核糖体图谱分析揭示异质核核糖核蛋白L对Nalf1的转录后调控是紫杉醇诱导的神经病理性疼痛所必需的

Ribosome profiling reveals that post-transcriptional control of Nalf1 by heterogeneous nuclear ribonucleoprotein L is required for paclitaxel-induced neuropathic pain

作者信息June Bryan de la Peña, Guadalupe García, Zachary T Campbell
PMID40839605
期刊Pain
发布时间2025-04
DOI10.1097/j.pain.0000000000003577

实验完整度

包含核糖体图谱与RNA-seq组学分析、行为学验证、条件性基因敲除、免疫共沉淀、免疫印迹和免疫组化等多层级证据,涵盖体外分子机制和体内功能验证。

主要模型

雌性Scn10a-Cre转基因小鼠 HNRNP L条件敲除(cKO)小鼠 Nalf1 CARE元件突变小鼠 NALCN条件敲除(cKO)小鼠

重点核对

紫杉醇剂量4 mg/kg,隔日腹腔注射,共4次 行为学测试时间点(基线、治疗期间、治疗后10天) DRG提取时间(最后一次注射后24小时) HNRNP L抗体(sc-32317)及CARE元件突变株 使用雌性小鼠(6-12周龄)

摘要

化疗药物是挽救生命的药物,但它们并不完美。使人衰弱的神经病理性疼痛是一种常见的剂量限制性副作用。由于停止治疗会降低总生存期,因此迫切需要确定新的靶点来减轻化疗诱导的疼痛。我们以紫杉醇为模型。它与急性疼痛综合征相关,且三分之一的患者会发展为慢性外周神经病理性疼痛。迄今为止,尚无广泛使用的获批疗法能够逆转紫杉醇诱导的外周神经病变(PIPN)。为了揭示PIPN的机制,我们研究了伤害性感觉神经元,因为它们在疼痛信号传导中发挥核心作用。紫杉醇改变RNA和蛋白质的丰度。对大鼠DRG的RNA测序显示,mRNA丰度差异数量适中(97个增加,287个减少)。这些包括与炎症反应和神经肽活性相关的基因。这些差异的潜在机制和意义尚不清楚。候选方法已揭示许多靶点。紫杉醇下游存在几种转录机制。相比之下,我们对PIPN如何影响DRG中翻译效率的理解还很薄弱。这一点至关重要,因为mRNA和蛋白质丰度之间的相关性适中(Pearson R = 0.4)。最近一项对DRG感觉神经元翻译的调查使用了翻译核糖体亲和纯化(TRAP)。该策略涉及细胞类型特异性的核糖体蛋白与GFP表位嵌合融合蛋白的表达。只有8270个基因与核糖体结合。在紫杉醇处理后,mRNA丰度水平上有5个基因不同,核糖体结合水平上有252个基因不同。在这项工作中,我们使用了一种不同的方法,称为核糖体图谱分析。这种策略能够精确地观察DRG整个转录组中活跃翻译区域和翻译效率。在这里,我们调查了紫杉醇如何改变翻译和mRNA丰度。我们检查了翻译效率的变化,并鉴定了一个优先翻译的基因。Nalf1编码NALCN钠泄漏通道的一个必需亚基,该通道调节神经元兴奋性。NALCN已被牵涉到疼痛信号传导中,但尚未在PIPN的背景下进行研究。对Nalf1 3'UTR的检查揭示了一个单一的14核苷酸CA富集元件(CARE)。CARE受RNA结合蛋白HNRNP L控制。为了确定HNRNP L是否在DRG中与Nalf1相互作用,我们对HNRNP L进行了免疫亲和纯化。我们发现HNRNP L在野生型小鼠中结合Nalf1,但在CARE基序被消除的突变体中丢失。从Scn10a表达细胞中消除HNRNP L以及Nalf1中的CARE元件导致紫杉醇处理后机械和热超敏反应减少。在基因破坏NALCN复合物的孔形成亚基后也获得了类似的结果。总的来说,我们的数据揭示了对DRG中转录后调控关键作用的广泛见解,并强调了NALF1/NALCN钠泄漏通道在PIPN中的重要性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
紫杉醇诱导的神经病理性疼痛(PIPN)中,DRG的翻译调控机制及其在疼痛发生中的作用是什么?
核心机制
紫杉醇激活AKT,促进HNRNP L从细胞核转位至细胞质,HNRNP L识别并结合Nalf1 mRNA 3'UTR中的CA富集元件(CARE),增强Nalf1的翻译,上调NALF1蛋白,进而增加NALCN钠泄漏通道功能,导致神经元兴奋性升高和疼痛超敏。
主要证据
核糖体图谱显示Nalf1翻译效率增加,qPCR和免疫印迹证实蛋白上调;RIP-qPCR证明HNRNP L与Nalf1的CARE元件结合;HNRNP L敲除、CARE突变和NALCN敲除小鼠均表现出机械、热和冷超敏反应的显著减弱。
研究意义
研究揭示了DRG中转录后调控在PIPN中的关键作用,并确定HNRNP L和NALF1/NALCN通道为潜在的治疗靶点,为化疗诱导的神经病理性疼痛提供了新的干预思路。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

