验证THAP1抗体特异性和亚细胞定位
确认所用THAP1抗体的特异性,并观察野生型及突变型THAP1蛋白的亚细胞分布。
使用HEK细胞瞬时过表达THAP1(野生型或突变体),通过Western blot检测THAP1条带,并用质谱分析鉴定特异性条带;随后分离细胞质和核组分,检测THAP1分布。
Unraveling Molecular Mechanisms of THAP1 Missense Mutations in DYT6 Dystonia
包含细胞模型、患者成纤维细胞、转录组、ChIP-seq、蛋白稳定性实验等多个层次,但缺乏动物模型或体内功能验证。
SK-N-AS人神经母细胞瘤细胞系(稳定转染THAP1野生型或突变体) HEK-293细胞系(瞬时转染THAP1) DYT6患者皮肤成纤维细胞
SK-N-AS细胞系(human neuroblastoma) THAP1突变类型:S21T、C54Y、F81L、L180S、Q154fs180X 稳定转染筛选浓度:G418 250 μg/ml 蛋白稳定性实验:doxycycline诱导Tet-on系统,诱导浓度1 μg/ml,检测时间点0、24、48、72小时 患者和对照成纤维细胞:各3例
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认所用THAP1抗体的特异性,并观察野生型及突变型THAP1蛋白的亚细胞分布。
使用HEK细胞瞬时过表达THAP1(野生型或突变体),通过Western blot检测THAP1条带,并用质谱分析鉴定特异性条带;随后分离细胞质和核组分,检测THAP1分布。
比较野生型与突变型THAP1过表达细胞系的基因表达差异,寻找共同失调基因。
使用稳定转染SK-N-AS细胞系(空载体、THAP1野生型、S21T和F81L突变型),提取RNA进行微阵列分析,并利用IPA进行功能网络分析。
独立验证微阵列数据中部分基因的表达变化。
从各细胞系提取总RNA,进行逆转录和qPCR,检测10个与神经功能相关的基因表达。
确定THAP1是否直接结合并调控SOD2表达。
进行ChIP-seq(flag标记THAP1)检测THAP1在基因组上的结合位点;通过荧光素酶报告基因实验验证THAP1对SOD2启动子活性的影响;并在患者成纤维细胞中检测SOD2蛋白表达。
检测不同THAP1突变蛋白的降解速率,判断是否影响蛋白稳定性。
建立SK-N-AS Tet-on细胞系,诱导表达相同水平的野生型或突变型THAP1,去除doxycycline后在不同时间点收获细胞,通过Western blot检测THAP1蛋白水平变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与转染 | Effectene转染试剂 | QIAGEN | -- |
| 遗传霉素(G418) | -- | -- | |
| 蛋白质提取与Western blot | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| 核提取试剂盒 | Sigma | -- | |
| BCA蛋白定量试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| SDS-PAGE凝胶 | Bio-Rad | -- | |
| Odyssey® Fc双模式成像系统 | LI-COR | -- | |
| RNA提取与微阵列分析 | RNeasy迷你试剂盒 | QIAGEN | -- |
| 安捷伦生物分析仪2100 | Agilent | -- | |
| 基因芯片HT 3' IVT快速试剂盒 | Affymetrix | -- | |
| Affymetrix U219基因芯片阵列板 | Affymetrix | -- | |
| Gene Titan仪器 | Affymetrix | -- | |
| RNA提取与qPCR | NanoDrop 1000分光光度计 | Thermo Scientific | -- |
| Omniscript逆转录试剂盒 | QIAGEN | -- | |
| QuantiTect SYBR® Green PCR试剂盒 | QIAGEN | -- | |
| ChIP-seq | Dynabeads™ M-280绵羊抗兔IgG磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| NEBNext® Ultra™ II DNA文库制备试剂盒 | New England Biolabs | -- | |
| 荧光素酶报告基因实验 | pGL3.0报告基因质粒 | Promega | -- |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- | |
| Mithras发光检测仪 | Berthold Technologies | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与转染 | 细胞系:HEK-293和SK-N-AS;培养基:DMEM、10% FBS、1% Glutmax;转染试剂:Effectene(QIAGEN);稳定筛选浓度:G418 250 μg/ml;培养条件:37°C、5% CO2。 阅读提示:Materials and Methods - Cell Culture and Transfection |
| 转录组分析 | 每个细胞系构建3个独立克隆;空载体作为对照;微阵列芯片:Affymetrix U219;差异表达阈值:|Log2|>0.8,p<0.005(Benjamini-Hochberg校正)。 阅读提示:Materials and Methods - RNA Isolation and Microarray Analysis; Results - Transcriptome Analysis |
| qPCR验证 | 总RNA提取:RNeasy Mini Kit;逆转录:Omniscript RT Kit(500 ng RNA);参考基因:GAPDH和Actin;统计:Student's t test。 阅读提示:Materials and Methods - Total RNA Extraction and Reverse Transcription and Quantitative Real-Time PCR; Results - Microarray Data Confirmation |
| ChIP-seq | 使用SK-N-AS细胞稳定过表达THAP1-flag;交联:1%甲醛;抗体:anti-flag(Cell Signaling);对照:anti-rabbit IgG;测序:Illumina NextSeq500;分析:MACS峰值检测。 阅读提示:Materials and Methods - Chromatin Immunoprecipitation and High-Throughput Sequencing (ChIP-Seq) |
| 荧光素酶报告基因实验 | SOD2启动子区域:Pro2(NM_001322819.2和NM_001322820.2);报告基因载体:pGL3.0;检测系统:Dual Luciferase Reporter Assay;测量时间:48小时;至少三次独立重复。 阅读提示:Materials and Methods - Luciferase Reporter Gene Assay |
| 蛋白稳定性实验 | SK-N-AS Tet-on细胞系;诱导:doxycycline 1 μg/ml,24小时;去除诱导后0、24、48、72小时收获;Western blot检测。 阅读提示:Materials and Methods - Assessment of Protein Stability |