建立模拟微重力动物模型并评估脑功能
确定长期后肢卸载SMG是否诱导大鼠行为异常和认知缺陷。
雄性SD大鼠随机分为NG组(水平尾部悬吊4周)和SMG组(后肢卸载4周),随后进行旷场、高架十字迷宫、Y迷宫行为学测试,并检测海马炎症因子表达、突触蛋白水平和突触超微结构。
Simulated microgravity induces cerebral dysfunction by disturbing protective microbiota-metabolite-microglia signaling across the gut‒brain ax is
包含体内动物模型(后肢卸载SMG、FMT、LA干预)、体外细胞实验(BV2微重力、分子互作)、多组学(16S、代谢组、转录组)及行为学、电生理等多层级验证。
SD大鼠后肢卸载模拟微重力模型 粪便微生物群移植(FMT)受体大鼠 BV2小胶质细胞系 铜绿假单胞菌与大肠杆菌共培养体系
SMG模型采用28天后肢卸载,对照组为水平尾部悬吊 FMT实验:供体粪便悬液以500 μL/天灌胃,持续14天 LA干预:大鼠饲料含10%(w/w)红花籽油,持续58天 BV2细胞SMG处理4天,LA于第3天以50或100 μM加入 STAT1抑制剂氟达拉滨浓度为50 μM
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定长期后肢卸载SMG是否诱导大鼠行为异常和认知缺陷。
雄性SD大鼠随机分为NG组(水平尾部悬吊4周)和SMG组(后肢卸载4周),随后进行旷场、高架十字迷宫、Y迷宫行为学测试,并检测海马炎症因子表达、突触蛋白水平和突触超微结构。
评估SMG对肠道屏障完整性和肠道微生物群落结构的影响。
收集结肠组织和粪便样本,进行H&E染色、紧密连接蛋白免疫荧光检测、qRT-PCR炎症因子分析,以及16S rRNA基因V3-V4区测序分析菌群多样性和组成。
验证SMG相关的肠道菌群失调是否足以在正常重力受体中诱导脑功能障碍。
将NG或SMG供体大鼠的粪便悬液经口灌胃给予经抗生素清除菌群的受体大鼠,持续14天,随后进行行为学测试、海马炎症和突触蛋白检测、16S测序及结肠病理分析。
鉴定与SMG相关的肠道菌群代谢物变化,重点关注与神经炎症相关的通路。
对NG和SMG组粪便进行非靶向LC-MS/MS代谢组学分析,鉴定差异代谢物并进行KEGG通路富集,随后对亚油酸及其衍生物进行靶向定量验证。
验证SMG富集的变形菌门是否加速亚油酸的消耗。
将铜绿假单胞菌和大肠杆菌在模拟微重力及低氧(10% O2)条件下预适应30天,随后与100 μM LA共培养10小时,通过LC-MS检测不同时间点培养物中LA含量。
评估膳食LA补充能否减轻SMG诱导的脑功能障碍并改善突触可塑性。
大鼠在正常重力下喂饲含10%(w/w)红花籽油的饲料30天,随后进行28天后肢卸载,期间持续喂饲,行为学测试后进行海马LA水平、炎症因子、突触蛋白、Golgi染色和电生理记录。
阐明LA在模拟微重力条件下抑制小胶质细胞炎症激活的分子机制。
BV2小胶质细胞在模拟微重力装置中培养72小时,随后加入50或100 μM LA处理24小时,通过RNA-seq、免疫荧光、ROS检测、免疫印迹等分析LA对炎症表型和STAT1通路的影响。
证实LA通过直接结合STAT1并抑制其磷酸化来发挥抗炎作用。
通过分子对接预测LA与STAT1的结合模式,利用表面等离子体共振(SPR)测定结合动力学参数,并通过免疫印迹验证LA对STAT1及其磷酸化水平的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Servicebio | -- |
| 胎牛血清 | Servicebio | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Servicebio | -- | |
| 模拟微重力细胞模型 | Gravite® 控制器 | Space Bio-Laboratories Co., Ltd. | -- |
| qRT-PCR | 总RNA提取试剂盒 | OMEGA | -- |
| MightyScript第一链cDNA合成预混液 | Sangon Biotech | -- | |
| SGExcel FastSYBR qPCR试剂盒 | Sangon Biotech | -- | |
| LightCycler® 480 实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| 炎症细胞因子和受体PCR芯片板 | Wcgene® biotech | WC-MRNA0266-R | |
| Western blot | PSD95多克隆抗体 | Proteintech | 30255-1-AP |
| DLG2 (PSD93)多克隆抗体 | Proteintech | 29457-1-AP | |
| α-突触核蛋白抗体 | Cell Signaling | 2642 | |
| STAT1多克隆抗体 | Proteintech | 10144-2-AP | |
| 磷酸化STAT1 (Tyr701)重组抗体 | Proteintech | 82674-10-RR | |
| 磷酸化STAT1 (Ser727)多克隆抗体 | Proteintech | 28977-1-AP | |
| IFIT2多克隆抗体 | Proteintech | 12604-1-AP | |
| IFITM2多克隆抗体 | Proteintech | 12769-1-AP | |
| IFITM3多克隆抗体 | Proteintech | 11714-1-AP | |
| MX1多克隆抗体 | Proteintech | 13750-1-AP | |
| 重组抗β-肌动蛋白抗体 | Servicebio | GB15003-100 | |
| HRP标记山羊抗兔IgG H&L | MCE | HY-P8001 | |
| 免疫荧光 | IBA1重组抗体 | Proteintech | 81728-1-RR |
| CD68/SR-D1抗体 (FA-11) | Novus Biologicals | NBP2-33337 | |
