蜂斗菜素有效抑制支持肿瘤生长和转移的线粒体复合物I代谢

Petasin potently inhibits mitochondrial complex I-based metabolism that supports tumor growth and metastasis

作者信息Kazuki Heishima, Nobuhiko Sugito, Tomoyoshi Soga, Masashi Nishikawa, Yuko Ito, Ryo Honda, Yuki Kuranaga, Hiroki Sakai, Ryo Ito, Takayuki Nakagawa, Hiroshi Ueda, Yukihiro Akao
PMID34623325
发布时间2021-09
DOI10.1172/JCI139933

实验完整度

包含体外细胞系筛选、功能验证(NDI1、Rho-0细胞)、代谢组学、蛋白质组学、多种体内模型(同系和异种移植)及转移模型。

主要模型

B16F10小鼠黑色素瘤细胞 A2058人黑色素瘤细胞 NB-1人神经母细胞瘤细胞 Jyg-MCB小鼠转移性乳腺癌细胞

重点核对

PT处理浓度:3 μM(体外) PT给药剂量:50 mg/kg,腹腔注射(体内) B16F10黑色素瘤原位模型(同系) A2058和NB-1异种移植模型 Jyg-MCB自发转移模型

摘要

线粒体电子传递链复合物I(ETCC1)是癌症代谢的核心,但能够安全抑制体内肿瘤生长和转移的强效ETCC1抑制剂有限。通过植物提取物筛选,我们鉴定出蜂斗菜素(PT)是一种高活性的ETCC1抑制剂,其化学结构不同于常规抑制剂。PT的活性比二甲双胍或苯乙双胍高至少1700倍,并对广泛的肿瘤类型诱导细胞毒性。PT给药在多种同系和异种移植小鼠模型中也诱导了显著的生长抑制。尽管其效力更高,但对非肿瘤细胞和正常器官无明显毒性。此外,PT处理在体外减弱了细胞运动和粘着斑,并在体内减弱了肺转移。代谢组和蛋白质组分析显示,PT严重耗竭天冬氨酸水平,破坏肿瘤相关的核苷酸合成和糖基化代谢,并下调与增殖和转移相关的主要癌蛋白。这些发现表明PT作为强效ETCC1抑制剂靶向肿瘤细胞代谢脆弱性的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PT能否通过抑制ETCC1来抑制肿瘤生长和转移,其机制是什么?
核心机制
PT通过抑制ETCC1导致NAD/NADH比降低,进而引起天冬氨酸耗竭、核苷酸合成和糖基化受损,最终下调与增殖和转移相关的癌蛋白(如c-Myc、EGFR、Akt)并诱导坏死性细胞死亡。
主要证据
PT在多种肿瘤细胞系中诱导细胞毒性,降低NAD/NADH比,耗尽天冬氨酸,下调癌蛋白,并在B16F10原位模型、A2058和NB-1异种移植模型及Jyg-MCB自发转移模型中抑制肿瘤生长和转移。
研究意义
PT作为强效ETCC1抑制剂,通过同时破坏支持肿瘤生长和转移的多种代谢途径,为治疗具有异质性分子背景的转移性肿瘤提供了一种新策略,并可作为开发新型低毒ETCC1抑制剂的先导化合物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定PT及其细胞毒性

