验证MC4R与纤毛标志物共定位
确认MC4R在神经元初级纤毛上的亚细胞定位
使用Mc4rGFP/gfp小鼠,通过免疫荧光染色检测MC4R-GFP与ADCY3在PVN神经元初级纤毛的共定位。
Melanocortin 4 receptor signals at the neuronal primary cilium to control food intake and body weight
包含遗传性纤毛敲除小鼠模型、成年诱导性敲除、AAV介导的PVN特异性敲除、化学遗传学、药理学实验及AC抑制等多层级验证,并检测了体重、体成分、食物摄入、能量消耗等表型。
Mc4rt2aCre/t2aCreIft88fl/fl小鼠 Ubc-Cre-Ert2Ift88fl/fl小鼠 Ift88fl/fl小鼠(AAV-CreGFP介导的PVN特异性敲除) Mc4rt2aCre/t2aCre小鼠(AAV-DIO-GPR88*介导的纤毛AC抑制)
在MC4R神经元中敲除Ift88是否导致肥胖 成年小鼠纤毛敲除后对MC4R激动剂MTII和THIQ的厌食反应是否减弱 PVN特异性敲除纤毛是否导致体重增加和MTII反应减弱 抑制纤毛AC活性是否导致过度进食和肥胖 纤毛敲除是否影响MC4R神经元数量和MC4R表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认MC4R在神经元初级纤毛上的亚细胞定位
使用Mc4rGFP/gfp小鼠,通过免疫荧光染色检测MC4R-GFP与ADCY3在PVN神经元初级纤毛的共定位。
确定MC4R神经元上的初级纤毛是否对能量稳态调节至关重要
通过CRISPR/Cas9生成Mc4rt2aCre/t2aCre小鼠,与Ift88fl/fl小鼠杂交,在MC4R神经元中条件敲除Ift88,导致纤毛缺失,并表型分析。
确认成年小鼠中初级纤毛对于MC4R激动剂介导的厌食效应是否必需
使用Ubc-Cre-Ert2Ift88fl/fl小鼠,他莫昔芬诱导纤毛敲除,然后icv注射MTII或THIQ,测定食物摄入。
确定下丘脑室旁核神经元上的纤毛是否特异性地调节体重和MC4R激动剂反应
通过向Ift88fl/fl小鼠PVN双侧注射AAV-CreGFP,特异性敲除PVN中的Ift88,检测体重和MTII诱导的厌食反应。
确定MC4R是否通过PVN神经元纤毛中的AC信号传导来控制进食和体重
向Mc4rt2aCre/t2aCre小鼠PVN注射AAV-DIO-GPR88*,在MC4R神经元纤毛中表达组成型活性的Gαi偶联受体GPR88*,抑制AC活性,测量体重、体成分、食物摄入和能量消耗。
确定纤毛AC抑制是否会减弱MC4R激动剂MTII的厌食效应
对表达GPR88*或对照的小鼠进行icv注射MTII,测量4小时食物摄入。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型生成 | Cas9蛋白 | -- | -- |
| sgRNA | -- | -- | |
| 动物处理 | 他莫昔芬 | MilliporeSigma | -- |
| 立体定位注射 | AAV DJ-CMV GFP-Cre | Stanford Neuroscience Viral Core | -- |
| AAV DJ-CMV GFP-ΔCre | Stanford Neuroscience Viral Core | -- | |
| AAV DIO-GPR88* | -- | -- | |
| AAV DIO-mCherry | Stanford Neuroscience Viral Core | -- | |
| 化学遗传学 | AAV DJ-hSyn-DIO-hM3Dgq-mCherry | Stanford Neuroscience Viral Core | AAV142 |
| 药物处理 | MTII | Genescript | -- |
| THIQ | Tocris Bioscience | -- | |
| 氯氮平-N-氧化物(CNO) | -- | -- | |
| 急性食物摄入研究 | 人工脑脊液 | -- | -- |
| 免疫荧光 | 鸡抗GFP抗体 | Abcam | ab13970 |
| 兔抗Adcy3抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-588 | |
| 小鼠抗Flag M2抗体 | MilliporeSigma | F1804 | |
| 兔抗p-S6核糖体蛋白抗体 | Invitrogen | 44-923-G | |
| 山羊抗鸡Alexa Fluor 488二抗 | Invitrogen | A11039 | |
| 山羊抗兔Alexa Fluor 633二抗 | Invitrogen | A21070 | |
| 山羊抗兔Alexa Fluor 555二抗 | Invitrogen | A21429 | |
| 山羊抗兔Alexa Fluor 488二抗 | Invitrogen | A11034 | |
| 山羊抗小鼠Alexa Fluor 555二抗 | Invitrogen | A21424 | |
| RNAScope | RNAScope荧光多重试剂盒V2 | Advanced Cell Diagnostics | 323100 |
| Cre-C2探针 | Advanced Cell Diagnostics | 312281-C2 | |
| Mc4r-C3探针 | Advanced Cell Diagnostics | 319181-C3 | |
| Opal 520荧光染料 | Akoya Biosciences | FP1487001KT | |
| Opal 570荧光染料 | Akoya Biosciences | FP148800KT | |
| 蛋白定量 | 兔抗IFT88抗体 | Proteintech | 13967-1-AP |
| 小鼠抗GAPDH抗体(6C5) | Santa Cruz Biotechnology | -- | |
| RNA定量 | Ift88 TaqMan探针 | Thermo Fisher Scientific | Mm01313467_m1 |
| Sim1 TaqMan探针 | Thermo Fisher Scientific | Mm00441391_m1 | |
| Mc4r TaqMan探针 | Thermo Fisher Scientific | Mm00457483_s1 | |
| Actb TaqMan探针 | Thermo Fisher Scientific | Mm00607939_s1 | |
| 成像 | Leica SP5共聚焦显微镜 | Leica | -- |
| Zeiss LSM 780共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| Nikon W1转盘共聚焦显微镜 | Nikon | -- | |
| Leica SP8共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| Fiji软件 | NIH | -- | |
| 手术 | KOPF Model 1900立体定位仪 | KOPF | -- |
| 引导插管(PlasticsOne,2.5 mm) | PlasticsOne | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | MC4R神经元特异性Ift88敲除小鼠的构建:Mc4rt2aCre等位基因的插入是否准确,Cre表达模式是否与内源MC4R一致 阅读提示:Methods: Generation of MC4Rt2aCre/t2aCre mice; Figure 2 legend |
| 他莫昔芬诱导的纤毛敲除 | 他莫昔芬给药剂量和方案:10 mg/40g体重,连续5天,i.p.给药;纤毛敲除效率验证(ADCY3染色) 阅读提示:Methods: Tamoxifen-induced recombination; Figure 3 legend |
| 立体定位注射 | AAV注射的坐标和体积:PVN(AP = -0.8, ML = ±0.2, DV = -5.5),侧脑室插管(AP = -0.3, ML = 1.0, DV = -2.5);AAV血清型(DJ)和滴定 阅读提示:Methods: Stereotaxic surgeries; Figure 5 legend |
| 急性食物摄入实验 | 禁食时间(24小时),i.c.v.注射剂量(MTII 0.5 nmol 或 0.05 nmol,THIQ 32 nM),食物摄入测量时间(4小时),crossover设计 阅读提示:Methods: Acute food intake studies; Figure 4 and 5 legends |
| 代谢监测 | EchoMRI和CLAMS测量参数及时间点,能量消耗计算(Lusk方程,ANCOVA校正体重) 阅读提示:Methods: Mouse metabolism studies; Figure 3 and 6 legends |