IP3受体缺失在伴有釉质形成不全的自发性犬Charcot-Marie-Tooth病1J型模型中的研究

IP3 receptor depletion in a spontaneous canine model of Charcot-Marie-Tooth disease 1J with amelogenesis imperfecta

作者信息Marjo K Hytönen, Julius Rönkkö, Sruthi Hundi, Tarja S Jokinen, Emilia Suonto, Eeva Teräväinen, Jonas Donner, Rita La Rovere, Geert Bultynck, Emil Ylikallio, Henna Tyynismaa, Hannes Lohi
PMID39804930
发布时间2025-01-13
DOI10.1371/journal.pgen.1011328

实验完整度

包含遗传学定位(纯合定位、WES/WGS、Sanger验证)、临床表型(电生理、牙科检查)、蛋白表达(Western blot、RT-qPCR)及功能Ca2+成像等多层级验证。

主要模型

Lancashire Heeler犬(自发性ITPR3无义突变模型) 犬原代皮肤成纤维细胞

重点核对

ITPR3 p.Q1668X(c.5002C>T)纯合无义变异的致病性 IP3R3、IP3R1和IP3R2蛋白水平及mRNA表达变化 ATP诱导的IP3R介导Ca2+释放(峰值幅度和AUC) 细胞内Ca2+储存(离子霉素)和ER Ca2+储存(毒胡萝卜素) 神经传导速度(MNCV)和肌电图(EMG)变化

摘要

肌醇1,4,5-三磷酸受体(IP3R)介导细胞内储存的Ca2+释放,参与众多生理反应的复杂调控。三个IP3R基因(ITPR1、ITPR2和ITPR3)与人类遗传病的关系已开始揭示每种受体在不同人体组织和细胞类型中的重要作用。最近发现ITPR3基因(编码IP3R3)的变异可导致脱髓鞘性感觉运动型Charcot-Marie-Tooth病1J型(CMT1J)。除周围神经病变外,偶尔还可出现免疫缺陷和牙齿异常。本文报道了在Lancashire Heeler犬中发现ITPR3基因的纯合无义变异,该犬表现为严重的发育性釉质缺陷和神经传导速度降低。我们研究了患病犬的原代皮肤成纤维细胞,发现ITPR3的无义变异导致全长IP3R3蛋白完全缺失。出乎意料的是,IP3R1和IP3R2的蛋白水平也显著降低,提示存在协同调控。功能性Ca2+测量显示,患病犬成纤维细胞在G蛋白偶联受体刺激后,IP3R介导的Ca2+流减少。这些发现首次揭示了由ITPR3无义变异导致IP3R3缺失的自发性哺乳动物表型。人类和犬IP3R3蛋白高度相似,我们的研究表明该受体功能障碍所涉及的组织也是保守的。总之,IP3R3对釉质形成和周围神经维持至关重要。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ITPR3无义变异是否导致犬的自发性CMT1J表型,并影响IP3R3蛋白功能及Ca2+信号?
核心机制
ITPR3 p.Q1668X无义变异通过无义介导的mRNA降解导致IP3R3缺失,并连带降低IP3R1和IP3R2蛋白水平,损害IP3R介导的Ca2+释放,进而引起釉质发育缺陷和周围神经功能异常。
主要证据
Lancashire Heeler犬的临床表型(釉质缺陷和亚临床神经病变)与遗传学证据(纯合定位、WES/WGS、Sanger测序)关联;Western blot显示IP3R3完全缺失及IP3R1/2降低;功能Ca2+成像显示ATP诱导的Ca2+释放显著减少。
研究意义
该研究首次建立了人类CMT1J的自发性大动物模型,表明IP3R3对釉质形成和周围神经维持至关重要,并提示ITPR3变异与CRAC通道病相关。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床表型鉴定

描述患病犬的釉质缺陷和周围神经功能障碍。

对患病犬进行临床检查、血液生化、神经学检查和电生理检测(EMG、MNCV)。

2

遗传定位与变异筛选

通过纯合定位和测序鉴定候选因果变异。

利用Illumina Canine HD阵列对4例病例和6例对照进行纯合定位,对2例进行WES和1例进行WGS,过滤变异。

3

变异验证与群体频率分析

验证变异在犬群中的分离和人群频率。

对266只Lancashire Heeler犬进行PCR和Sanger测序,并在大规模商业检测样本中筛查频率。

4

蛋白表达分析

检测变异对IP3R3及其同源异构体蛋白和mRNA表达的影响。

提取患病犬和对照犬的原代皮肤成纤维细胞,进行Western blot和RT-qPCR。

5

功能Ca2+成像

评估ITPR3变异对IP3R介导Ca2+释放的影响。

使用Fura-2 AM和Cal-520 AM进行Ca2+成像,测量ATP、离子霉素和毒胡萝卜素刺激下的Ca2+信号。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证功能变化

产品清单

实验环节名称品牌货号
Illumina犬全基因组基因分型芯片Illumina--
杜尔贝科改良伊格尔培养基----
胎牛血清Life Technologies--
RIPA裂解缓冲液Cell Signaling9806
IP3R3抗体BD-Transduction610312
Vinculin抗体SigmaV9264-25UL
FURA-2 AM钙指示剂ThermoFisher--
Cal-520 AM钙指示剂Aat Bioquest--
离子霉素----
毒胡萝卜素----
NucleoSpin RNA提取试剂盒Macherey-Nagel740955
Maxima第一链cDNA合成试剂盒Thermo Fischer--
Cadwell电诊断仪Cadwell Industries, Inc.--
Qubit 3.0荧光计Thermo Fisher Scientific Inc.--
Chemagen提取机器人PerkinElmer Chemagen Technologie GmbH--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
成纤维细胞培养条件:DMEM、10%FBS、1%青霉素/链霉素、1%L-谷氨酰胺、0.2%尿苷,37°C、5%CO2
阅读提示:Methods: Cell lines and culture conditions
蛋白表达分析
Western blot条件:20 μg总蛋白,4-20% CriterionTGX胶,IP3R1、IP3R2、IP3R3和Vinculin抗体及浓度
阅读提示:Methods: Western blot
RT-qPCR
RNA提取和cDNA合成试剂盒,基因(ITPR1、ITPR2、ITPR3)及内参GAPDH引物,2-ΔΔCT方法
阅读提示:Methods: Real-time quantitative PCR
功能Ca2+成像(Fura-2)
Fura-2 AM浓度(1 μM),加载时间,Ca2+自由Krebs溶液(含3 mM EGTA),ATP浓度(80 μM)和离子霉素浓度(2 μM)
阅读提示:Methods: Functional Ca2+ imaging, 图4
功能Ca2+成像(FDSS)
Cal-520 AM浓度(1 μM),ATP、thapsigargin、ionomycin浓度
阅读提示:Methods: Functional Ca2+ imaging, S4 Fig