鉴定α6β4受体功能表达的辅助蛋白
通过全基因组cDNA筛选,寻找能够促进人类α6β4受体在HEK293T细胞中功能表达的蛋白。
将α6和β4亚基cDNA与全基因组表达文库中的单个质粒共转染至HEK293T细胞,使用FLIPR检测尼古丁诱发的Ca2+信号,筛选增强α6β4活性的克隆。
Functional α6β4 acetylcholine receptor expression enables pharmacological testing of nicotinic agonists with analgesic properties
包含全基因组筛选、体外功能验证(FLIPR、电生理)、生化机制研究、原代神经元及多种基因敲除小鼠体内行为学验证,证据层级丰富。
HEK293T细胞 爪蟾卵母细胞 大鼠皮层神经元 小鼠DRG神经元 小鼠SNI神经病理性疼痛模型
HEK293T细胞转染α6β4及辅助蛋白后,通过FLIPR检测尼古丁诱发的Ca2+信号 爪蟾卵母细胞注射cRNA后通过双电极电压钳记录ACh诱发电流 BARP-KO和NACHO-KO小鼠在SNI模型中尼古丁和ABT-594诱导的机械性异常性疼痛缓解情况 使用[3H]epibatidine结合实验量化α6β4受体组装和表面表达 HEK293T细胞中IRE1α突变体(K599A、K907A、I642G)对α6β4功能的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过全基因组cDNA筛选,寻找能够促进人类α6β4受体在HEK293T细胞中功能表达的蛋白。
将α6和β4亚基cDNA与全基因组表达文库中的单个质粒共转染至HEK293T细胞,使用FLIPR检测尼古丁诱发的Ca2+信号,筛选增强α6β4活性的克隆。
在多种表达系统中验证BARP和IRE1α对α6β4受体功能的影响。
在HEK293T细胞和爪蟾卵母细胞中分别共表达α6β4与BARP或IRE1α,通过FLIPR、双电极电压钳和全细胞膜片钳记录ACh或尼古丁诱发的电流和Ca2+信号。
区分BARP和IRE1α促进α6β4受体功能的分子机制,明确是影响表面表达还是受体组装。
使用带有HA或V5标签的α6β4进行表面染色和免疫共沉淀;使用[3H]epibatidine结合实验检测受体组装;通过BARP截短突变体和IRE1α功能缺失突变体确定关键结构域和作用机制。
验证内源性IRE1α是否在生理和相关应激条件下调节α6β4受体的组装和功能。
使用衣霉素(Tm)诱导内质网应激,激活内源性IRE1α,检测α6β4的[3H]epibatidine结合和FLIPR信号;在IRE1α-KO HEK293T细胞系中验证Tm效应的特异性。
在体内模型中验证BARP对DRG神经元α6β4表面表达的重要性,并评估α6β4在烟碱激动剂诱导的抗异常性疼痛中的作用。
比较WT和BARP-KO小鼠DRG神经元中α6β4的表面表达;建立SNI神经病理性疼痛模型,给予尼古丁或ABT-594,测量机械性异常性疼痛阈值;并排除NACHO和α4β2受体的参与。
探究不同烟碱激动剂在α6β4受体上的活性与其缓解神经病理性疼痛的临床疗效之间的关联。
在表达α6β4的HEK293T细胞中,使用FLIPR测定尼古丁、ABT-594、ABT-894和依巴替丁的浓度-反应曲线,比较它们在α6β4和α4β2或α3β4上的最大效能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与转染 | 高糖DMEM培养基 | -- | -- |
| FuGENE 6转染试剂 | Promega | -- | |
| ViaFect转染试剂 | Promega | -- | |
| 神经元培养 | NbActiv培养基 | BrainBits | -- |
| 木瓜蛋白酶 | -- | -- | |
| DRG神经元分离 | 胶原酶/蛋白酶IV溶液 | -- | -- |
| Percoll梯度 | -- | -- | |
| DRG神经元培养 | Neurobasal A培养基 | -- | -- |
| B-27添加剂 | -- | -- | |
| GlutaMAX添加剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 神经生长因子 | -- | -- | |
| 多聚-D-赖氨酸 | -- | -- | |
| 层粘连蛋白 | -- | -- | |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
| ABT-594 | Tocris | -- | |
| 二氢-β-刺桐丁 (DHβE) | -- | -- | |
| 分子生物学 | TransIT-X2转染试剂 | Mirus | MIR6003 |
| Zero Blunt TOPO PCR克隆试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | K280020SC | |
| RNeasy迷你试剂盒 | QIAGEN | 74104 | |
| SuperScript IV第一链合成系统 | Thermo Fisher Scientific | 18091050 | |
| FLIPR分析 | Calcium 5染料 | Molecular Devices | -- |
| FLIPR Tetra系统 | Molecular Devices | -- | |
| FLIPR缓冲液 | HyClone | -- | |
| PNU-120596 | -- | -- | |
| 免疫荧光表面染色 | Dylight HA-650抗体 | Invitrogen | 26183-D650 |
| Alexa Fluor V5-555抗体 | Invitrogen | 37-7500-A555 | |
| NucBlue溶液 | Invitrogen | -- | |
| Opera Phenix共聚焦仪器 | PerkinElmer | -- | |
| Columbus自动化软件 | PerkinElmer | -- | |
| 免疫荧光表面染色(神经元) | β-3微管蛋白 (Tuj1) 抗体 | eBioscience | 53-4510-82 |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| [3H]epibatidine结合实验 | Trizma缓冲液 | MilliporeSigma | -- |
| T-25 Ultra-Turrax匀浆器 | Ika | -- | |
