通过接触结构域边界插入改变基因组折叠

Alteration of genome folding via contact domain boundary insertion

作者信息Di Zhang, Peng Huang, Malini Sharma, Cheryl A Keller, Belinda Giardine, Haoyue Zhang, Thomas G Gilgenast, Jennifer E Phillips-Cremins, Ross C Hardison, Gerd A Blobel
PMID32868908
期刊Nat Genet
发布时间2020-10
DOI10.1038/s41588-020-0680-8

实验完整度

高

包含体外细胞系模型、Hi-C等结构分析、CRISPR功能验证及进化分析等多层级实验。

主要模型

HAP1细胞系 小鼠G1E-ER4红细胞系

重点核对

插入片段来源:组织不变的2-kb边界DNA,含CTCF结合位点(CBS)和PARL基因TSS 插入位点:通过Sleeping Beauty转座子随机插入,得到16个位点,分布11条染色体 CTCF和TSS功能验证:通过CRISPR/Cas9删除CBS或TSS或两者,评估对结构域形成的影响 染色质构象检测:使用原位Hi-C和Capture-C,以20-kb分辨率分析接触结构域变化

摘要

动物染色体被划分为接触结构域。致病性的结构域破坏可能由染色体重排或结构因子扰动引起。然而,这种广泛的变化不足以定义结构域形成的最低要求。此外,结构域在多大程度上可以被工程化才刚刚开始探索。为了尝试创建接触结构域,我们将一个组织不变的边界相关的2-kb DNA序列——包含一个CTCF结合位点(CBS)和一个转录起始位点(TSS)——插入到11条染色体上的16个异位位点,并表征了其结构影响。取决于局部限制,该片段可变地形成新结构域、分割已有结构域、改变区室化,并启动反映染色质环挤出的接触。在插入序列中单独或组合删除CBS或TSS揭示了它们对基因组折叠的独特贡献。总之,短DNA插入可能足以塑造空间基因组,其方式受染色质环境影响。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
短DNA序列元件是否足以在基因组中形成新的接触结构域,以及CTCF结合位点和转录起始位点在其中分别发挥什么作用?
核心机制
CTCF结合位点通过与远端收敛的CBS形成相互作用来分隔边界,而转录起始位点通过转录延伸的方向性偏向驱动近端染色质折叠。
主要证据
将2-kb边界片段插入HAP1细胞多个位点,通过Hi-C观察到新接触结构域形成;CRISPR删除CBS或TSS揭示它们的不同贡献;进化分析显示SINE B2转座子插入与TSS密度相关。
研究意义
证明了短DNA插入可用于工程化三维基因组,并为理解序列和染色质环境如何共同影响基因组架构提供基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

边界DNA片段的选择与转座子介导的插入

验证2-kb边界相关DNA片段是否能在基因组多个位点产生新接触结构域

从K562和hESC共享的边界中选取包含CTCF结合位点和PARL基因TSS的2-kb片段,通过Sleeping Beauty转座子系统插入HAP1细胞,筛选出16个插入位点。

2

Hi-C检测插入对染色质结构的影响

检测插入事件是否形成新的接触结构域或改变已有结构域

对包含插入片段的克隆(C21和C25)及WT细胞进行原位Hi-C,分析接触图谱、绝缘分数、区室变化。

3

CRISPR介导的CBS和TSS功能剖析

确定插入片段中CBS和TSS各自对新结构域形成的作用

在形成新结构域的C21S4和C21S2位点,通过CRISPR/Cas9删除CBS或TSS或两者,结合Hi-C和Capture-C分析结构域变化。

4

转录和表观特征分析

评估插入对基因表达和表观修饰的影响

对插入克隆进行RNA-seq、H3K27ac、CTCF和RAD21 ChIP-seq,分析转录变化和染色质状态。

5

进化相关分析

探索转座子插入在进化中可能对新结构域的贡献

利用小鼠G1E-ER4细胞的CTCF ChIP-seq和Hi-C数据,分析SINE B2插入与边界形成的关系。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
IMDM培养基----
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
Hoechst 33342Thermo Fisher--
MACS缓冲液----
pSA-MCS-2kb质粒----
pCMV(CAT)T7-SB100质粒Addgene34879
pmaxGFP质粒Lonza--
Nucleofector L试剂盒Lonza--
PureLink基因组DNA小提试剂盒Thermo FisherK182001
NEBNext UltraNEB--
NEBNext多重寡核苷酸(Illumina)NEB--
NEBNext Q5热启动HiFi PCR预混液NEB--
Dynabeads MyOne链霉亲和素C1Thermo Fisher65001
SeqCap EZ杂交和洗涤试剂盒Roche NimbleGen05634261001
DpnII限制酶NEBR0543M
DNA聚合酶I大片段(Klenow)NEBM0210
T4 DNA连接酶NEB--
蛋白酶K----
核糖核酸酶----
QSonica Q800R3超声仪QSonica--
Agilent Bioanalyzer 2100Agilent Technologies--
KAPA文库定量试剂盒KAPA BiosystemsKK4835
Illumina NextSeq 500测序仪Illumina--
H3K27ac抗体Active Motif39685
CTCF抗体Millipore07-729
Rad21抗体abcamab992
蛋白酶抑制剂Sigma-AldrichP8340
蛋白A/G琼脂糖珠Thermo Fisher--
小鼠IgGSigmaI8140
兔IgGSigmaI8765
QIAquick PCR纯化试剂盒QIAGEN28106
TruSeq ChIP样品制备试剂盒IlluminaIP-202-1012
SPRIselect磁珠Beckman CoulterB23318
TRIzol试剂Thermo Fisher--
RNeasy小提试剂盒Qiagen--
ScriptSeqv2完整试剂盒IlluminaBHMR1224
TruSeq链特异性总RNAIllumina20020598
iScript逆转录预混液Bio-Rad--
Power SYBR GreenThermo Fisher--
pX330质粒Addgene42230
spCas9蛋白Synthego--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
HAP1细胞系,IMDM培养基,10% FBS,1%青霉素/链霉素,37°C,5% CO2
阅读提示:Methods - HAP1 cell culture and maintenance
转座子插入
使用Sleeping Beauty转座子系统,共转染pSA-MCS-2kb和pCMV(CAT)T7-SB100,电穿孔法,24小时后分选GFP阳性单细胞
阅读提示:Methods - Sleeping Beauty transposon genome editing
插入位点定位
使用生物素化寡核苷酸捕获,链霉亲和素磁珠富集,二代测序,PCR验证
阅读提示:Methods - Insertion site mapping and validation
Hi-C实验
约1千万HAP1细胞,2%甲醛交联10分钟,DpnII酶切,生物素标记,连接,DNA纯化,超声打断至200-300bp,链霉亲和素捕获,建库,双端测序2×75bp
阅读提示:Methods - In situ Hi-C
Capture-C实验
约1千万HAP1细胞,1%甲醛交联,DpnII酶切,连接,纯化,捕获寡核苷酸富集,测序
阅读提示:Methods - Capture-C
ChIP实验
约2千万HAP1细胞,1%甲醛交联,超声破碎,抗体:H3K27ac、CTCF、RAD21,免疫沉淀,DNA纯化,建库测序
阅读提示:Methods - ChIP
RNA-seq实验
HAP1细胞,TRIzol提取RNA,RNeasy纯化,建库(ScriptSeq v2或TruSeq Stranded Total RNA),双端测序
阅读提示:Methods - RNA-seq
CRISPR编辑
使用CRISPR/Cas9或RNP,靶向CBS或TSS,单细胞克隆筛选,基因型鉴定
阅读提示:Methods - CRISPR genome editing