丘脑室旁核中的CXCL7/CXCR2介导肥胖相关疼痛

CXCL7/CXCR2 in the paraventricular thalamus mediates obesity-related pain

作者信息Rui Hu, Qinglan Lu, Yiyan Liu, Yu Zhang, Wu Liu, Wei Yan, Lijun Weng, Benli Jia, Lin Lu, Ye Zhang, Kang Peng, Qi Xue, Chunxia Huang
PMID41530852
发布时间2026-01-13
DOI10.1186/s12974-025-03679-x

实验完整度

包含行为学、化学遗传学、光纤记录、脑片电生理、病毒示踪、蛋白质组学及临床样本分析等多个独立证据层级,并进行功能验证与机制验证。

主要模型

饮食诱导肥胖(DIO)小鼠模型 C57BL/6J小鼠 CXCR2flox小鼠 肥胖患者及健康对照血浆样本

重点核对

小鼠模型:C57BL/6J小鼠,高脂饮食(60% kcal脂肪)喂养20周诱导DIO 病毒注射:AAV-CaMKII-hM4Di-mCherry(PT-0050)等注入PVT或BLA,注射体积100-300 nl,速率30 nl/min 行为学检测:von Frey、Hargreaves、CPA测试,CNO腹腔注射(5 mg/kg,实验前30 min) 电生理记录:脑片全细胞记录,电流阶跃0-160 pA(PVT)或0-200 pA(BLA)

摘要

高脂饮食是驱动全球肥胖流行的主要因素,因此构成了重大的公共卫生挑战。先前的研究表明,肥胖个体表现出更高的疼痛相关疾病患病率。然而,其潜在的神经机制在很大程度上仍不清楚。在此,我们确定了丘脑室旁核(PVTGlu)中的谷氨酸能神经元参与肥胖相关疼痛。抑制PVTGlu神经元可逆转肥胖小鼠的疼痛超敏反应。对肥胖患者血浆样本的蛋白质组学分析显示,趋化因子(C-X-C基序)配体7(CXCL7)水平显著升高。将CXCL7输注到PVT中增加了PVTGlu神经元的兴奋性,并在对照小鼠中诱发了疼痛超敏反应。此外,在肥胖小鼠的PVTGlu神经元中观察到CXC趋化因子受体2(CXCR2)表达增加。敲低PVTGlu神经元中的CXCR2受体可降低PVTGlu神经元的兴奋性并缓解肥胖小鼠的疼痛超敏反应。此外,PVTGlu神经元向基底外侧杏仁核中的谷氨酸能神经元(BLAGlu)发送兴奋性输入,这对于肥胖相关疼痛是必需的。我们的研究表明,下调PVTGlu神经元中的CXCR2受体可消除BLAGlu神经元活动的升高,同时缓解肥胖小鼠的疼痛超敏反应。总之,这些发现强调了CXCL7-CXCR2轴增强PVTGlu→BLAGlu通路在肥胖相关疼痛超敏反应中的关键作用,为针对肥胖相关疼痛的治疗策略的开发提供了新的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肥胖相关疼痛的神经机制,特别是丘脑室旁核(PVT)及其下游通路的作用。
核心机制
CXCL7-CXCR2轴增强PVTGlu→BLAGlu通路活性,导致疼痛超敏反应。
主要证据
行为学测试显示DIO小鼠痛觉超敏;化学遗传学抑制PVTGlu或BLAGlu神经元缓解疼痛;CXCL7输注增加PVTGlu神经元兴奋性并诱发疼痛;CXCR2敲低降低PVTGlu和BLAGlu神经元活性并缓解疼痛;病毒示踪和电生理证实PVTGlu→BLAGlu兴奋性投射。
研究意义
为肥胖相关疼痛的治疗策略提供新的见解和潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立肥胖小鼠模型并评估疼痛行为

验证高脂饮食诱导的肥胖小鼠是否表现出疼痛超敏反应。

C57BL/6J小鼠饲喂高脂饮食(60% kcal脂肪)20周建立DIO模型,对照组饲喂正常饮食。通过von Frey、Hargreaves和CPA测试评估机械痛阈、热痛阈和疼痛厌恶。