从植物提取物中筛选并鉴定具有抗肿瘤增殖活性的化合物。

构建包含422种植物提取物的文库,用K562细胞筛选细胞毒性,通过HPLC分馏和细胞毒性筛选鉴定活性成分,最终确定PT为最丰富和有效的活性成分。

2

体外细胞毒性测定

评估PT对多种肿瘤和非肿瘤细胞系的细胞毒性作用。

用PT处理多种细胞系,测定细胞活力、细胞周期、形态变化、代谢改变(葡萄糖、乳酸、pH)、ATP/ADP比和细胞死亡方式。

3

线粒体复合物I抑制活性验证

验证PT对ETCC1的抑制活性,并比较其与二甲双胍和苯乙双胍的效力。

检测PT对线粒体各复合物活性的影响,测定ETCC1抑制的IC50,并通过NDI1过表达和Rho-0细胞验证ETCC1抑制是PT细胞毒性的机制。

4

代谢组学分析

揭示PT对肿瘤和正常细胞代谢的影响。

用PT处理B16F10和ASF 4-1细胞,进行代谢组学分析,鉴定显著改变的代谢物和通路。

5

转录组学分析

评估PT对肿瘤细胞转录组的影响,特别是ATF4信号通路。

用PT处理A2058细胞,进行cDNA微阵列分析,鉴定差异表达基因,并进行通路富集分析。

6

蛋白质组学和免疫印迹

分析PT对癌蛋白表达和糖基化的影响。

用PT处理多种细胞系,进行蛋白质组学分析和免疫印迹,检测癌蛋白、糖基化蛋白和信号通路(如AMPK/mTOR)。

7

体内抗肿瘤活性评估

评估PT在多种小鼠模型中的抗肿瘤效果和安全性。

在B16F10原位同系模型、A2058和NB-1异种移植模型、Jyg-MCB自发转移模型中给予PT(50 mg/kg,i.p.),监测肿瘤生长、转移灶、体重和正常器官毒性。

8

体外迁移和侵袭抑制实验

评估PT对肿瘤细胞迁移、侵袭和粘附的影响。

进行划痕愈合实验、Matrigel侵袭实验、细胞粘附实验和粘着斑分析,检测PT处理对细胞运动性和侵袭能力的影响。

9

体内转移抑制实验

评估PT对肺转移和淋巴结转移的抑制作用。

使用B16F10肺定植模型和Jyg-MCB自发转移模型,PT给药后计数肺转移灶和淋巴结重量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Wako--
胎牛血清Sigma-Aldrich--
EMEM培养基Wako--
RPMI1640培养基Wako--
乳腺上皮细胞基础培养基LonzaCC-3151
乳腺上皮细胞生长培养基试剂盒LonzaCC-3150
MEM非必需氨基酸溶液(100×)Wako139-15651
MEM必需氨基酸溶液(50×)Wako132-15641
L-天冬氨酸Sigma-AldrichA9256
葡萄糖Sigma-AldrichG8644
DC蛋白定量试剂盒Bio-Rad--
PVDF膜EMD MilliporeImmobilon-P
PVDF封闭试剂TOYOBO--
HRP标记抗小鼠IgGCell Signaling Technology--
HRP标记抗兔IgGCell Signaling Technology--
Luminata Forte Western HRP底物EMD Millipore--
抗β-肌动蛋白小鼠单克隆抗体Sigma-AldrichA5316
NucleoSpin miRNA提取试剂盒MACHEREY-NAGEL--
Agilent 2100生物分析仪Agilent--
PrimeScript逆转录试剂盒Takara--
Universal SYBR Select预混液Applied Biosystems--
Takara Thermal Cycler Dice实时荧光定量PCR系统IITakara--
Tissue-Tek伊红Sakura Finetek Japan8659
免疫活性抗原修复缓冲液Matsunami GlassIA6500, IA9500
ImmPRESS HRP马抗兔IgG聚合物检测试剂盒Vector LaboratoriesMP-7401
ImmPACT DAB底物Vector LaboratoriesSK-4105
显微镜BZ-X700KEYENCE--
抗p-FAKY397抗体Cell Signaling Technology8556
Alexa Fluor 488标记抗兔抗体Life Technologies--
Alexa Fluor 568标记鬼笔环肽Life Technologies--
DAPI----
Lab Vision PermaFluor封片剂Thermo Fisher Scientific--
共聚焦显微镜LSM-710Carl Zeiss--
ImageJNIH--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系和培养基的选择(DMEM, EMEM, RPMI1640等),血清浓度,细胞来源
阅读提示:Methods: Cell lines and culture
体外细胞毒性
PT浓度、处理时间、细胞活力测定方法
阅读提示:Figure 1 and Figure 2 legends
线粒体复合物I活性测定
PT浓度、线粒体来源、ETCC1活性测定方法
阅读提示:Figure 3 legend and Methods: Mitochondrial ETC activity assays
代谢组学分析
细胞系、PT浓度、处理时间、代谢物提取方法、分析平台
阅读提示:Figure 4 legend and Supplemental Methods
体内肿瘤模型
PT剂量、给药途径、给药频率、模型类型(B16F10, A2058, NB-1, Jyg-MCB)
阅读提示:Figure 8 legend and Methods: Animal experiments
转移模型
细胞系、PT剂量、给药途径、给药频率、转移评估方法
阅读提示:Figure 10 legend and Methods: Animal experiments
细胞迁移和侵袭
PT浓度、处理时间、实验方法(划痕愈合、侵袭、粘附)
阅读提示:Figure 9 legend and Methods: Scratch wound healing assay, Matrigel invasion assay, Cell attachment assay