评估AR信号对过敏性气道炎症的影响
确定AR信号是否减少Alt Ext诱导的气道炎症并改变Treg/Th2比率。
用Alt Ext或PBS鼻腔攻击B6-Foxp3EGFP雌性、雄性和ArTfm雄性小鼠,检测BAL中嗜酸性粒细胞、中性粒细胞和IL-13水平,并通过流式计数肺Treg和Th2细胞。
Androgen receptor signaling promotes Treg suppressive function during allergic airway inflammation
包含体外Treg抑制实验、转基因小鼠模型(ArTfm、Foxp3Cre)、体内过继转移、人原代细胞验证及GEO数据分析等多层级证据
B6-Foxp3EGFP小鼠(雄性、雌性、ArTfm) Foxp3GFP/YFPIl13TdTomato小鼠(雄性和雌性) DO11.10Foxp3EGFP小鼠(用于过继转移) 人原代支气管上皮细胞(HBE)和肺CD45+细胞
AR信号在Treg中的缺失(Arfl/0Foxp3Cre+)导致气道炎症加重 性激素状态:去势和DHT补充实验 IL-33和ST2表达调控:Gata2转录因子 人细胞中DHT处理(1 nM)对IL-33分泌和ST2表达的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定AR信号是否减少Alt Ext诱导的气道炎症并改变Treg/Th2比率。
用Alt Ext或PBS鼻腔攻击B6-Foxp3EGFP雌性、雄性和ArTfm雄性小鼠,检测BAL中嗜酸性粒细胞、中性粒细胞和IL-13水平,并通过流式计数肺Treg和Th2细胞。
比较雄性和雌性小鼠Treg的抑制能力,以及AR信号对Treg抑制功能的影响。
从B6-Foxp3EGFP雄性和雌性及ArTfm雄性小鼠脾脏分选Treg,与CellTrace Violet标记的CD4+ T效应细胞和辐照脾细胞共培养,在不同比例下检测T效应细胞增殖。
评估雄性和雌性来源的iTreg在体内对OVA诱导的气道炎症的抑制效果。
用OVA/明矾致敏BALB/c雌性小鼠,第20天过继转移来自雄性或雌性DO11.10Foxp3EGFP小鼠的iTreg,随后用雾化OVA攻击,检测肺中IL-13+ Th2细胞和BAL嗜酸性粒细胞。
确定Treg中AR信号对过敏性气道炎症和气道高反应性的作用。
使用Arfl/0Foxp3Cre+小鼠(Treg中AR缺失)和对照Arfl/0小鼠,进行Alt Ext攻击,检测肺细胞因子、BAL细胞和AHR。
评估雄性和雌性小鼠Treg在过敏性气道炎症中的稳定性,以及AR信号的影响。
使用Foxp3GFP/YFPIl13TdTomato小鼠(雌雄)进行Alt Ext攻击,通过流式检测当前Treg、ex-Treg、Th2细胞和IL-13+ ex-Treg数量;在去势和DHT处理实验中,检测上述细胞数量。
确定AR信号是否通过减少IL-33产生和ST2表达来稳定Treg。
检测小鼠肺中ST2+ Treg、ex-Treg、Th2细胞数量;测量BAL中IL-33蛋白水平(ELISA)和肺上皮/内皮细胞中IL-33表达(Il33EGFP报告小鼠)。
确定AR信号是否直接调节Treg中ST2和Gata2的表达。
从小鼠脾脏分选Treg,用IL-2、IL-33和DHT刺激,通过qPCR检测Gata2和Il1rl1表达。
验证AR信号对人类气道上皮细胞IL-33分泌和Treg ST2表达的影响。
使用hBE33细胞和原代HBE细胞,用DHT预孵育后Alt Ext刺激,检测IL-33分泌;取人肺CD45+细胞,用IL-33和DHT刺激,流式检测ST2表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | C57BL/6J小鼠 | The Jackson Laboratory | -- |
| BALB/c小鼠 | The Jackson Laboratory | -- | |
| B6-Foxp3EGFP小鼠 | The Jackson Laboratory | -- | |
| ArTfm小鼠 | The Jackson Laboratory | -- | |
| DO11.10小鼠 | The Jackson Laboratory | -- | |
| Foxp3GFP/YFPIl13TdTomato小鼠 | Talal Chatila and Andrew McKenzie | -- | |
| Il33EGFP小鼠 | Paul Bryce | -- | |
| 气道炎症模型 | 链格孢提取物 | Greer Laboratories | lot 338869 |
| 重组小鼠IL-33 | PeproTech | -- | |
| 激素处理 | 5α-二氢睾酮 | Sigma-Aldrich | -- |
| 睾酮 | -- | -- | |
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | 11875-093 |
| 胎牛血清 | Atlanta Biologics | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| HEPES | Gibco | -- | |
| β-巯基乙醇 | Sigma-Aldrich | -- | |
| IV型胶原酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| DNA酶I | Sigma-Aldrich | -- | |
| EDTA | -- | -- | |
| 流式细胞术 | Ghost染料UV450 | Tonbo Biosciences | -- |
| 抗小鼠FcR抗体 | BD Biosciences | -- | |
| 抗人CD3/CD28/CD2磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-045-801 | |
| LIVE/DEAD Fixable Aqua死细胞染料 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 荧光激活细胞分选 | -- | -- | |
| BD LSR II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- | |
| Cytek Aurora流式细胞仪 | Cytek Biosciences | -- | |
| FlowJo软件 | BD Biosciences | -- | |
| 细胞分选 | CD4+ T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-104-454 |