2

检测PVT神经元活性

确定PVT区域神经元在疼痛刺激下是否被激活。

通过c-Fos免疫荧光染色检测疼痛刺激后PVT区域神经元激活情况,并分析与CaMKII的共标率。

3

化学遗传学调控PVTGlu神经元

验证PVTGlu神经元活性对疼痛行为的影响。

在DIO小鼠PVT注射AAV-CaMKII-hM4Di-mCherry进行抑制性调控,在对照小鼠注射AAV-CaMKII-hM3Dq-mCherry进行激活,腹腔注射CNO后评估行为。

4

血浆蛋白质组学分析

筛选肥胖相关疼痛的候选分子。

对肥胖患者和健康对照血浆进行LC-MS/MS蛋白质组学分析,通过PCA、GO、KEGG和IPA分析差异蛋白。

5

验证CXCL7在PVT的作用

研究CXCL7对PVTGlu神经元活性和疼痛行为的影响。

向对照小鼠侧脑室或PVT内输注重组CXCL7蛋白,通过免疫荧光、电生理和行为学检测其效应。

6

敲低CXCR2受体

验证CXCR2受体在PVTGlu神经元中的作用。

在DIO CXCR2flox小鼠PVT注射AAV-CaMKII-Cre-mCherry敲低CXCR2,通过免疫荧光、电生理、光纤记录和行为学评估效果。

7

示踪PVTGlu→BLAGlu通路

证实PVTGlu神经元向BLA的投射及细胞类型。

采用顺行和逆行示踪病毒结合免疫荧光染色,验证PVT→BLA投射的神经元类型,并通过光遗传和电生理验证功能性突触连接。

8

评估BLAGlu神经元活性

确认BLAGlu神经元活性是否参与肥胖相关疼痛。

通过电生理记录和光纤记录检测DIO小鼠BLAGlu神经元活性,并通过化学遗传学抑制验证其对疼痛行为的影响。

9

调控PVTGlu→BLAGlu通路

验证该通路在肥胖相关疼痛中的因果作用。

通过在PVT和BLA注射病毒进行化学遗传学抑制,检测BLAGlu神经元活性和行为变化。

10

验证CXCR2对通路的作用

验证CXCR2敲低能否通过影响PVTGlu→BLAGlu通路缓解疼痛。

在DIO CXCR2flox小鼠或C57小鼠中,通过病毒介导的CXCR2敲低,检测BLAGlu神经元活性和行为变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
C57BL/6J小鼠GemPharmatechN000295
C57BL/6Smoc-Cxcr2em1(flox)Smoc小鼠Shanghai Model Organisms CenterNM-CKO-210198
高脂饮食(60% kcal脂肪)MedicienceMD12033
冯弗雷纤维丝RWD--
哈格里夫斯装置IITC--
Smart 3.0系统----
冰冻切片机(Leica CM1860)Leica--
显微镜(VS200)Olympus--
立体定位仪RWD--
氯氮平-N-氧化物BrainVTA--
AAV-CaMKII-hM4Di-mCherryBrainVTAPT-0050
AAV-CaMKII-hM3Dq-mCherryBrainVTAPT-0049
Retro-AAV-CreBrainVTAPT-0136
AAV-DIO-hM4Di-mCherryBrainVTAPT-0020
AAV-CaMKII-mCherryBrainVTAPT-0108
AAV-DIO-mCherryBrainVTAPT-0115
AAV-CaMKII-Cre-mCherry----
AAV-DIO-shRNA(CXCR2)BrainVTA--
AAV-DIO-shRNA(scramble)BrainVTA--
AAV-CaMKII-ChR2-mCherryBrainVTAPT-0297
AAV-hSyn-Cre-EGFPBrainVTAPT-1168
AAV-DIO-EGFPBrainVTAPT-0795
Retro-AAV-hSyn-EGFPBrainVTAPT-0290
AAV-CaMKII-GCaMP6sBrainVTAPT-0110
光纤Inper--
多通道光纤记录系统InperInper-C1-3 C
Inper数据处理软件Inper--
CXCL7蛋白MCEHY-P75698
导管RWD--
抗CaMKII抗体(兔)Abcamab134041
抗CaMKII抗体(小鼠)Abcamab171095
抗CXCL7抗体Abcamab251455
抗CXCR2抗体Proteintech20634-1-AP
抗CXCR1抗体ThermoFisherPA1-29466
抗GPX4抗体Santa Cruzsc166437
抗IBA1抗体Abcamab178846
