体外ULIUS对α-syn PFF诱导神经元聚集的抑制
验证ULIUS通过调节星形胶质细胞能否抑制α-syn PFF诱导的神经元α-syn聚集。
原代皮质神经元-胶质共培养,经α-syn PFF(1 μg/mL)处理14天,期间进行ULIUS(3次/天,隔天,共3轮),检测pS129-α-syn免疫荧光和Triton X-100不溶性α-syn聚集。
Ultrasonic repression of TRPA1-dependent astrocyte reactivity confers neuroprotection in models of Lewy body dementia
包含体外细胞实验(原代星形胶质细胞、神经元-胶质共培养)、体内动物模型(α-syn A53T转基因小鼠海马PFF注射)、行为学测试(Barnes迷宫、Y迷宫)、分子生物学检测(RT-qPCR、Western blot、免疫组化)及钙成像,涵盖功能验证和机制验证。
原代皮质星形胶质细胞 原代皮质神经元-胶质共培养 α-syn A53T转基因小鼠海马α-syn PFF注射模型
ULIUS参数:0.2 W/cm²,1 MHz(体内),6 MHz(体外),0.11 MPa负压,1.5 kHz PRF α-syn PFF浓度:体外5 μg/mL,体内5 μg/μL(每点2 μL) ULIUS方案:体外每2天3次,共3轮;体内每3天1次,共10次 TRPA1拮抗剂HC030031浓度:10 μM(RT-qPCR)或40 μM(钙成像) 动物模型:2月龄α-syn A53T转基因小鼠,海马双侧注射,1个月后分析
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证ULIUS通过调节星形胶质细胞能否抑制α-syn PFF诱导的神经元α-syn聚集。
原代皮质神经元-胶质共培养,经α-syn PFF(1 μg/mL)处理14天,期间进行ULIUS(3次/天,隔天,共3轮),检测pS129-α-syn免疫荧光和Triton X-100不溶性α-syn聚集。
评估ULIUS对α-syn PFF或炎性小胶质条件培养基诱导的星形胶质细胞炎症因子表达的影响。
原代星形胶质细胞经α-syn PFF(5 μg/mL)或BV2细胞条件培养基处理,进行ULIUS,RT-qPCR检测Tnfα、Il-1β、Tlr2等表达。
探究ULIUS是否通过抑制TRPA1介导的钙内流和基因表达来调节星形胶质细胞反应性。
星形胶质细胞经α-syn PFF处理,进行ULIUS或TRPA1抑制剂HC030031处理,测量钙成像(Fluo4-AM)和Trpa1、Tlr2等mRNA表达。
验证经颅ULIUS对α-syn PFF诱导的LBD小鼠模型认知功能、α-syn病理和神经炎症的改善效果。
α-syn A53T转基因小鼠海马注射α-syn PFF(5 μg/μL,每点2 μL),3天后开始经颅ULIUS(1 MHz,0.2 W/cm²,每3天1次,共10次),1个月后进行Barnes迷宫、Y迷宫测试,免疫组化检测pS129-α-syn、GFAP、Iba-1,Western blot检测TRPA1、TLR2等。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 体外超声刺激 | 超声盖玻片 | -- | -- |
| 细胞培养 | Neurobasal A培养基 | Thermo Fisher Scientific | 10888022 |
| B27补充剂 | Thermo Fisher Scientific | 17504044 | |
| GlutaMax补充剂 | Thermo Fisher Scientific | 35050061 | |
| DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | 11995073 | |
| 胎牛血清 | Thermo Fisher Scientific | 26140079 | |
| 青霉素/链霉素 | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Thermo Fisher Scientific | 25300062 | |
| 钙成像 | Fluo4-AM钙离子指示剂 | Thermo Fisher Scientific | F14201 |
| 蛋白质印迹 | Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23227 |
| 免疫染色 | 正常山羊血清 | Thermo Fisher Scientific | 01-6201 |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | X100 | |
| DPX封片剂 | Sigma-Aldrich | 06522 | |
| Western blot | 抗α-syn抗体 | BD Biosciences | 610787 |
| 抗TLR2抗体 | Abcam | ab209216 | |
| 抗TRPA1抗体 | Novus Biologicals | NB110-40763 | |
| 免疫组织化学 | 抗磷酸化S129 α-syn抗体 | Abcam | ab51253 |
| 抗Iba-1抗体 | Wako | 019-19741 | |
| 抗GFAP抗体 | Cell Signaling Technology | 3670 | |
| 抗酪氨酸羟化酶抗体 | Novus Biologicals | NB300-109 | |
| 免疫荧光 | 抗MAP2抗体 | Sigma-Aldrich | M4403 |
| RT-qPCR | QIAzol裂解试剂 | QIAGEN | 79306 |
| iScript cDNA合成试剂盒 | BIO-RAD | BR1708891 | |
| SYBR Green PCR预混液 | Applied Biosystems | 4309155 | |
| 动物实验 | α-syn A53T转基因小鼠 | Jackson Laboratory | 012442 |
| CamkIIα-tTA小鼠 | Jackson Laboratory | 024854 | |
| 行为学测试 | SMART V3.0软件 | Panlab | 76-0681 |
| 转棒仪 | Panlab | 76-0770 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体外超声刺激 | ULIUS参数:6 MHz,0.11 MPa,0.2 W/cm²,1.5 kHz PRF;处理方案:3次/天,隔天,共3轮 阅读提示:Materials and methods, In vitro ultrasound stimulation |
| 原代星形胶质细胞培养 | 小鼠年龄(P0-P2),0.25%胰蛋白酶消化30分钟,培养至DIV7-8 阅读提示:Materials and methods, Primary astrocyte culture |
| α-syn PFF处理 | α-syn PFF浓度(体外5 μg/mL,体内5 μg/μL,每点2 μL),处理时间 阅读提示:Materials and methods, Cell conditioned media preparation and treatment; 动物实验 |
| 钙成像 | Fluo4-AM浓度(1 μM),HC030031浓度(40 μM),记录时间点 阅读提示:Materials and methods, Ca2+ imaging and ultrasound stimulation; Results, Fig. 3 |
| 动物模型 | 小鼠品系(α-syn A53T转基因),年龄(2月龄),注射坐标(AP: 2.0, ML: 1.3, DV: -2 mm),注射体积(2 μL),恢复时间(3天) 阅读提示:Materials and methods, Mouse brain stereotaxic injection and ultrasonic stimulation |
| 体内超声刺激 | ULIUS参数:1 MHz,0.11 MPa,0.2 W/cm²,1.5 kHz PRF,50%占空比;方案:每3天1次,共10次 阅读提示:Materials and methods, Mouse brain stereotaxic injection and ultrasonic stimulation; Results, Fig. 4 |
| 行为学测试 | Barnes迷宫试验次数和时间点(Test #1, #2相隔1天,#3和#4分别在#2后3天和8天);Y迷宫交替百分比计算 阅读提示:Materials and methods, Behavioral tests; Results, Fig. 4e和S5b |