心脏传导系统的体内可视化和分子靶向

In vivo visualization and molecular targeting of the cardiac conduction system

作者信息William R Goodyer, Benjamin M Beyersdorf, Lauren Duan, Nynke S van den Berg, Sruthi Mantri, Francisco X Galdos, Nazan Puluca, Jan W Buikema, Soah Lee, Darren Salmi, Elise R Robinson, Stephan Rogalla, Dillon P Cogan, Chaitan Khosla, Eben L Rosenthal, Sean M Wu
PMID35951416
发布时间2022-10-17
DOI10.1172/JCI156955

实验完整度

包含体外抗体结合检测、小鼠活体成像、ECG功能验证、组织学验证、单细胞RNA-seq及免疫荧光验证等多层级证据。

主要模型

野生型CD1小鼠 小鼠心脏 人心脏组织(65岁)

重点核对

单剂量75 μg mCntn2-800通过尾静脉注射,72小时后成像 单剂量100 μg hCNTN2-Sap或Control-Sap尾静脉注射,2天后ECG及免疫组化分析 mNptn-800剂量150 μg,尾静脉注射,24小时后成像 单细胞RNA-seq数据来自GSE132658数据集 使用t检验、单向或双向ANOVA及Tukey事后检验进行统计学分析

摘要

心脏传导系统(CCS)是一组嵌入心脏内、与周围心肌组织难以区分的特化细胞网络,其意外损伤是心脏手术的主要并发症。在此,我们通过工程化针对CCS的靶向抗体-染料偶联物解决了这一未满足的需求,使得单次静脉注射小鼠后能够在体内可视化CCS。这些光学成像工具显示出高灵敏度、特异性和分辨率,对CCS功能无不良影响。此外,为了创建可用于人类的可行原型,我们生成了同样以高特异性靶向CCS的全人源单克隆Fab。我们证明,当与另一种货物偶联时,该Fab也可用于体内调节CCS生物学,为靶向心脏治疗提供了概念验证。最后,通过对整个小鼠CCS进行单细胞分辨率的差异基因表达分析,我们发现并验证了一系列额外的细胞表面标记物,可用于分子靶向CCS的不同亚组分,每个亚组分易发生不同的危及生命的心律失常。这些发现为在心胸外科、心脏成像和心律失常管理中靶向CCS进行可视化和治疗的转化方法奠定了基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何实现对心脏传导系统(CCS)的体内可视化和分子靶向,以减少心脏手术中的医源性损伤?
核心机制
通过靶向CCS特异性表面标志物(如Cntn2和Nptn)的抗体-染料偶联物,实现单次静脉注射后的特异性标记;全人源抗CNTN2 Fab可偶联毒素靶向递送至CCS细胞,导致其死亡并调节功能;单细胞转录组分析揭示了CCS亚组分特有的表面标志物。
主要证据
小鼠活体成像显示mCntn2-800和mNptn-800特异性标记整个CCS;ECG显示hCNTN2-Sap导致传导异常;免疫荧光和RNAscope验证了新标志物的表达。
研究意义
为心脏手术中预防CCS损伤提供可视化工具,并为CCS靶向治疗(如递送抗心律失常药物)奠定基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

生成和验证mCntn2-800成像剂

验证靶向Cntn2的抗体-染料偶联物能否在体内特异性标记CCS。

将IRDye800CW NHS酯与抗Cntn2多克隆抗体偶联,通过尾静脉注射野生型小鼠,72小时后取材成像,并检测ECG和免疫荧光共染。

2

光清除和3D成像

验证mCntn2-800能否在完整心脏中实现高分辨率3D成像。

注射mCntn2-800后48小时取心脏,固定后使用iDISCO+清除,并用光片显微镜成像。

3

活体成像模拟手术场景

评估mCntn2-800在手术条件下能否实时可视化CCS。

注射mCntn2-800后48小时,小鼠行胸骨切开术及右心房/心室切开术,使用FLARE系统进行活体成像,并随后进行固定和免疫染色确认特异性。

4

生成和验证全人源抗CNTN2 Fab

生成能结合人CNTN2的全人源单克隆Fab,并测试其体内靶向CCS的能力。

通过噬菌体展示筛选人CNTN2 Fab,偶联IRDye800CW后注射小鼠,进行免疫荧光检测;将Fab与皂草素偶联(hCNTN2-Sap)以靶向递送毒素。

5

单细胞RNA-seq筛选CCS表面标志物

发现CCS亚组分特异的细胞表面标志物。

分析已有的小鼠CCS scRNA-seq数据,筛选CCS富集的表面蛋白基因,并用RNAscope和免疫荧光验证。

6

验证Nptn作为CCS靶点的可行性

验证Nptn在CCS表达,并测试mNptn-800能否特异性标记CCS。

通过免疫荧光检测小鼠和人心脏中Nptn的表达;生成mNptn-800偶联物注射小鼠,进行成像和ECG评估。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
IRDye800CW NHS酯LI-COR Biosciences929-70020
抗Cntn2山羊多克隆抗体R&D SystemsAF4439
抗NPTN山羊多克隆抗体R&D SystemsAF5360
非特异性IgGThermo Fisher Scientific50270683
Zeba旋转脱盐柱Pierce89891
Fluoreporter Mini-Biotin-XX蛋白质标记试剂盒InvitrogenF6347
链霉亲和素偶联的皂草素Advanced Targeting SystemsIT-27
生物素化人IgG和链霉亲和素-皂草素Advanced Targeting SystemsIT-77
Tissue-Plus OCT包埋剂Thermo Fisher Scientific23-730-571
含DAPI的封片剂Vector LaboratoriesH-1200
Pearl Impulse成像系统LI-COR--
FLARE术中近红外荧光成像系统----
蔡司Axio Imager显微镜Zeiss--
蔡司LSM980倒置共聚焦显微镜Zeiss--
人CNTN2-His重组蛋白Acro BiosystemsCN2-H5226

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
光学成像剂注射与成像
mCntn2-800剂量75 μg,注射后72小时成像;mNptn-800剂量150 μg,注射后24小时成像;通过尾静脉注射;野生型CD1小鼠体表ECG获取方法;成像系统参数
阅读提示:Methods中的“Delivery of optical imaging agents, surface ECG, and imaging”和结果部分
hCNTN2-Sap靶向递送
hCNTN2-Sap剂量100 μg,尾静脉注射;注射后2天进行ECG和免疫组化;对照组Control-Sap剂量100 μg
阅读提示:结果部分“Generation and characterization of a fully human anti-CNTN2 Fab...”和“Monoclonal Fab in vivo targeting of the CCS”
单细胞RNA-seq分析
使用的数据集GSE132658;筛选标准(log FC, 调整P值, SurfaceGenie预测);Bonferroni校正
阅读提示:Methods中的“Bioinformatics analysis”和结果部分“Gene expression analyses...”
免疫荧光和RNAscope
组织固定条件(4%多聚甲醛)、切片厚度10 μm;抗体浓度和孵育时间;RNAscope探针目录号;生物学和技术重复数(至少3和4)
阅读提示:Methods中的“Immunofluorescence”和“RNAscope in situ hybridization”
iDISCO+组织清除和3D成像
iDISCO+方案细节;光片显微镜型号Ultramicroscope II;成像参数
阅读提示:Methods中的“iDISCO+”