| Pierce BCA蛋白测定试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| [3H]依巴替丁 | PerkinElmer | -- | |
| 未标记的依巴替丁 | Tocris | -- | |
| GF/B滤板 | PerkinElmer | -- | |
| MicroScient-0闪烁液 | -- | -- | |
| TopCount NXT闪烁计数器 | PerkinElmer | -- | |
| 蛋白生化 | RIPA裂解缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Halt蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA516914 | |
| 抗IRE1α抗体 | Cell Signaling Technology | 3294S | |
| 抗HA抗体 | Thermo Fisher Scientific | 26183 | |
| 抗V5抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA1993 | |
| 抗BARP抗体 | -- | -- | |
| Odyssey成像系统 | Licor | -- | |
| 免疫共沉淀 | 正十二烷基-D-麦芽糖苷 | -- | -- |
| Protein A磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 卵母细胞记录 | mMessage mMACHINE T7转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | AM1344 |
| 改良Barth盐溶液 | MilliporeSigma | -- | |
| 庆大霉素 | -- | -- | |
| HEKA放大器 | HEKA Elektronik | -- | |
| FitMaster软件 | HEKA Elektronik | -- | |
| 电生理记录 | 硼硅酸盐玻璃微电极 | World Precision Instruments | -- |
| PC-10微电极拉制仪 | Narshige | -- | |
| MXPZT压电驱动器系统 | Siskiyou | -- | |
| Axopatch 200B放大器 | Molecular Devices | -- | |
| pClamp10软件 | Molecular Devices | -- | |
| 统计分析 | Prism软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 全基因组筛选 | 筛选所用cDNA文库的来源(Broad Institute),共转染的质粒比例(1:1:1),HEK293T细胞的培养条件(DMEM高糖、10% FBS、1 mM丙酮酸钠),转染试剂(FuGENE 6或ViaFect),转染后细胞在30°C促进表面表达的处理,以及FLIPR检测的具体参数(如缓冲液成分、Calcium 5染料孵育时间、刺激浓度等)。 阅读提示:Methods 中 'Cell culture and transfection' 和 'FLIPR assays' 部分 |
| 验证BARP和IRE1α的功能作用 | HEK293T细胞中转染α6β4与辅助蛋白的质粒比例(3:1:5),FLIPR检测中尼古丁的刺激浓度,爪蟾卵母细胞中cRNA注射量(60 ng)及比例(1:1:2),记录缓冲液成分,以及电生理记录的详细参数(如钳制电压、刺激持续时间等)。 阅读提示:Methods 中 'FLIPR assays'、'Oocyte recordings' 和 'Electrophysiology' 部分 |
| 研究BARP和IRE1α的作用机制 | 用于表面染色的抗体浓度和孵育条件,免疫共沉淀的裂解缓冲液成分(100 mM NaCl, 1% n-dodecyl-D-maltoside, 1 mM iodoacetamide),用于检测组装的[3H]epibatidine浓度(10 nM)和孵育时间(2-3小时),以及BARP截短突变体(BARP101, BARP202, BARPΔTM)和IRE1α突变体(K599A, K907A, I642G)的具体构建和表达效果。 阅读提示:Methods 中 'Immunofluorescent surface staining'、'[3H]epibatidine binding'、'Protein biochemistry' 和 'Molecular biology' 部分 |
| 评估内源性IRE1α的作用 | 衣霉素(Tm)的处理浓度(100 ng/mL)和时间点(4、12、24小时),IRE1α抑制剂STF-083010的处理浓度(20 μM)和预处理时间(30分钟),原代皮层神经元的培养体系(NbActiv培养基,BrainBits),以及CRISPR/Cas9介导的IRE1α-KO细胞系的构建细节(gRNA序列、ssODN序列、转染试剂等)。 阅读提示:Methods 中 'Cell culture and transfection'、'FLIPR assays'、'[3H]epibatidine binding' 和 'Molecular biology' 部分 |
| 评估体内效果 | SNI手术的具体操作步骤(结扎腓总神经和胫神经),von Frey纤维丝测试的具体操作(刺激时间、阳性判断标准),尼古丁(1.0 mg/kg)和ABT-594(0.3 mg/kg)的给药途径(i.p.)和测试时间点(10分钟和1小时),DHβE的给药剂量(1 mg/kg, s.c.)和预处理时间(20分钟),以及动物品系(WT、BARP-KO、NACHO-KO)和性别(成年雄性)。 阅读提示:Methods 中 'SNI and tactile threshold testing' 部分,以及 Figure 6 和 Supplemental Figure 7 的图注 |
| 评估烟碱激动剂的药理作用 | FLIPR检测中使用的激动剂浓度范围(如尼古丁、ABT-594、ABT-894、epibatidine)和刺激时间,细胞共表达α6β4及辅助蛋白的具体比例(3:1:5),以及用于比较的α4β2和α3β4受体的表达条件。 阅读提示:Figure 6 D 和 E 的图注,以及 Methods 中 'FLIPR assays' 部分 |