BMX调控癌症中的3βHSD1和性类固醇生物合成

BMX controls 3βHSD1 and sex steroid biosynthesis in cancer

作者信息Xiuxiu Li, Michael Berk, Christopher Goins, Mohammad Alyamani, Yoon-Mi Chung, Chenyao Wang, Monaben Patel, Nityam Rathi, Ziqi Zhu, Belinda Willard, Shaun Stauffer, Eric Klein, Nima Sharifi
PMID36647826
发布时间2023-01-17
DOI10.1172/JCI163498

实验完整度

包含体外细胞实验、激酶筛选、生化酶学分析、体内小鼠移植瘤模型以及新鲜人前列腺组织代谢检测等多个独立证据层级,并包含功能验证与机制验证。

主要模型

C4-2细胞系 LNCaP细胞系 VCaP细胞系 NSG小鼠移植瘤模型

重点核对

3βHSD1 Y344磷酸化状态(Y344F突变体) BMX表达水平(shRNA敲低或过表达) BMX抑制剂(zanubrutinib、ibrutinib)处理 DHEA底物处理浓度和时间(如100 nM) 去势及DHEA缓释片植入的动物模型条件

摘要

前列腺癌高度依赖雄激素和雄激素受体(AR)。激素治疗抑制性腺睾酮的产生,阻断性腺外雄激素的生物合成,或直接拮抗AR。对药物去势的抵抗表现为去势抵抗性前列腺癌(CRPC),其由雄激素-AR轴的再激活驱动。3β-羟基类固醇脱氢酶-1(3βHSD1)是从性腺外前体合成强效雄激素的限速步骤,从而刺激CRPC。男性中的遗传证据证明了3βHSD1在驱动CRPC中的作用。在绝经后女性中,3βHSD1是合成芳香化酶底物所必需的,并在乳腺癌中发挥重要作用。因此,3βHSD1位于雄激素和雌激素合成的关键节点,这种代谢通量通过种系遗传机制调控。我们表明酪氨酸344(Y344)的磷酸化发生且是3βHSD1细胞活性及生成Δ4,3-酮基底物(5α-还原酶和芳香化酶的底物)所必需的,包括在患者组织中。BMX直接与3βHSD1相互作用,是酶磷酸化和雄激素生物合成所必需的。体内阻断3βHSD1 Y344磷酸化抑制CRPC。这些发现确定了我们认为是对性类固醇依赖性癌症的新的激素治疗药理学脆弱性。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
BMX激酶是否以及如何调控3βHSD1的活性,进而影响性类固醇生物合成和CRPC进展?
核心机制
BMX直接磷酸化3βHSD1的Y344位点,该磷酸化促进3βHSD1二聚化,增强其酶活性,从而促进DHEA向Δ4-雄烯二酮及下游雄激素和雌激素的合成,驱动CRPC进展。
主要证据
体外激酶实验证明BMX直接磷酸化3βHSD1 Y344;细胞实验显示Y344F突变或BMX抑制降低DHEA代谢、AR转录活性和细胞增殖;体内小鼠移植瘤模型显示Y344F突变或zanubrutinib治疗抑制去势后DHEA驱动的肿瘤生长并降低瘤内睾酮;人前列腺组织培养实验显示zanubrutinib抑制DHEA代谢和3βHSD1磷酸化。
研究意义
该研究提供了一个以BMX为靶点抑制3βHSD1磷酸化的临床可用策略,以对抗肾上腺许可型HSD3B1等位基因带来的不良临床结局,并可能用于阻断雌激素驱动的绝经后乳腺癌的雌激素合成,对性类固醇依赖性疾病具有广泛适用性。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定3βHSD1磷酸化位点及其对酶活性的必要性

确定3βHSD1是否存在功能必需的磷酸化修饰及其位点。

在C4-2细胞中过表达HA-3βHSD1,用抗磷酸化酪氨酸抗体检测酪氨酸磷酸化;通过质谱分析鉴定磷酸化位点Y255和Y344;构建Y344F和Y255F突变体,检测DHEA代谢能力;使用定制磷酸化特异性抗体检测DHEA诱导的Y344磷酸化。

