PB-mAb 筛选与细菌靶标鉴定
鉴定与RA相关自身抗原交叉反应的浆母细胞来源单克隆抗体是否靶向特定肠道细菌
从RA风险个体和早期RA患者外周血分离双IgA/IgG家族浆母细胞,构建单克隆抗体,通过流式细胞术筛选其与粪便细菌的结合,并通过16S rRNA测序鉴定靶标细菌。
Clonal IgA and IgG autoantibodies from individuals at risk for rheumatoid arthritis identify an arthritogenic strain of Subdoligranulum
体外抗体结合、T细胞激活实验,无菌小鼠定植模型,以及细胞耗竭和血清转移实验等多层级验证。
Germ-free DBA/1 mice SPF DBA/1j mice Human PBMCs Subdoligranulum isolates
无菌小鼠定植Subdoligranulum分离株7可诱导关节肿胀 B细胞和CD4+ T细胞耗竭消除小鼠关节肿胀 RA患者血清中检测到针对分离株7的IgA和IgG自身抗体 分离株7在RA风险个体和早期RA患者粪便中检出率为16.7%
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定与RA相关自身抗原交叉反应的浆母细胞来源单克隆抗体是否靶向特定肠道细菌
从RA风险个体和早期RA患者外周血分离双IgA/IgG家族浆母细胞,构建单克隆抗体,通过流式细胞术筛选其与粪便细菌的结合,并通过16S rRNA测序鉴定靶标细菌。
获得与PB-mAbs结合的肠道细菌纯培养物并鉴定其分类
从粪便中分离Subdoligranulum菌株,通过qPCR和16S rRNA测序验证纯培养,对分离株进行全基因组测序和物种鉴定。
检验Subdoligranulum分离株是否能被RA患者免疫系统识别
用分离株刺激RA患者和健康对照的PBMCs,检测CD4+ T细胞激活标志物;分析T细胞极化表型。
评估Subdoligranulum分离株在无菌小鼠中是否诱导关节炎
将分离株通过灌胃定植于无菌或SPF小鼠,监测临床关节评分、组织病理、免疫细胞和抗体应答。
确定诱导关节炎所需的免疫细胞和分子机制
用抗体耗竭B细胞、CD4+ T细胞或粒细胞,观察对关节肿胀的影响;进行血清转移实验验证致病性。
评估Subdoligranulum分离株7在RA风险人群中的存在
设计特异性qPCR检测人粪便中的分离株7,比较健康对照、RA风险和早期RA患者。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI培养基 | -- | -- |
| 流式分析 | Syto9Green 核酸染料 | -- | -- |
| Western blot | 抗IgG2A-PE抗体 | -- | -- |
| 抗体处理 | 抗DR抗体(克隆L243) | -- | -- |
| 肠道通透性测定 | 异硫氰酸荧光素标记的葡聚糖 | -- | -- |
| 细菌培养 | Prevotella copri DSMZ 18205 | DSMZ | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细菌定植 | 灌胃剂量:5×10^6 CFU 阅读提示:Materials and Methods 和 Figure 3 图注 |
| 免疫细胞耗竭 | 耗竭抗体类型和给药时间:B细胞、CD4+ T细胞或粒细胞耗竭,灌胃前2天 阅读提示:Materials and Methods 和 Figure 6 图注 |
| 血清转移 | 血清来源和注射方式:来自定植35天小鼠的血清,腹腔注射 阅读提示:Figure 6 图注和 Results 部分 |
| qPCR检测 | 检测限:10,000 CFU/100mg粪便 阅读提示:Figure 7 图注 |