SC和JC突变体构建
生成不同SC和JC突变体以评估其在SIgA组装中的功能
通过重叠延伸PCR和克隆将突变引入SC和JC编码序列,包括D1-CDR3突变、D1-D3界面突变和JC YPD突变/截短。
Structural and Biochemical Requirements for Secretory Component Interactions with Dimeric IgA
包含SPR结合实验和定点突变,有明确的功能验证,但主要为体外生化分析,缺乏体内或细胞实验验证。
小鼠分泌成分(SC)及D1结构域重组蛋白 小鼠dFcα(dIgA缺失Fab)重组蛋白
SC-D1-CDR3突变体(GTSNRGL→GAGGAGA)对dIgA结合的影响 D1-D3界面突变(F5A/Y23A/P25A、L226A/Y228A/F326A)对SC结合的影响 JC YPD基序突变或截短对dFcα组装及SC/D1结合的影响 SPR实验中使用的dFcα浓度(0.25-0.5μM)和SC/D1分析物浓度系列
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
生成不同SC和JC突变体以评估其在SIgA组装中的功能
通过重叠延伸PCR和克隆将突变引入SC和JC编码序列,包括D1-CDR3突变、D1-D3界面突变和JC YPD突变/截短。
获得用于SPR结合实验的重组蛋白
将SC、D1、Fcα和JC构建体瞬时转染Expi293F细胞,利用Ni-NTA亲和层析和尺寸排阻色谱纯化蛋白和复合物。
定量评估SC/D1与dFcα的结合亲和力和动力学
将dFcα固定在SPR传感器芯片上,使用SC/D1突变体作为分析物,应用Bruker SRARA-32 Pro系统测量结合响应。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白表达 | Expi293F细胞 | Gibco | A14527 |
| ExpiFectamine 293转染试剂盒 | Gibco | A14525 | |
| 蛋白纯化 | Ni-NTA树脂 | Qiagen | 30210 |
| Superose 6 | Cytiva | -- | |
| Superdex 200 | Cytiva | -- | |
| AKTA FPLC | Cytiva | -- | |
| Amicon Ultra离心过滤器 | Millipore Sigma | -- | |
| SPR | Sierra SPR-32 Pro | Bruker | -- |
| 高容量胺(HCA)32点传感器 | Bruker | -- | |
| 胺偶联试剂盒 | Bruker | -- | |
| PCR | 引物 | Integrated DNA Technologies | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| SC/D1突变体构建 | 突变序列:D1-CDR3 GTSNRGL→GAGGAGA,D1 F5A/Y23A/P25A,D3 L226A/Y228A/F326A,JC Y135A/P136A/D137A等 阅读提示:Methods: Construct design and cloning |
| 蛋白表达 | 细胞系Expi293F,转染试剂盒,培养时间4-5天 阅读提示:Methods: Protein expression and purification |
| 蛋白纯化 | Ni-NTA亲和层析和SEC(Superose 6/Superdex 200)条件,缓冲液TBS pH7.4 阅读提示:Methods: Protein expression and purification |
| SPR结合 | 固定dFcα浓度0.25-0.5μM,分析物浓度系列(起始2μM),接触120s,解离300s,流速25μL/min,再生液2.5M MgCl2 阅读提示:Methods: SPR experiments and data analysis |