2

筛选并验证3βHSD1上游激酶为BMX

寻找并验证负责磷酸化3βHSD1 Y344的激酶。

使用激酶抑制剂文库筛选抑制DHEA代谢的化合物;结合磷酸化预测工具,锁定BMX;通过药理学抑制剂、基因敲降和过表达实验验证BMX对3βHSD1磷酸化和DHEA代谢的作用;通过免疫共沉淀和体外激酶实验验证BMX与3βHSD1的直接相互作用和磷酸化。

3

验证Y344磷酸化增强3βHSD1二聚化和细胞活性

阐明Y344磷酸化增强3βHSD1细胞酶活性的机制。

纯化WT和Y344F突变体蛋白,进行NAD+转化动力学分析;在细胞中共转染Flag-3βHSD1和GST-3βHSD1,检测二聚化;使用BMX抑制剂或Y344F突变体阻断磷酸化,观察对二聚化的影响。

4

评估BMX/3βHSD1磷酸化对前列腺癌细胞增殖和AR信号的影响

确定3βHSD1 Y344磷酸化及BMX在前列腺癌细胞中的功能重要性。

构建稳定表达WT或Y344F 3βHSD1的C4-2细胞系,检测DHEA代谢、细胞增殖和AR靶基因表达;构建BMX敲低的LNCaP细胞系,检测细胞增殖和AR活性;使用BMX抑制剂处理LNCaP和C4-2细胞,检测细胞增殖和基因表达。

5

在体内验证3βHSD1 Y344磷酸化和BMX对CRPC生长的作用

在动物模型中验证Y344磷酸化对CRPC肿瘤生长和雄激素合成的必要性,以及BMX药理学阻断的治疗效果。

将稳定表达WT或Y344F 3βHSD1的C4-2细胞皮下注射到NSG雄性小鼠,肿瘤生长后去势并植入DHEA缓释片,监测肿瘤生长和生存期;对C4-2或VCaP荷瘤小鼠去势并植入DHEA片后,口服zanubrutinib,评估肿瘤生长、生存期、瘤内睾酮和AR靶基因表达。

6

在新鲜人前列腺组织中评估BMX抑制作用

验证BMX抑制在人类组织中的效果,评估其转化潜力。

收集前列腺癌患者根治术后新鲜组织,离体培养,用或不用zanubrutinib处理,加入[3H]-DHEA,通过HPLC检测DHEA代谢;通过免疫沉淀和Western blot检测3βHSD1磷酸化和BMX-3βHSD1相互作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗3βHSD1抗体Abcamab55268
抗磷酸化BMX抗体Abcamab59409
抗磷酸化酪氨酸抗体Sigma-Aldrich05-1050
抗磷酸化3βHSD1 Y344抗体Affinity Biosciences--
抗GST抗体AbclonalAE001
抗Flag抗体Sigma-AldrichF3165
抗HA抗体Cell Signaling Technology3724S
抗β-肌动蛋白抗体Cell Signaling Technology3700S
抗BMX抗体Cell Signaling Technology24773
抗GAPDH抗体Cell Signaling Technology14C10
泽布替尼SelleckchemBGB-3111
伊布替尼SelleckchemS2680
阿卡拉布替尼SelleckchemACP-196
氚标记脱氢表雄酮PerkinElmer--
RPMI 1640培养基----
DMEM培养基----
胎牛血清Gemini--
青霉素-链霉素Gibco--
聚凝胺----
FuGENE HD转染试剂PromegaE2311
LentiCRISPRv2载体----
β-葡糖醛酸酶Novoprotein--
Luna C18反相色谱柱Phenomenex--
Breeze 1525高效液相色谱系统Waters Corp--
β-RAM 3型在线放射性检测器IN/US Systems Inc.--
Liquiscint闪烁液National Diagnostics--
GenElute哺乳动物总RNA小提试剂盒Sigma-Aldrich--
iScript cDNA合成试剂盒Bio-Rad--
ABI 7500实时荧光定量PCR仪Applied Biosystems--
iTaq Fast SYBR Green Supermix(含ROX)Bio-Rad--
RIPA裂解液Sigma-Aldrich--
蛋白酶抑制剂Roche--
磷酸酶抑制剂Sigma-Aldrich--
BCA蛋白定量分析Thermo Fisher Scientific--
硝酸纤维素膜Millipore--
化学发光检测系统Thermo Fisher Scientific--
抗Flag M2亲和凝胶Sigma-AldrichA2220
Orbitrap Elite质谱系统Thermo Fisher Scientific--
Dionex Acclaim PepMap C18色谱柱----
Sequest软件----
Proteome Discoverer 2.3软件----
碱性磷酸酶----
FLAG M纯化试剂盒Sigma-Aldrich--
3×FLAG肽----
Amicon Ultra-0.5离心超滤管Millipore--
GelCode蓝色染色试剂Pierce24590
Promega NADH检测试剂盒Promega--
BioTek Synergy Neo多功能酶标仪BioTek--
细胞增殖试剂WST-1Sigma-Aldrich--
台盼蓝Thermo Fisher Scientific--
基质胶----
DHEA缓释片----
红花籽油Sigma-Aldrich--
NEXERA X2超高效液相色谱系统Shimadzu Corporation--
InfinityLab Poroshell 120 EC-C18色谱柱Agilent--
Zorbax Eclipse Plus C18色谱柱Agilent--
Qtrap 5500质谱仪AB Sciex--
MultiQuant软件AB Sciex--
HumanHT-12 v4表达芯片Illumina--
iScan扫描仪Illumina--
GenomeStudio软件Illumina--
HemI软件----
HSD3B1基因分型----
GraphPad Prism软件--version 9.0.0
Microsoft Excel软件--version 16.43