| CD4+CD62L+初始T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-106-643 | |
| 细胞增殖检测 | CellTrace Violet染料 | Thermo Fisher Scientific | C34571 |
| ELISA | Duoset ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- |
| Quantikine ELISA试剂盒 | R&D Systems | -- | |
| 定量PCR | RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | -- |
| SuperScript IV第一链合成系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| TaqMan引物 | Applied Biosystems | -- | |
| 原代细胞培养 | PneumaCult Ex-Plus培养基 | StemCell Technologies | -- |
| Transwell小室 | Costar | -- | |
| 细胞系培养 | BronchiaLife培养基 | Lifeline Cell Technology | -- |
| hBE33细胞 | -- | -- | |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
| 乙酰甲胆碱 | Sigma-Aldrich | -- | |
| DHT缓释片 | Innovative Research of America | 15 mg | |
| 安慰剂缓释片 | Innovative Research of America | -- | |
| 卵清蛋白 | -- | -- | |
| 氢氧化铝 | -- | -- | |
| 重组人IL-2 | NIH | -- | |
| 重组人TGF-β | PeproTech | -- | |
| 细胞刺激 | 离子霉素 | Sigma-Aldrich | -- |
| PMA | Sigma-Aldrich | -- | |
| GolgiStop | BD Biosciences | -- | |
| 抗CD3抗体 | BioLegend | 100340 | |
| 抗CD28抗体 | -- | -- | |
| 细胞培养 | 氢化可的松 | StemCell Technologies | -- |
| 二甲基亚砜 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 流式细胞术 | redFluor-抗CD45抗体 | -- | -- |
| Pacific blue-抗CD3抗体 | -- | -- | |
| FITC-抗CD4抗体 | -- | -- | |
| APC-Cy7-抗CD25抗体 | -- | -- | |
| APC-抗ST2抗体 | -- | -- | |
| PECF594-抗GATA3抗体 | -- | -- | |
| PE-Cy7-抗Foxp3抗体 | -- | -- | |
| 组织病理学 | H&E染色 | -- | -- |
| 三步染色试剂盒 | Richard-Allan Scientific, Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 福尔马林 | -- | -- | |
| 动物实验 | FlexiVent小动物肺功能仪 | Sci-Req | -- |
| 细胞分选 | 铯-137 γ射线 | -- | -- |
| 细胞培养 | 大鼠I型胶原 | -- | -- |
| 甲醇 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 过敏性气道炎症模型 | Alt Ext剂量(5.0-7.5 μg),攻击次数(4次,每3天一次),小鼠品系和性别 阅读提示:Methods: Mouse model of allergic airway inflammation; Figure 1A |
| Treg抑制实验 | Treg和效应细胞比例(0:1, 1:1, 1:2, 1:4, 1:8),刺激条件(anti-CD3 1 μg/mL),培养时间(4天) 阅读提示:Methods: Treg suppression assay; Figure 1, H–J |
| 过继转移实验 | 受体致敏(OVA/明矾,第0和7天),iTreg数量(1.5×10^6),攻击方案(1% OVA雾化,第21-23天),分析时间(第24天) 阅读提示:Methods: DO11.10 Foxp3EGFP iTreg adoptive transfer model; Figure 2A |
| Treg特异性AR缺失实验 | 小鼠基因型(Arfl/0Foxp3Cre+ 和对照Arfl/0),Alt Ext攻击方案,检测时间点(最后一次攻击后1天或2天) 阅读提示:Methods: Animals; Figure 2, F–L |
| Treg稳定性分析 | 命运追踪小鼠(Foxp3GFP/YFPIl13TdTomato),去势和DHT处理时间(3-4周去势,8周植入DHT片,11周攻击),流式定义细胞亚群 阅读提示:Methods: Gonadectomy and administration of DHT or vehicle pellets; Figure 3 and Figure 4 |
| IL-33和ST2检测 | rmIL-33剂量(300 ng),攻击时间点,BAL收集时间(1小时后),流式抗体克隆和浓度 阅读提示:Methods: Mouse model of allergic airway inflammation; Methods: BAL collection; Figure 6 and Figure 7 |
| 人类细胞验证 | DHT浓度(0.01-1 nM),刺激时间(24小时),Alt Ext浓度(30 μg/mL),HBE细胞分化条件,人肺CD45+细胞处理 阅读提示:Methods: hBE33 cells and Alt Ext exposure; Methods: Primary HBE cell culture and Alt Ext exposure; Methods: Human lung samples and flow cytometry; Figure 8 |