| 重组抗ZO1紧密连接蛋白抗体 | Servicebio | GB15195-100 | |
| 重组抗Occludin抗体 | Servicebio | GB15149-100 | |
| FITC标记山羊抗兔IgG (H+L) | Proteintech | SA00003-2 | |
| Cy3标记山羊抗小鼠IgG (H+L) | Proteintech | SA00009-1 | |
| H&E染色 | 脱水机 | DIAPATH | -- |
| 包埋机 | Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd | JB-P5 | |
| 切片机 | Shanghai Leica Instruments Co., Ltd. | RM2016 | |
| 16S rRNA测序 | TGuide S96磁珠法土壤/粪便DNA提取试剂盒 | Tiangen Biotech (Beijing) Co., Ltd. | -- |
| Omega DNA纯化试剂盒 | Omega Inc. | -- | |
| Illumina Novaseq 6000 测序平台 | Illumina | -- | |
| 代谢组学 | Waters Acquity I-Class PLUS 超高效液相色谱 | Waters | -- |
| Waters Xevo G2-XS QTof 高分辨质谱 | Waters | -- | |
| Waters Acquity UPLC HSS T3 色谱柱 | Waters | -- | |
| LA干预 | 亚油酸 | Sigma | 60-33-3 |
| Golgi染色 | 高尔基固定液 | Servicebio | G1069-15ML/30ML |
| G1069-1 染色液 | Servicebio | -- | |
| G1069-3 溶液 | Servicebio | -- | |
| G6012-1 载玻片 | Servicebio | -- | |
| G1069-2 显色液 | Servicebio | -- | |
| G1402 封片剂 | Servicebio | -- | |
| Leica VT1000S 振动切片机 | Leica | -- | |
| 3DHISTECH Pannoramic 扫描仪 | 3DHISTECH | -- | |
| 电生理记录 | Leica VT1200s 振动切片机 | Leica Biosystems | -- |
| Olympus BX51WI 显微镜 | Olympus | -- | |
| MultiClamp 700B 放大器 | Molecular Devices | -- | |
| Digidata 1440A 接口 | Molecular Devices | -- | |
| 血常规检查 | Sysmex XN-1000V 血液分析仪 | Sysmex | -- |
| SPR | CM5 芯片 | -- | -- |
| Biacore T200 | -- | -- | |
| ROS检测 | DCFH-DA 探针 | -- | -- |
| 细胞处理 | 氟达拉滨 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 大鼠品系、体重、周龄、适应性饲养时间、SMG建模周期(28天)、对照组处理(水平尾部悬吊)、饲养条件 阅读提示:见Methods 'Animal SMG model-hindlimb unloading (HU)' 及 Figure 1A 图注 |
| 行为学测试 | 各组样本量(n=5)、测试时间点(OFT第29天/第21天,EPM第30天/第22天,Y迷宫第31天/第23天)、测试时长(OFT 8min,EPM 5min,Y迷宫 5min)、分析软件 阅读提示:见Methods 'Animal behavioral experiments' 及 Figure 1C-E、Figure 3C-E 图注 |
| 粪便微生物群移植(FMT) | 供体粪便采集时间、粪便悬液制备比例(1g/10mL PBS)、灌胃体积(500 μL/天)、灌胃持续时间(14天)、受体抗生素预处理方案(抗生素种类和浓度) 阅读提示:见Methods 'Fecal microbiota transplantation (FMT)' |
| 16S rRNA测序及分析 | 样本采集时间点、DNA提取试剂盒、引物序列(338F/806R)、测序平台(Illumina Novaseq 6000)、生物信息学分析流程及参数 阅读提示:见Methods 'High-throughput 16S rRNA gene sequencing of microbiota' 及 'Bioinformatic analysis' |
| 代谢组学分析 | 样本类型、采集时间、液相色谱和质谱参数、数据处理软件、差异代谢物筛选标准 阅读提示:见Methods 'Gut microbiota metabolites sequencing' |
| LA干预实验 | LA补充方式(红花籽油占饲料10% w/w)、给药时间(预处理30天+SMG期间28天)、BV2细胞LA处理浓度(50或100 μM)及时间点(SMG第3天加入,持续24小时) 阅读提示:见Methods 'Metabolite intervention model' 及 Figure 5A、Figure 7B 图注 |
| 体外微重力模型 | BV2细胞接种密度(1×10⁵)、培养容器(T25瓶)、培养基体积(加满)、模拟微重力设备(Gravite® Controller)、SMG处理时间(4天) 阅读提示:见Methods 'Cell SMG model' 及 Figure 7B 图注 |
| 电生理记录 | 麻醉和灌流方法、切片厚度(300 μm)、恢复时间(10-13 min)、记录温度(25°C)、电极内液成分、刺激电流强度(0-140 pA)、mEPSC记录条件(-70 mV,阻断剂浓度) 阅读提示:见Methods 'Electrophysiological Acquisition' 及 Figure 6 图注 |