人类ITGAV变异与免疫失调、脑异常和结肠炎相关

Human ITGAV variants are associated with immune dysregulation, brain abnormalities, and colitis

作者信息Sina Ghasempour, Neil Warner, Rei Guan, Marco M Rodari, Danton Ivanochko, Ryder Whittaker Hawkins, Ashish Marwaha, Jan K Nowak, Yijing Liang, Daniel J Mulder, Lorraine Stallard, Michael Li, Daniel D Yu, Fred G Pluthero, Vritika Batura, Mo Zhao, Iram Siddiqui, Julia E M Upton, Jessie M Hulst, Walter H A Kahr, Roberto Mendoza-Londono, Fabienne Charbit-Henrion, Lies H Hoefsloot, Anis Khiat, Diana Moreira, Eunice Trindade, Maria do Céu Espinheira, Isabel Pinto Pais, Marjolein J A Weerts, Hannie Douben, Daniel Kotlarz, Scott B Snapper, Christoph Klein, James J Dowling, Jean-Philippe Julien, Marieke Joosten, Nadine Cerf-Bensussan, Spencer A Freeman, Marianna Parlato, Tjakko J van Ham, Aleixo M Muise
PMID39526957
期刊J Exp Med
发布时间2024-12
DOI10.1084/jem.20240546

实验完整度

研究包含患者样本、细胞模型和斑马鱼模型等多个独立证据层级,并进行功能验证和机制研究,如RNA-seq、免疫印迹、流式细胞术和免疫组化等。

主要模型

患者来源的成纤维细胞 患者来源的淋巴母细胞系 HeLa细胞 斑马鱼itgav−/−模型

重点核对

ITGAV变异位点及类型(c.432G>C、c.1136A>T、c.1564_1564+3delAGTA、c.2247-1G>A) 患者细胞中ITGAV mRNA和蛋白表达水平 TGF-β1刺激浓度(20 ng/ml)和刺激时间(15 min) 斑马鱼itgav敲除策略(CRISPR/Cas9)及其表型观察时间点 SMAD3表达和磷酸化水平检测

摘要

含有整合素αV亚基的整合素异二聚体对发育至关重要,并在细胞黏附和信号传导中发挥关键作用。我们在三个独立家系(两名患者和四个胎儿)中鉴定出编码整合素αV(ITGAV)基因的双等位变异,这些变异导致异常mRNA和功能性蛋白缺失,或导致整合素的错误定位。这导致了眼和脑异常、炎症性肠病、免疫失调及其他发育问题。机制上,功能性整合素αV的减少导致包括TGF-β依赖性信号和αVβ3调控的免疫信号在内的多条通路失调。这些效应通过患者来源细胞的免疫染色、RNA测序和功能研究得到证实。斑马鱼中itgav的基因缺失重现了患者表型,包括视网膜和脑缺陷、早期发育中小胶质细胞缺失,以及幼鱼斑马鱼的结肠炎,并伴有SMAD3表达和转录调控降低。总之,本研究鉴定的ITGAV变异导致了一种先前未知的人类疾病,其特点为完全功能缺失时出现脑和发育缺陷,以及不完全功能缺失时出现特应性、神经发育缺陷和结肠炎。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ITGAV基因变异是否导致人类疾病及其致病机制?
核心机制
ITGAV功能缺失导致TGF-β信号通路失调,包括SMAD3表达和磷酸化降低,影响细胞信号传导。
主要证据
患者来源细胞(成纤维细胞和淋巴母细胞系)中检测到ITGAV表达降低、TGF-β信号异常;斑马鱼itgav−/−模型重现脑部缺陷、视网膜血管异常和结肠炎,并伴有SMAD3减少。
研究意义
研究首次报道ITGAV变异导致人类疾病,为严重IBD、视网膜和神经发育疾病的机制和潜在治疗提供见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

