分析ARID1A突变肿瘤中的差异蛋白
鉴定与ARID1A缺陷相关的可能靶点
利用TCGA子宫内膜样癌RPPA数据比较ARID1A突变与野生型肿瘤的蛋白表达,发现Chk2水平升高。
Inhibition of the ATM/Chk2 axis promotes cGAS/STING signaling in ARID1A-deficient tumors
包含体外细胞实验、异种移植瘤、同基因小鼠模型、患者样本分析及TCGA数据挖掘,并有功能验证和机制验证。
HCT116细胞系(ARID1A-WT和KO) 卵巢癌细胞系(HOC8, FUOV1, OAW42, EF027) ID8小鼠卵巢癌同基因模型 TCGA患者数据集
ARID1A缺陷细胞中Chk2蛋白水平升高 ATM抑制剂KU-60019在ARID1A缺陷细胞中诱导复制应激和胞质DNA积累 ATM抑制剂联合抗PD-L1在ARID1A缺陷肿瘤中增强抗肿瘤效果 ARID1A突变与ATM/CHK2共突变与患者生存期关联
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定与ARID1A缺陷相关的可能靶点
利用TCGA子宫内膜样癌RPPA数据比较ARID1A突变与野生型肿瘤的蛋白表达,发现Chk2水平升高。
确认ARID1A缺失导致Chk2蛋白水平升高
在卵巢癌细胞系中敲降或敲除ARID1A,检测Chk2蛋白和mRNA水平;在ARID1A-null细胞中恢复表达后检测Chk2。
揭示ARID1A影响Chk2泛素化的分子机制
通过体内泛素化实验和免疫共沉淀,检测ARID1A缺失对Chk2泛素化和RNF8相互作用的影响。
检测抑制ATM/Chk2是否选择性抑制ARID1A缺陷细胞生长
使用Chk2抑制剂(II hydrate, PV1019)和ATM抑制剂(KU-60019)处理ARID1A-WT和KO细胞,进行克隆形成和3D培养。
探究ATM/Chk2抑制对复制应激的影响
通过DNA纤维实验检测复制叉的动态,通过DR-GFP实验检测同源重组修复效率。
验证ATM/Chk2抑制导致STING通路激活
使用PicoGreen染色检测胞质DNA,Western blot检测p-TBK1,qPCR和ELISA检测CCL5表达。
测试ATM抑制剂能否增强免疫检查点阻断在ARID1A缺陷肿瘤中的抗肿瘤活性
使用ID8同基因小鼠模型,给予抗PD-L1抗体和ATM抑制剂KU-60019,监测肿瘤生长和生存期。
验证ATM/Chk2轴与肿瘤免疫浸润和预后的关联
利用TCGA数据分析ARID1A/ATM/CHK2突变或表达与TIL和生存期的关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | McCoy's 5A培养基 | Cellgro | -- |
| RPMI 1640培养基 | Cellgro | -- | |
| DMEM培养基 | Cellgro | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 药物处理 | KU-60019 | Selleck Chemicals | S1570 |
| Chk2抑制剂II水合物 | MilliporeSigma | C3742 | |
| PV1019 | MilliporeSigma | 220488 | |
| 多西环素 | MilliporeSigma | -- | |
| MG132 | -- | -- | |
| 细胞培养 | 基质胶 | BD Falcon | -- |
| 免疫组化 | Vectastain Elite ABC-过氧化物酶试剂盒 | Vector Laboratories | PK-6200 |
| Opal四色手动IHC试剂盒 | PerkinElmer Health Sciences | NEL810001KT | |
| ELISA | 小鼠/大鼠CCL5/RANTES Quantikine ELISA试剂盒 | R&D Systems | MMR00 |
| 细胞染色 | PicoGreen双链DNA试剂 | Thermo Fisher Scientific | P7581 |
| DNA纤维实验 | CldU | -- | -- |
| IdU | -- | -- | |
| 抗体 | 抗Myc抗体 | Santa Cruz | sc-40 |
| 抗RNF8抗体 | Santa Cruz | sc-271462 | |
| 抗CD8抗体 | Santa Cruz | sc-7970 | |
| 抗FLAG抗体 | MilliporeSigma | F1804 | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | MilliporeSigma | A1978 | |
| 抗ARID1A抗体 | Bethyl Laboratories | A301-040A | |
| 抗Chk1抗体 | Cell Signaling Technology | 2360 | |
| 抗Chk2抗体 | Cell Signaling Technology | 2662 | |
| 抗磷酸化Chk2 (Thr68)抗体 | Cell Signaling Technology | 2661 | |
| 抗磷酸化Chk1 (S345)抗体 | Cell Signaling Technology | 2348 | |
| 抗CDC25A抗体 | Cell Signaling Technology | 3652 | |
| 抗小鼠ARID1A抗体 | Cell Signaling Technology | 12354 | |
| 抗PD-L1抗体(小鼠特异性) | Cell Signaling Technology | 64988 | |
| 抗磷酸化TBK1/NAK (Ser172)抗体 | Cell Signaling Technology | 5483 | |
| 抗TBK1/NAK抗体 | Cell Signaling Technology | 3013 | |
| 抗BrdU抗体 (ab6326) | Abcam | ab6326 | |
| 抗BrdU抗体 (347580) | BD Biosciences | 347580 | |
| 抗单链DNA抗体 | MilliporeSigma | MAB3299 | |
| 抗双链DNA抗体 | MilliporeSigma | MAB1293 | |
| 同型对照IgG | Bio X Cell | -- | |
| 抗PD-L1抗体 (BE0101) | Bio X Cell | BE0101 | |
| 免疫沉淀 | 蛋白G磁珠 | Cell Signaling Technology | -- |
| Ni-NTA树脂 | MilliporeSigma | -- | |
| RT-qPCR | PureLink RNA小提试剂盒 | Life Technologies | -- |
| 高容量RNA逆转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Power SYBR Green PCR预混液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Western blot | PVDF膜 | Bio-Rad | -- |
| RPPA | GeneTAC点样仪 | Genomic Solutions | -- |
| 体内成像 | Xenogen IVIS Spectrum成像系统 | Caliper Life Sciences | -- |
| 显微成像 | FV1000奥林巴斯激光共聚焦显微镜 | Olympus | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 验证Chk2表达 | ARID1A突变状态、细胞系类型、蛋白提取和检测方法 阅读提示:Methods: Cell culture, Immunoblotting |
| 泛素化分析 | 转染质粒、siRNA序列、泛素突变体、His-Ub、Ni-NTA沉淀 阅读提示:Methods: In vivo ubiquitination assay |
| 细胞活力测定 | 细胞密度、药物浓度、处理时间、克隆形成条件 阅读提示:Methods: Colony-forming assay and 3D culture |
| DNA纤维实验 | CldU和IdU浓度、标记时间、抑制剂浓度、细胞系 阅读提示:Methods: DNA fiber assay |
| 胞质DNA检测 | PicoGreen浓度、孵育时间、细胞固定和成像 阅读提示:Methods: PicoGreen staining and BrdU incorporation |
| 免疫信号检测 | 抗体稀释度、蛋白上样量、ELISA试剂盒和标准曲线 阅读提示:Methods: Immunoblotting, ELISA |
| 体内肿瘤模型 | 细胞数量、小鼠品系和性别、给药途径和剂量 阅读提示:Methods: In vivo mouse models |