肌肉来源的白介素6通过成骨细胞信号传导提高运动能力

Muscle-derived interleukin 6 increases exercise capacity by signaling in osteoblasts

作者信息Subrata Chowdhury, Logan Schulz, Biagio Palmisano, Parminder Singh, Julian M Berger, Vijay K Yadav, Paula Mera, Helga Ellingsgaard, Juan Hidalgo, Jens Brüning, Gerard Karsenty
PMID32078586
发布时间2020-06-01
DOI10.1172/JCI133572

实验完整度

包含多种遗传小鼠模型(肌源性IL-6敲除、成骨细胞IL-6R敲除)、细胞共培养实验、外源因子注射、人体训练干预及分子检测,多层次功能与机制验证。

主要模型

Il6Hsa–/–小鼠(肌源性IL-6缺失) Il6rOsb–/–小鼠(成骨细胞IL-6受体缺失) Ocn+/–Il6Hsa+/–和Ocn+/–Il6rOsb+/–复合杂合小鼠 人类肥胖非糖尿病受试者(12周训练干预)

重点核对

循环IL-6在运动后是否显著增加(Il6Hsa–/–小鼠无增加) 耐力奔跑时间或距离(Il6Hsa–/–和Il6rOsb–/–小鼠显著下降) 循环活性骨钙素水平在运动后是否上升(突变小鼠中不上升) 外源性IL-6或骨钙素注射能否纠正运动能力缺陷 肌纤维3H-2-DG摄取及Fatp1、Cpt1b表达是否减少

摘要

鉴于运动对健康的诸多益处,了解运动能力如何被调节是一个至关重要的问题。运动期间循环白细胞介素6(IL-6)水平激增,且IL-6有利于运动能力。然而,运动期间循环IL-6的细胞来源以及该细胞因子增强运动能力的机制尚未被正式确定。在这里,我们通过遗传手段显示,运动期间可检测到的循环IL-6大部分来源于肌肉,并且要增强运动能力,IL-6必须在成骨细胞中发出信号,以促进破骨细胞分化和具有生物活性的骨钙素释放到全身循环中。这解释了为什么仅在成骨细胞中缺乏IL-6受体的小鼠表现出的运动能力缺陷,其严重程度与缺乏肌肉来源IL-6(mIL-6)的小鼠相似,以及为什么这种缺陷可以被骨钙素纠正,但不能被IL-6纠正。此外,与IL-6通过骨钙素作用的观点一致,我们证明mIL-6在运动期间以依赖骨钙素的方式促进肌纤维对营养物质的摄取和分解代谢。最后,我们表明骨钙素和IL-6之间的串扰在啮齿动物和人类之间是保守的。这项研究提供了证据表明,肌肉-骨骼-肌肉内分泌轴对于提高啮齿动物和人类运动期间的肌肉功能是必需的。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
运动时循环IL-6的细胞来源是什么?mIL-6如何增强运动能力?
核心机制
肌肉来源IL-6信号作用于成骨细胞,促进破骨细胞分化和活性骨钙素释放,骨钙素再作用于肌纤维促进葡萄糖和脂肪酸摄取与分解,形成肌肉-骨骼-肌肉内分泌轴。
主要证据
遗传小鼠模型(Il6Hsa–/–、Il6rOsb–/–)显示运动能力下降,骨钙素可纠正缺陷而IL-6不可;细胞共培养显示IL-6在成骨细胞中促进破骨细胞生成;人体训练干预中抗IL-6R抗体消除运动诱导的骨钙素上升。
研究意义
揭示了骨骼作为运动能力调节因子的新视角,并为将骨钙素信号用于改善肌少症患者肌肉功能提供了理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