鉴定ITGAV变异

确定患者中ITGAV基因的致病性变异

对三个家系进行全外显子测序,鉴定ITGAV双等位变异,并通过Sanger测序验证。

2

评估变异对ITGAV表达和定位的影响

验证变异是否导致ITGAV mRNA和蛋白表达改变或错定位

使用患者来源成纤维细胞和淋巴母细胞系,通过RT-qPCR、免疫印迹和流式细胞术检测ITGAV表达和表面定位;在HeLa细胞中表达野生型和变异ITGAV,观察其运输。

3

检测TGF-β信号通路

评估ITGAV变异对TGF-β信号的影响

对患者成纤维细胞和淋巴母细胞进行RNA测序分析表达谱;通过免疫印迹检测TGF-β1刺激前后的SMAD3和pSMAD3水平;对结肠活检进行SMAD3免疫组化。

4

建立斑马鱼itgav−/−模型

在体内验证ITGAV缺失的表型

使用CRISPR/Cas9敲除斑马鱼itgav基因,观察胚胎期脑出血、视网膜血管异常、小胶质细胞减少和幼鱼期结肠炎。

5

斑马鱼表型分析

评估itgav缺失对斑马鱼发育和肠道的影响

通过组织学、免疫荧光和RNA-seq分析斑马鱼脑部、血管和肠道病理变化,检测SMAD3表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Wisent--
胎牛血清Corning--
RPMI 1640培养基Wisent--
FuGene 6转染试剂Promega--
抗ITGAV抗体Abcamab179475
抗GAPDH抗体ABclonalAC027
抗pSMAD3抗体Cell Signaling9520
抗SMAD3抗体Cell Signaling9523
TGF-β1Peprotech100-21
RNeasy Plus Mini试剂盒QIAGEN--
Illumina链特异性总RNA制备试剂盒Illumina--
NovaSeq测序平台Illumina--
qScript mastermix----
ITGAV TaqMan引物Thermo Fisher ScientificHs00233808
抗Vinculin抗体Millipore SigmaMAB3574
抗FLAG抗体Millipore SigmaF3165
AF647标记小鼠抗人CD51抗体BD Pharmingen--
PE标记小鼠抗人CD61抗体eBioscience--
LIVE/DEAD可固定Aqua死细胞染色试剂盒Invitrogen--
抗SMAD3抗体Abcamab40854
CRISPR/Cas9 mRNA----
gRNA----
HisTrap HP亲和层析柱Cytiva--
Superose 6 10/300 GL凝胶过滤柱Cytiva--
生物素化TGF-β3肽GenScript--
链霉亲和素生物传感器Sartorius--
J-1500圆二色光谱仪Jasco--
抗villin1抗体Proteintech16488-1-AP
抗p-smad3抗体Cell Signaling9520
抗smad3抗体InvitrogenMA5-14939

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
ITGAV变异鉴定
全外显子测序数据、ITGAV变异的基因组坐标及dbSNP ID
阅读提示:见Results“Genetic and functional significance of ITGAV variants”部分及Table S2
细胞实验
细胞类型(成纤维细胞、淋巴母细胞系)、培养条件(培养基、血清浓度)、转染试剂和条件
阅读提示:见Materials and methods“Cell culture and transfection”部分
TGF-β信号检测
TGF-β1刺激浓度(20 ng/ml)和时间(15 min)、细胞融合度(75%)、裂解缓冲液成分
阅读提示:见Materials and methods“Western blotting”部分以及Figure 3图注
斑马鱼模型构建
CRISPR靶序列、注射剂量(Cas9 mRNA 150 pg,gRNA 100 pg)、斑马鱼品系(itgav+/−、Tg(flk1:EGFP))
阅读提示:见Materials and methods“Zebrafish care and transgenic lines”部分及Figure S2
斑马鱼表型分析
观察时间点(5-8 dpf、50 dpf)、染色方法(中性红、H&E、免疫荧光)、抗体浓度和肠道评分标准
阅读提示:见Materials and methods“H&E staining and immunofluorescence in zebrafish”部分及Figure 5图注