行为学表型验证

确认紫杉醇处理是否成功诱导小鼠产生机械、热和冷超敏反应。

雌性小鼠腹腔注射紫杉醇(4 mg/kg,共4次,隔日一次),并用von Frey纤维丝、Hargreaves试验和丙酮蒸发试验分别评估机械、热和冷敏感性,观察至停药后10天。

2

核糖体图谱和转录组测序

全面分析紫杉醇处理后DRG中翻译效率和mRNA丰度的变化,筛选差异翻译基因。

提取DRG,用emetine处理,进行核糖体图谱和RNA-seq文库构建,并测序分析,鉴定翻译效率改变的基因,并通过MEME基序分析寻找3'UTR富集元件。

3

验证Nalf1的表达变化

验证紫杉醇是否在mRNA和蛋白水平差异调控Nalf1。

从紫杉醇或溶剂处理的小鼠DRG中提取RNA和蛋白,通过qPCR检测Nalf1 mRNA水平,通过Western blot检测NALF1蛋白水平。

4

HNRNP L定位分析

检测紫杉醇是否影响HNRNP L在DRG神经元中的亚细胞定位,以及AKT抑制的作用。

采用免疫组化共染HNRNP L与外周蛋白,并通过共聚焦显微镜观察细胞质/核分布,统计细胞质阳性比例。部分小鼠在紫杉醇最后一次注射后24小时给予AKT抑制剂GSK-690693(10 mg/kg,单次注射),4小时后灌注取材。

5

HNRNP L条件敲除小鼠表型分析

确定HNRNP L在PIPN发展中的必要性。

利用Scn10a-Cre小鼠与HNRNP L flox小鼠杂交获得条件敲除小鼠,Western blot确认DRG中HNRNP L减少,然后接受紫杉醇处理,并进行行为学测试。

6

CARE元件功能验证

验证Nalf1 3'UTR的CARE元件是否介导HNRNP L结合和翻译调控。

通过基因编辑删除Nalf1 3'UTR中的CARE元件,生成CARE突变小鼠。检测突变对NALF1表达的影响,通过RIP-qPCR检测HNRNP L与Nalf1的结合,并进行行为学测试。

