和关键时间窗口。
利用glmnet算法比较转录组年龄,分析基因模块表达动态,确定突触形成、修剪、细胞死亡等过程在同一时间线上的变化。
为了揭示人类PFC神经元亚型的多样性、迁移和层内定位模式。
整合神经元转录组数据,划分为94个亚群,空间转录组显示部分人类富集亚型在特定窗口中出现并发生迁移和分层定位。
为了验证人类和猕猴PFC突触发生和修剪的时间窗口差异。
通过免疫荧光检测VAMP2和PSD95的密度,发现人类额叶皮层密度显著高于猕猴,且在下调时间上更晚。
为了阐明星形胶质细胞和少突胶质细胞在人类PFC发育中的角色及与神经元的互作。
分析星形胶质细胞和少突胶质细胞亚型,如APC-1/APC-2、OPC-NOL-MOL,鉴定CD44和IGFBP5在星形胶质细胞生成中的作用,并通过CellChat分析配体-受体互作。
为了探究转录因子在神经元发育中的作用,以及疾病风险基因的细胞类型特异性。
结合snRNA和snATAC数据分析TF家族(如CUT和Fork家族)的物种差异,体外敲低CUX1/2、FOXP1/2验证对树突形态的影响,并做疾病基因富集分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 文库制备和测序 | Chromium 单细胞3'试剂盒v3.1 | 10x Genomics | -- |
| Chromium Next GEM 单细胞ATAC试剂盒v1.1 | 10x Genomics | -- | |
| 空间转录组 | Xenium分析仪 | 10x Genomics | -- |
| 数据分析 | Cell Ranger(3.1.0版) | 10x Genomics | -- |
| Cell Ranger ATAC(1.2.0版) | 10x Genomics | -- | |
| 免疫荧光染色 | Leica CM3050 S冷冻切片机 | Leica | -- |
| Leica SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| Cleaved caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| CD44抗体 | Abcam | ab16728 | |
| GFAP抗体 | Abcam | ab279289 | |
| KI67抗体 | Millipore | AB9260 | |
| MBP抗体 | Abcam | ab11159 | |
| OLIG2抗体 | Millipore | AB9610 | |
| PSD95抗体 | Abcam | ab18258 | |
| VAMP2抗体 | Abcam | ab181869 | |
| Alexa Fluor 488/594/647二抗 | Life Technologies | -- | |
| 离体培养 | 琼脂糖 | AMERSCO | 0815-250G |
| 振动切片机 | Leica | VT1200 S | |
| Millicell组织培养插入物 | Millipore | PICM03050 | |
| BrainPhys神经元培养基 | STEMCELL Technologies | 05790 | |
| SM1神经元补充剂 | STEMCELL Technologies | 05711 | |
| N2补充剂 | Thermo Fisher Scientific | 17502048 | |
| 青霉素-链霉素 | Thermo Fisher Scientific | 15140-122 | |
| RNA提取和qPCR | TRIzol | -- | -- |
| TransScript试剂盒 | TransGEN Biotech | AT341-02 | |
| PerfectStart Green SuperMix | TransGEN Biotech | AQ602 | |
| RNA酶抑制剂 | Thermo Fisher Scientific | AM2684 | |
| 核分离 | Nuclei EZ裂解缓冲液 | Sigma-Aldrich | NUC-101 |
| 碎片去除溶液 | Miltenyi Biotech | 130-109-398 | |
| 玻璃杜恩斯组织研磨器 | Sigma-Aldrich | D8938 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本收集和处理 | 人类和猕猴PFC组织的收集条件、解剖区域、固定和保存方法(OCT包埋、液氮、4% PFA固定) 阅读提示:Methods: Human subjects, Macaque subjects, Tissue sample collection and dissection |
| 单核RNA-seq文库构建 | 每样本加载的细胞核数量(约8000个)、10x Genomics试剂盒版本、测序平台(Illumina HiSeq,150bp双端) 阅读提示:Methods: Library preparation and sequencing |
| snATAC-seq文库构建 | 细胞核浓度、10x Genomics ATAC试剂盒版本、测序平台(Illumina NovaSeq,50bp双端) 阅读提示:Methods: Library preparation and sequencing |
| 空间转录组实验 | 靶基因数量(469个)、Xenium平台、组织处理步骤(杂交、连接、扩增、细胞分割) 阅读提示:Methods: Library preparation and sequencing, tissue sample collection and dissection |
| 数据预处理和质控 | 参考基因组(GRCh38, macFas5)、Cell Ranger版本、质控标准(如线粒体基因比例<5%,基因数范围,peak_region_fragment范围等) 阅读提示:Methods: Data preprocessing |
| 差异表达分析 | FindAllMarkers/FindMarkers参数(logfc.threshold=0.25, return.thresh=0.05) 阅读提示:Methods: Identification of DEGs among clusters |
| 免疫荧光染色 | 抗体稀释度(见Methods),抗原修复条件(Tris/EDTA pH 9.0或柠檬酸缓冲液 pH 6.0),切片厚度(20μm) 阅读提示:Methods: Immunofluorescence staining |
| 离体培养和敲降实验 | 组织来源年龄(1.5岁),切片厚度(350μm),培养基成分,病毒滴度,敲降靶点序列,培养时间(14天) 阅读提示:Methods: Human cortex ex vivo slice culture |
| 统计分析 | 使用的统计检验(t检验、ANOVA)、显著性阈值(P<0.05)、数据展示(mean±s.e.m.) 阅读提示:Methods: Statistics and reproducibility |