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和构建
细胞系来源(如LNCaP、C4-2、VCaP、293T)及培养条件是关键,需核对培养基、血清类型和浓度。
阅读提示:Methods: Cell lines and constructs
类固醇代谢分析
处理浓度和时间:如[3H]-DHEA (100 nM, 300,000-600,000 cpm)处理时间(如4、5、6小时);需核对培养基体积、细胞数量和检测时间点。
阅读提示:Methods: Steroid metabolism
基因表达分析
处理条件:如DHEA处理浓度(100 nM)和时间(48小时);需核对qPCR的归一化基因(RPLP0)和引物序列。
阅读提示:Methods: Gene expression
免疫印迹和免疫沉淀
抗体使用浓度(如1:2,000)和IP条件;需核对用于IP的细胞裂解液量(2 mg)和亲和凝胶体积(30 μL)。
阅读提示:Methods: Immunoblots and immunoprecipitation
体外激酶实验
激酶反应缓冲液成分、ATP浓度(20 μM)、温度(30°C)和时间(30分钟)。
阅读提示:Methods: In vitro kinase assay
酶动力学
NAD+浓度(0.1 mM)、DHEA浓度范围(1-20 μM)、蛋白量(1 μg)、反应时间(1小时)。
阅读提示:Methods: Enzyme kinetics
细胞增殖实验
细胞接种密度(约10^4/孔)、饥饿条件(无酚红培养基,5% CSS)、DHEA浓度(100 nM)、处理时间(5天)。
阅读提示:Methods: Cell proliferation assay and cell counting
小鼠异种移植模型
小鼠品系(NSG雄性,6-8周龄)、细胞注射量(C4-2: 10^7或6×10^6; VCaP: 10^7)、去势手术、DHEA缓释片剂量(5 mg)、zanubrutinib剂量(15 mg/kg)和给药方式(口服,每日两次)。
阅读提示:Methods: Mouse xenograft studies, Figure 5
人前列腺组织培养
组织获取和处理细节(如切割、等分)、培养基(DMEM, 10% FBS)、zanubrutinib或DMSO处理、[3H]-DHEA或DHEA浓度和处理时间。
阅读提示:Methods: Human tissue studies, Figure 6
质谱分析
样本量(至少30 mg肿瘤组织)、内标(d3-T)、提取溶剂(MTBE)和分析平台(QTRAP 5500)。
阅读提示:Methods: Mass spectrometry analysis