7

NALCN条件敲除小鼠表型分析

确定NALCN通道在PIPN中的作用。

利用Scn10a-Cre小鼠与NALCN flox小鼠杂交获得条件敲除小鼠,Western blot确认DRG中NALCN减少,然后接受紫杉醇处理,并进行行为学测试。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
紫杉醇Cayman Chemical10461
GSK-690693SelleckchemS1113
Scn10a-Cre小鼠Jackson LabsStrain
NALCN flox小鼠Jackson LaboratoryStrain
Hanks平衡盐溶液Invitrogen14065006
氯化钠Sigma-Aldrich--
氯化镁Sigma-Aldrich--
二硫苏糖醇ThermoFisher--
曲拉通X-100Sigma-Aldrich--
脱氧核糖核酸酶ILucigen--
RNA酶抑制剂PlusPromegaN2611
核糖核酸酶IIllumina--
十二烷基硫酸钠Sigma-Aldrich--
SMARTer smRNA-Seq试剂盒TaKaRa--
Quantseq 3' mRNA-Seq文库构建试剂盒Lexogen--
Qubit荧光定量仪Invitrogen--
片段分析仪Advanced Analytical Technologies Inc.--
NextSeq500测序仪Illumina--
RIPA裂解液----
Pierce无EDTA蛋白酶抑制剂Thermo Fisher ScientificA32965
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific23225
抗HNRNP L抗体Santa Cruz Biotechnologysc-32317
抗NALF1抗体ProteinTech24929-1-AP
抗NALCN抗体InvitrogenMA5-27593
抗GAPDH抗体Proteintech10494IAP
抗兔HRP二抗Jackson ImmunoResearch111-036-144
抗小鼠HRP二抗Jackson ImmunoResearch115-036-062
Immobilon Western化学发光HRP底物Millipore--
提取缓冲液----
Pierce无EDTA蛋白酶和磷酸酶抑制剂Thermo Fisher ScientificA32961
RNA酶抑制剂PlusPromega--
抗HNRNP L琼脂糖偶联物Santa Cruz Biotechnologysc-32317AC
正常小鼠IgG琼脂糖偶联物Santa Cruz Biotechnologysc-2343
萤火虫荧光素酶mRNA----
GeneJET RNA纯化试剂盒Fisher ScientificK0702
SuperScript IV VILO预混液Thermo Fisher--
iTaq Universal SYBR Green One-Step试剂盒Bio-Rad--
Applied Biosystems实时荧光定量PCR StepOne Plus仪Applied Biosystems--
Tissue-Tek OCT包埋剂Sakura Finetek4583
山羊抗小鼠Fab片段Jackson ImmunoResearch115-001-003
鸡抗外周蛋白抗体Novus BiologicalsNBP1-05423
DAPIThermoFisher ScientificD1306
ProLong Glass抗淬灭封片剂ThermoFisher ScientificP36984
Leica SP8激光扫描共聚焦显微镜Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、性别、年龄、体重;紫杉醇剂量4 mg/kg、给药途径(腹腔注射)、频率(隔日一次)和总次数(4次);溶剂对照
阅读提示:Methods: Animal use, Mouse strains, Paclitaxel-induced peripheral neuropathy model
核糖体图谱和RNA-seq
DRG取材时间(最后一次注射后24小时)、取材范围(C1-L5)、每个生物学重复的小鼠数量(4只)、生物学重复数(4);核糖体图谱的RNA酶消化条件(RNAse I用量、时间45分钟)、链特异性测序参数;比对和定量软件版本及参数
阅读提示:Methods: Ribosome profiling
行为学测试
测试时间点(基线和紫杉醇给药期间/后)、机械阈值计算方法(up-down)、热刺激强度(40%)和截止时间(20秒)、冷刺激体积(0.05 ml丙酮)和评分标准(4分制)、测试者盲法
阅读提示:Methods: Behavioral tests
分子表达验证
DRG蛋白/RNA提取方法、抗体使用浓度(HNRNP L 1:500、NALF1 1:500、NALCN 1:1000、GAPDH 1:10000)、qPCR引物序列、内参基因(GAPDH)
阅读提示:Methods: Western blotting, Real-time quantitative PCR
RNA免疫沉淀(RIP)
抗HNRNP L抗体偶联琼脂糖和IgG对照、每样本小鼠数量(2只)、洗脱和检测方法、内参(Fluc)、数据分析方法(2^-ΔΔCt)
阅读提示:Methods: RNA immunoprecipitation
免疫组化
固定方法(4%甲醛灌注)、切片厚度(14 μm)、抗体浓度(HNRNP L 1:200、peripherin 1:1000)、观察细胞数(至少300个peripherin阳性神经元)、评分标准(细胞质阳性比例)
阅读提示:Methods: Immunohistochemistry, Confocal imaging