边界DNA片段的选择与转座子介导的插入
验证2-kb边界相关DNA片段是否能在基因组多个位点产生新接触结构域
从K562和hESC共享的边界中选取包含CTCF结合位点和PARL基因TSS的2-kb片段,通过Sleeping Beauty转座子系统插入HAP1细胞,筛选出16个插入位点。
Alteration of genome folding via contact domain boundary insertion
包含体外细胞系模型、Hi-C等结构分析、CRISPR功能验证及进化分析等多层级实验。
HAP1细胞系 小鼠G1E-ER4红细胞系
插入片段来源:组织不变的2-kb边界DNA,含CTCF结合位点(CBS)和PARL基因TSS 插入位点:通过Sleeping Beauty转座子随机插入,得到16个位点,分布11条染色体 CTCF和TSS功能验证:通过CRISPR/Cas9删除CBS或TSS或两者,评估对结构域形成的影响 染色质构象检测:使用原位Hi-C和Capture-C,以20-kb分辨率分析接触结构域变化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证2-kb边界相关DNA片段是否能在基因组多个位点产生新接触结构域
从K562和hESC共享的边界中选取包含CTCF结合位点和PARL基因TSS的2-kb片段,通过Sleeping Beauty转座子系统插入HAP1细胞,筛选出16个插入位点。
检测插入事件是否形成新的接触结构域或改变已有结构域
对包含插入片段的克隆(C21和C25)及WT细胞进行原位Hi-C,分析接触图谱、绝缘分数、区室变化。
确定插入片段中CBS和TSS各自对新结构域形成的作用
在形成新结构域的C21S4和C21S2位点,通过CRISPR/Cas9删除CBS或TSS或两者,结合Hi-C和Capture-C分析结构域变化。
评估插入对基因表达和表观修饰的影响
对插入克隆进行RNA-seq、H3K27ac、CTCF和RAD21 ChIP-seq,分析转录变化和染色质状态。
探索转座子插入在进化中可能对新结构域的贡献
利用小鼠G1E-ER4细胞的CTCF ChIP-seq和Hi-C数据,分析SINE B2插入与边界形成的关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | IMDM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 细胞分选 | Hoechst 33342 | Thermo Fisher | -- |
| MACS缓冲液 | -- | -- | |
| 转座子编辑 | pSA-MCS-2kb质粒 | -- | -- |
| pCMV(CAT)T7-SB100质粒 | Addgene | 34879 | |
| pmaxGFP质粒 | Lonza | -- | |
| Nucleofector L试剂盒 | Lonza | -- | |
| 插入位点定位 | PureLink基因组DNA小提试剂盒 | Thermo Fisher | K182001 |
| NEBNext Ultra | NEB | -- | |
| NEBNext多重寡核苷酸(Illumina) | NEB | -- | |
| NEBNext Q5热启动HiFi PCR预混液 | NEB | -- | |
| Dynabeads MyOne链霉亲和素C1 | Thermo Fisher | 65001 | |
| SeqCap EZ杂交和洗涤试剂盒 | Roche NimbleGen | 05634261001 | |
| Hi-C | DpnII限制酶 | NEB | R0543M |
| DNA聚合酶I大片段(Klenow) | NEB | M0210 | |
| T4 DNA连接酶 | NEB | -- | |
| 蛋白酶K | -- | -- | |
| 核糖核酸酶 | -- | -- | |
| QSonica Q800R3超声仪 | QSonica | -- | |
| Agilent Bioanalyzer 2100 | Agilent Technologies | -- | |
| KAPA文库定量试剂盒 | KAPA Biosystems | KK4835 | |
| Illumina NextSeq 500测序仪 | Illumina | -- | |
| ChIP | H3K27ac抗体 | Active Motif | 39685 |
| CTCF抗体 | Millipore | 07-729 | |
| Rad21抗体 | abcam | ab992 | |
| 蛋白酶抑制剂 | Sigma-Aldrich | P8340 | |
| 蛋白A/G琼脂糖珠 | Thermo Fisher | -- | |
| 小鼠IgG | Sigma | I8140 | |
| 兔IgG | Sigma | I8765 | |
| QIAquick PCR纯化试剂盒 | QIAGEN | 28106 | |
| TruSeq ChIP样品制备试剂盒 | Illumina | IP-202-1012 | |
| SPRIselect磁珠 | Beckman Coulter | B23318 | |
| RNA-seq | TRIzol试剂 | Thermo Fisher | -- |
| RNeasy小提试剂盒 | Qiagen | -- | |
| ScriptSeqv2完整试剂盒 | Illumina | BHMR1224 | |
| TruSeq链特异性总RNA | Illumina | 20020598 | |
| RT-qPCR | iScript逆转录预混液 | Bio-Rad | -- |
| Power SYBR Green | Thermo Fisher | -- | |
| CRISPR编辑 | pX330质粒 | Addgene | 42230 |
| spCas9蛋白 | Synthego | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | HAP1细胞系,IMDM培养基,10% FBS,1%青霉素/链霉素,37°C,5% CO2 阅读提示:Methods - HAP1 cell culture and maintenance |
| 转座子插入 | 使用Sleeping Beauty转座子系统,共转染pSA-MCS-2kb和pCMV(CAT)T7-SB100,电穿孔法,24小时后分选GFP阳性单细胞 阅读提示:Methods - Sleeping Beauty transposon genome editing |
| 插入位点定位 | 使用生物素化寡核苷酸捕获,链霉亲和素磁珠富集,二代测序,PCR验证 阅读提示:Methods - Insertion site mapping and validation |
| Hi-C实验 | 约1千万HAP1细胞,2%甲醛交联10分钟,DpnII酶切,生物素标记,连接,DNA纯化,超声打断至200-300bp,链霉亲和素捕获,建库,双端测序2×75bp 阅读提示:Methods - In situ Hi-C |
| Capture-C实验 | 约1千万HAP1细胞,1%甲醛交联,DpnII酶切,连接,纯化,捕获寡核苷酸富集,测序 阅读提示:Methods - Capture-C |
| ChIP实验 | 约2千万HAP1细胞,1%甲醛交联,超声破碎,抗体:H3K27ac、CTCF、RAD21,免疫沉淀,DNA纯化,建库测序 阅读提示:Methods - ChIP |
| RNA-seq实验 | HAP1细胞,TRIzol提取RNA,RNeasy纯化,建库(ScriptSeq v2或TruSeq Stranded Total RNA),双端测序 阅读提示:Methods - RNA-seq |
| CRISPR编辑 | 使用CRISPR/Cas9或RNP,靶向CBS或TSS,单细胞克隆筛选,基因型鉴定 阅读提示:Methods - CRISPR genome editing |