1型糖尿病中甲基化减少与糖尿病肾病风险相关

Reduced methylation correlates with diabetic nephropathy risk in type 1 diabetes

作者信息Ishant Khurana, Harikrishnan Kaipananickal, Scott Maxwell, Sørine Birkelund, Anna Syreeni, Carol Forsblom, Jun Okabe, Mark Ziemann, Antony Kaspi, Haloom Rafehi, Anne Jørgensen, Keith Al-Hasani, Merlin C Thomas, Guozhi Jiang, Andrea Oy Luk, Heung Man Lee, Yu Huang, Yotsapon Thewjitcharoen, Soontaree Nakasatien, Thep Himathongkam, Christopher Fogarty, Rachel Njeim, Assaad Eid, Tine Willum Hansen, Nete Tofte, Evy C Ottesen, Ronald Cw Ma, Juliana Cn Chan, Mark E Cooper, Peter Rossing, Per-Henrik Groop, Assam El-Osta
PMID36633903
发布时间2023-02-15
DOI10.1172/JCI160959

实验完整度

高

包含多队列临床样本的甲基化测序及验证、功能实验(足细胞、近曲小管细胞、巨噬细胞、内皮细胞)及机制验证(ChIP、甲基化抑制剂处理)。

主要模型

人类足细胞 人类近曲小管细胞 人类M1巨噬细胞 人类血管内皮细胞(包括原代主动脉内皮细胞)

重点核对

T1D患者白细胞DNA甲基化测序(发现队列n=39,验证队列n=296) 7个核心基因(MTOR、RPTOR、IRS2、COL1A2、TXNRD1、LCAT、SMPD3)的甲基化水平 高糖(15天)和5-氮杂-2'-脱氧胞苷(5adC,3天)处理 CTCF和Pol2B结合(ChIP-qPCR) MTOR Ser2448磷酸化水平

摘要

糖尿病肾病(DN)是一种多基因疾病,在大规模全基因组关联研究中,很少有风险变异显示出稳健的复制。为了理解DNA甲基化的作用,重要的是要有主流的基因组观点来区分影响基因表达的关键序列元件。这对DN尤其具有挑战性,因为全基因组甲基化模式的定义很不明确。虽然已知甲基化会改变基因表达,但这种因果关系的重要性被基于阵列的技术所掩盖,因为启动子区域之外的覆盖率很低。为了克服这些挑战,我们使用来自芬兰糖尿病肾病(FinnDiane)1型糖尿病(T1D)研究的参与者(n=39)的白细胞进行了甲基化测序,随后在更大的验证队列(n=296)中进行了复制。基因体相关区域占甲基化差异的60%以上,强调了甲基化测序的重要性。我们在来自丹麦(n=445)、香港(n=107)和泰国(n=130)的3个独立T1D登记处观察到与DN相关的差异甲基化基因。CTCF和Pol2B位点处DNA甲基化的减少与DN通路紧密相连,包括胰岛素信号传导、脂质代谢和纤维化。为了定义这些群体发现的病理生理学意义,在人肾细胞如足细胞和近端曲小管细胞中评估了甲基化指数。核心基因的表达与甲基化减少、CTCF和Pol2B结合升高以及高血糖细胞中胰岛素信号传导磷酸蛋白的激活相关。这些实验观察也与人巨噬细胞和血管内皮细胞中甲基化介导的调控密切平行。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
DNA甲基化是否与1型糖尿病肾病的发生发展相关,其潜在的机制是什么?
核心机制
基因体区域的DNA甲基化减少,尤其是CTCF和Pol2B结合位点,导致这些转录因子的结合增加,从而激活胰岛素信号传导、脂质代谢和纤维化相关通路的核心基因表达。
主要证据
多队列(芬兰、丹麦、香港、泰国)的甲基化测序和验证实验显示核心基因(MTOR、RPTOR、IRS2、COL1A2、TXNRD1、LCAT、SMPD3)甲基化降低;在人足细胞、近曲小管细胞、巨噬细胞和内皮细胞中,高糖和5adC处理导致这些基因甲基化降低、CTCF和Pol2B结合增加及mRNA表达升高。
研究意义
研究表明外周血DNA甲基化指数可能改善eGFR下降的预测,并可能作为糖尿病肾病进展的生物标志物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

发现队列的甲基化测序

鉴定T1D患者与健康对照之间以及不同DN阶段之间的差异甲基化区域(DMR)。

使用FinnDiane发现队列(25例T1D和14例对照)的白细胞DNA进行甲基化结合域富集测序。

2

核心基因的验证

在更大的独立队列中验证发现的核心基因的甲基化改变。

使用甲基化qPCR(methyl-qPCR)在FinnDiane验证队列(n=296)、丹麦PROFIL队列(n=445)、香港队列(n=107)和泰国队列(n=130)中检测7个核心基因的甲基化。

3

核心基因的体内功能验证

确定核心基因的甲基化调控在细胞模型中是否与高糖和甲基化抑制相关。

在人足细胞、近曲小管细胞、M1巨噬细胞和血管内皮细胞中,用高糖(HG)和/或5-氮杂-2'-脱氧胞苷(5adC)处理,检测核心基因的甲基化、mRNA表达和蛋白活性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基GIBCO11879-020
胎牛血清(FBS)----
青霉素/链霉素GIBCO15140122
胰岛素-转铁蛋白补充剂Life Technologies41400-045
PureGene, Gentra方法Gentra systems--
5-氮杂-2'-脱氧胞苷(5adC)----
甲基化qPCR检测----
染色质免疫沉淀定量PCR----
Odyssey红外成像----
抗体芯片----
佛波醇-12-肉豆蔻酸酯-13-乙酸酯(PMA)----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
甲基化测序
样本来源(白细胞DNA)、测序平台、数据分析方法(包括比对和差异甲基化分析)
阅读提示:Methods: Methyl-seq; Bioinformatic analysis for methyl-seq
甲基化验证
核心基因列表、甲基化qPCR方法、验证队列样本量和分组
阅读提示:Results: Reduced methylation is a genomic feature...; Methods: Core DDN gene detection by methyl-qPCR assay
细胞处理
细胞类型(足细胞、近曲小管细胞、巨噬细胞、内皮细胞)、葡萄糖浓度、5adC浓度和处理时间
阅读提示:Results: Clinically relevant hyperglycemia..., Figure 8 legend, Figure 9 legend, Methods: Human cell culture
机制验证
ChIP-qPCR抗体(CTCF、Pol2B)、标准化方法(IgG对照)、MTOR外显子检测方法
阅读提示:Results: Figure 8 legend, Figure 10 legend, Methods: Primers