人体运动训练干预验证IL-6对骨钙素的调节

验证运动引起的循环骨钙素增加是否依赖IL-6信号

肥胖非糖尿病受试者接受12周耐力训练,部分受试者接受安慰剂或抗IL-6R抗体(托珠单抗),检测循环活性骨钙素水平。

2

建立肌肉特异性IL-6敲除小鼠模型并评估运动能力

确定肌肉对运动时循环IL-6的贡献以及mIL-6对运动能力的影响

通过Il6fl/fl与HSA-MerCreMer小鼠杂交,他莫昔芬诱导肌纤维特异性IL-6缺失,检测运动前后循环IL-6水平及耐力跑步表现。

3

遗传上位分析确定骨钙素介导mIL-6对运动能力的作用

验证骨钙素是否是mIL-6增强运动能力所必需的介质

分析Ocn+/–Il6Hsa+/–复合杂合小鼠的运动能力和循环骨钙素水平,并与单杂合和对照比较。

4

外源性IL-6和骨钙素注射实验

验证IL-6和骨钙素对运动能力缺陷的纠正作用及相互依赖

向Il6Hsa–/–、Il6rOsb–/–等小鼠腹腔注射IL-6或骨钙素,测定运动表现、循环IL-6和骨钙素水平。

5

成骨细胞/破骨细胞前体共培养实验

确定IL-6促进破骨细胞生成的作用靶细胞

将不同基因型成骨细胞与骨髓来源破骨细胞前体细胞共培养,添加IL-6和可溶性IL-6R,检测破骨细胞生成及标志基因表达。

6

成骨细胞特异性IL-6受体敲除小鼠模型评估

验证IL-6信号在成骨细胞中对运动能力的作用

通过Il6rfl/fl与Ocn-Cre小鼠杂交产生Il6rOsb–/–小鼠,检测运动能力、循环骨钙素及对IL-6和骨钙素注射的反应。

7

葡萄糖和脂肪酸摄取与分解代谢检测

探究mIL-6是否通过骨钙素影响肌纤维的营养物质利用

在运动后测定小鼠肌肉的3H-2-DG摄取、糖酵解和脂肪酸氧化相关基因表达及HSL磷酸化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证免疫效应
验证机制链路
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
跑步机----
他莫昔芬----
重组骨钙素----
白细胞介素6Sigma-AldrichI9646
抗IL-6抗体R&D SystemsMAB206
托珠单抗----
IL-6 ELISA试剂盒Abcamab178013, ab119549, ab100772, ab100712
CTX1 ELISAImmunodiagnostic SystemsAC-06F1
PiNP ELISAImmunodiagnostic SystemsAC-33F1
甘油三酯检测试剂盒Biovision Inc.K622-100
甘油检测试剂盒Sigma-AldrichMAK117
TRIzol试剂Invitrogen--
M-MLV逆转录酶Thermo Fisher Scientific28025013
随机六聚体Thermo Fisher ScientificN8080127
PowerUp SYBR Green预混液Applied Biosciences, Thermo Fisher Scientific--
CFX96 Touch实时荧光定量PCR检测系统Bio-Rad--
RIPA裂解液----
蛋白酶抑制剂混合物Thermo Fisher Scientific862209
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher Scientific23225
SDS上样缓冲液Boston BioProductsBP-110R
SDS电泳缓冲液Boston BioProductsBP-177
硝酸纤维素膜Bio-Rad1620112
牛血清白蛋白AppliChemA0830
磷酸化HSL抗体Cell Signaling Technology4137S
HSL抗体Cell Signaling Technology4107
GAPDH抗体Cell Signaling Technology5174S
辣根过氧化物酶标记二抗Santa Cruz BiotechnologySC-2004
ECL底物Bio-Rad170-5061
ImageQuant LAS-4000成像系统GE Healthcare28-9607-59AB
N0Q7抗体Sigma-AldrichM4276
MY32抗体Sigma-AldrichM8421
抗小鼠IgG-过氧化物酶二抗Sigma-AldrichA8924
Osteomeasure分析系统Osteometrics--
3H-2-脱氧葡萄糖----
AG 1-X8树脂Bio-Rad--
Ad5CMVEmpty腺病毒University of Iowa Viral Vector Core--
Ad5CMVCRE腺病毒University of Iowa Viral Vector Core--
多聚赖氨酸Sigma-Aldrich--
谷胱甘肽-琼脂糖4BGE17075601
凝血酶GE27-0846-01
苯甲脒-琼脂糖GE17-5123-10
胶原酶P----
前列腺素E2----
维生素D3----
可溶性IL-6受体----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
人体运动训练干预
受试者特征(肥胖非糖尿病)、运动方案(45分钟骑行,每周3次,持续12周)、药物处理(托珠单抗或安慰剂)、样本量(n=11-12)
阅读提示:Figure 1D 图注
小鼠耐力跑测试
小鼠月龄(3或6个月)、跑步机速度(30 cm/s)、力竭判定标准(从电网格掉落次数≥15次/分钟)、训练适应方案(4天,17分钟/天,速度递增10-30 cm/s,电击0.4 mA)
阅读提示:Methods: Exercise
肌源性IL-6敲除小鼠建立
Cre诱导方案(他莫昔芬10 mg/mL腹腔注射4天,随后含他莫昔芬饮食1 mg/20g体重2-4周)、基因型验证(PCR)
阅读提示:Results 第2节及Methods: Mouse studies
细胞共培养实验
成骨细胞来源(3-5天小鼠)、破骨前体细胞来源(4-10周小鼠骨髓)、IL-6浓度(10 ng/mL)、sIL-6R浓度(100 ng/mL)、培养时间(5-8天)、培养基添加物(10% Il6-/-小鼠血清、PGE2、维生素D3)
阅读提示:Methods: Osteoblast/osteoclast coculture
葡萄糖摄取实验
3H-2-DG注射剂量(10 μCi/只)、运动方案(跑步机30 cm/s,持续40分钟)、组织采样(红白股四头肌)、阴离子交换柱分离3H-2-DG-6-磷酸
阅读提示:Methods: In vivo glucose uptake