抗c-Fos抗体Santa Cruzsc-8047
含DAPI的抗淬灭封片剂----
共聚焦显微镜(LSM900)Carl Zeiss--
ImageJ软件----
RNA荧光原位杂交试剂盒GenepharmaF40173
IMARIS软件Bitplane--
振动切片机(7000SMZ-2)Campden--
正置显微镜(Eclipse FN1)Nikon--
微电极拉制仪(P1000)Sutter Instrument--
MultiClamp 700B放大器Molecular Devices--
Digidata 1550BMolecular Devices--
pCLAMP 10.3软件Molecular Devices--
Clampfit 10软件Molecular Devices--
timsTOF Pro质谱仪Bruker--
Spectronaut Pulsar 18.4Biognosys--
GraphPad Prism 8GraphPad Software--
R软件(版本4.4.1)----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
小鼠品系:C57BL/6J(GemPharmatech,N000295)或CXCR2flox(上海模式生物,NM-CKO-210198);饮食:高脂饮食(60% kcal脂肪,MD12033)或正常饮食,喂养20周
阅读提示:Materials and methods: Animals and participants
行为学测试
von Frey:刺激左后足,每只重复3次取平均值;Hargreaves:辐射热,截止时间20秒;CPA:0.16 g von Frey刺激配对,条件训练3天,每天15分钟
阅读提示:Materials and methods: Von Frey test, Hargreaves test, Conditioned place aversion test
立体定位注射
PVT坐标:ML -0.25 mm, AP -0.34 mm, DV -3.6 mm;BLA坐标:ML -3.00 mm, AP -1.46 mm, DV -4.7 mm;注射体积100-300 nl,速率30 nl/min,停留5分钟
阅读提示:Materials and methods: Stereotaxic viral injections
化学遗传学操作
病毒:AAV-CaMKII-hM4Di-mCherry(PT-0050)或AAV-CaMKII-hM3Dq-mCherry(PT-0049)等;CNO剂量5 mg/kg腹腔注射,实验前30分钟;病毒感染后3周进行实验
阅读提示:Materials and methods: Chemogenetic manipulation
电生理记录
脑片厚度300 μm;记录PVTGlu神经元时电流阶跃0-160 pA,步阶20 pA;记录BLAGlu神经元时0-200 pA,步阶10 pA;记录电极电阻3-5 MΩ
阅读提示:Materials and methods: Brain slice electrophysiology
光纤记录
病毒:AAV-CaMKII-GCaMP6s(PT-0110);光纤直径250 μm,植入位置高于注射点0.1 mm;刺激:0.16 g von Frey刺激,信号分析窗口:PVT 25秒,BLA 15秒
阅读提示:Materials and methods: In vivo Ca2+ signal recordings
免疫荧光
一抗浓度:抗CaMKII 1:500,抗CXCL7 1:500,抗CXCR2 1:500等;切片厚度40 μm(c-Fos)或10 μm(FISH);封片剂含DAPI
阅读提示:Materials and methods: Immunofluorescence staining
药理实验
CXCL7蛋白(HY-P75698)溶于ACSF,侧脑室注射1 μl(50 ng/μl),PVT注射300 nl(50 ng/μl),每天一次连续3天;导管植入后7天开始注射
阅读提示:Materials and methods: Cannula infusion in pharmacological experiment
蛋白质组学
血浆样本来自肥胖患者和健康对照;LC-MS/MS使用timsTOF Pro质谱仪;差异蛋白标准:校正P<0.05,FC>1.2或<1/1.2
阅读提示:Materials and methods: Plasma proteomics analysis by LC-MS/MS