识别MECP2启动子差异甲基化区域并设计sgRNA
确定MECP2启动子中Xi特异性甲基化区域,设计靶向sgRNA以介导去甲基化。
比较女性与男性hESC的DNA甲基化数据,鉴定MECP2启动子中1.7-kb的DMR,设计10个sgRNA和4个Pyro-seq检测区域。
Multiplex epigenome editing of MECP2 to rescue Rett syndrome neurons
包含体外hESC模型、神经元分化模型,并通过功能验证(MEA、膜片钳)和机制验证(ChIP-seq、4C-seq)系统评估。
RTT样人胚胎干细胞系(#860) MECP2双色报告hESC系(29-R) 人胚胎干细胞来源的皮层神经元 小鼠星形胶质细胞共培养体系
靶向sgRNA-3对MECP2启动子去甲基化的效率 dCas9-Tet1和dCpf1-CTCF的脱靶效应 MECP2蛋白恢复水平 神经元胞体大小和电生理功能指标
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定MECP2启动子中Xi特异性甲基化区域,设计靶向sgRNA以介导去甲基化。
比较女性与男性hESC的DNA甲基化数据,鉴定MECP2启动子中1.7-kb的DMR,设计10个sgRNA和4个Pyro-seq检测区域。
测试dCas9-Tet1是否能有效去甲基化MECP2启动子并重新激活Xi上的MECP2。
通过慢病毒转导dCas9-Tet1和sgRNA至29-R hESCs,FACS分选阳性细胞,Pyro-seq检测甲基化,qPCR检测GFP表达。
评估dCas9-Tet1靶向MECP2是否导致非特异性甲基化或转录变化。
使用ChIP-seq、ChIP-bisulfite-seq、RNA-seq和全基因组亚硫酸盐测序分析编辑细胞的结合位点和转录组。
测试去甲基化编辑的RTT hESCs分化的神经元是否恢复MECP2表达并拯救RTT相关缺陷。
将编辑的RTT hESCs分化为神经元,通过Western blot、IF、MEA和膜片钳检测MECP2表达、胞体大小和电生理活性。
在分化的RTT神经元中直接重新激活MECP2,以评估治疗效果。
通过慢病毒转导dCas9-Tet1和sgRNA-3至29-R神经元和RTT神经元,检测MECP2重新激活和功能恢复。
确定MECP2位点特异性CTCF结合位点,并开发dCpf1-CTCF工具以增强重新激活。
通过CTCF ChIP-seq和4C-seq比较mock和编辑的RTT神经元,识别两个CTCF锚定位点;构建dCpf1-CTCF表达载体。
确认dCpf1-CTCF能否特异性地结合目标位点而不引起转录组变化。
通过anti-Cpf1 ChIP-seq和anti-CTCF ChIP-seq识别结合位点,RNA-seq分析基因表达变化。
测试dCas9-Tet1和dCpf1-CTCF联合使用是否能增强MECP2重新激活并改善功能恢复。
共转导dCas9-Tet1/sgRNA-3和dCpf1-CTCF/crRNA至RTT神经元,检测MECP2表达、启动子甲基化、MeCP2蛋白水平、胞体大小和电生理活性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | mTeSR1 | StemCell Technologies | -- |
| 基质胶 | Corning | -- | |
| 神经元分化 | 神经基础培养基 | Gibco | -- |
| B27补充剂 | Gibco | -- | |
| N2补充剂 | Gibco | -- | |
| GlutaMAX | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 细胞培养 | Accutase | Millipore | -- |
| 慢病毒包装 | 脂质体转染试剂2000 | Invitrogen | -- |
| Opti-MEM | Gibco | -- | |
| 流式分选 | 流式分选缓冲液 | -- | -- |
| 分子克隆 | QIAquick PCR纯化试剂盒 | Qiagen | -- |
| NEBuilder HiFi DNA组装预混液 | New England Biolabs | -- | |
| PiggyBac转座酶 | -- | -- | |
| 基因表达分析 | TRIzol | Invitrogen | -- |
| SYBR Green PCR预混液 | Applied Biosystems | -- | |
| 高容量cDNA逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | -- | |
| 蛋白质分析 | RIPA裂解液 | Thermo Scientific | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- | |
| BCA蛋白测定试剂盒 | Pierce | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 免疫荧光 | DAPI | Invitrogen | 28718-90-3 |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | 9002-93-1 | |
| 电生理 | 硼硅酸盐玻璃电极 | Sutter Instrument | -- |
| Digidata 1550A | Molecular Devices | -- | |
| 多电极阵列系统 | Axion Biosystems | -- | |
| 测序 | NEBNext Ultra II DNA文库制备试剂盒 | New England Biolabs | -- |
| Agencourt AMPure XP磁珠 | Beckman Coulter | -- | |
| NextSeq 500/550高输出试剂盒 | Illumina | -- | |
| 抗体 | 抗MeCP2抗体 | Cell Signaling Technology | -- |
| 抗MAP2抗体 | Abcam | -- | |
| 抗Tuj1抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗GFP抗体 | Abcam | -- | |
| 抗Cas9抗体 | Diagenode | -- | |
| 抗Cpf1抗体 | BioLegend | -- | |
| 抗CTCF抗体 | Millipore | -- | |
| 免疫沉淀 | Dynabeads Protein G | Invitrogen | -- |
| Dynabeads Protein A | Invitrogen | -- | |
| 药物处理 | 多西环素 | Sigma-Aldrich | 24390-14-5 |
| 5-氮杂胞苷 | Sigma-Aldrich | 320-67-2 | |
| 地西他滨 | Sigma-Aldrich | 2353-33-5 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| hESC培养和基因编辑 | hESC细胞系(29-R、29-G、#860)来源和培养条件;Dox诱导浓度和时间;慢病毒转导效率和MOI 阅读提示:Materials and Methods - Study design; Cell culture and editing |
| 甲基化编辑 | dCas9-Tet1和sgRNA-3的载体和序列;BFP和mCherry报告基因;FACS分选标准;Pyro-seq引物 阅读提示:Materials and Methods - DNA methylation editing; Figure legends for Fig. 1 |
| 脱靶分析 | ChIP-seq、ChIP-bisulfite-seq、RNA-seq和WGBS的比对参数和统计阈值;生物重复数(3个) 阅读提示:Materials and Methods - Off-target analysis; Fig. 2 |
| 神经元分化 | 分化方案(如小分子抑制和生长因子);培养时间(8周);星形胶质细胞共培养条件 阅读提示:Materials and Methods - Neuronal differentiation; Fig. 3D legend |
| 电生理记录 | MEA板和记录条件;膜片钳溶液成分;mEPSC记录参数和阈值;样本量(>20个神经元) 阅读提示:Materials and Methods - Electrophysiology; Fig. 3F, L-N legends |
| CTCF绝缘编辑 | dCpf1-CTCF载体和crRNA序列;dox诱导时间;组合编辑顺序和时间窗口 阅读提示:Materials and Methods - Multiplex editing; Fig. 5B |