巨噬细胞Mtdh缺陷通过增加血小板反应蛋白-1的产生不一致地调节肿瘤生长和转移

Macrophage Mtdh deficiency discordantly regulated tumor growth and metastasis through increased thrombospondin-1 production

作者信息Yu Jiang, Lingyuan Min, Xinyu Yang, Fengguo Zhang, Quanye Sun, Yanxia Lin, Wenyu Zhang, Yuling Li, Guanglin Fu, Xiuxiu Liu
PMID41734995
发布时间2026-02-24
DOI10.1136/jitc-2025-013655

实验完整度

包含巨噬细胞特异性Mtdh敲除小鼠的皮下肿瘤和肺转移模型,结合LC-MS/MS、ChIP、Co-IP等分子机制验证,并利用TCGA/GEO数据,证据层级涵盖体内表型、病理分析和机制实验。

主要模型

巨噬细胞特异性Mtdh敲除小鼠(Mac-MtdhKO) MC-38结直肠癌皮下及肺转移模型 B16F10黑色素瘤皮下及肺转移模型 NIH3T3成纤维细胞共培养体系

重点核对

Mtdh敲除的巨噬细胞中TSP-1表达是否上调 TSP-1/TGF-β1轴阻断后肿瘤生长和纤维化是否受抑制 MDM2核定位和MDM2-p53相互作用是否改变 p53抑制剂PFT-β处理后TSP-1表达是否恢复

摘要

目的:Metadherin(MtDH)是一种公认的癌基因,参与多种癌症的进展和转移。然而,需要进一步研究来阐明MTDH在肿瘤进展过程中巨噬细胞中表达的生物学作用。方法:将小鼠结直肠癌和黑色素瘤细胞皮下和静脉注射到髓系特异性Mtdh基因敲除小鼠中,以评估肿瘤生长和肺转移。使用质谱、免疫荧光染色、来自癌症基因组图谱(TCGA)结肠腺癌和黑色素瘤队列的数据分析以及蛋白质印迹法,检测了Mtdh基因敲除巨噬细胞对血管生成和纤维化的影响。使用血小板反应蛋白(TSP-1)阻断肽抑制转化生长因子β1(TGF-β1)的激活,以在体内和体外抑制纤维化。使用来自基因表达综合数据库的RNA测序数据、ELISA、免疫沉淀、染色质免疫沉淀测定、定量实时PCR和蛋白质印迹法研究了分子机制。结果:Mtdh缺陷的巨噬细胞抑制了肺转移,但出乎意料地促进了两种癌细胞类型的皮下肿瘤生长。这种不一致的效应归因于TSP-1产生的增加,TSP-1是一种血管生成抑制剂,也通过TGF-β1激活调节纤维化。巨噬细胞中Mtdh敲除抑制了肺转移和皮下肿瘤中的血管生成,而仅在皮下肿瘤中观察到纤维化增强。在TCGA结肠腺癌数据中,较高的TSP-1表达与晚期病理T分期和癌症相关成纤维细胞丰度相关。此外,巨噬细胞中Mtdh缺失诱导肿瘤细胞中潜伏TGF-β1的激活,通过TSP-1/TGF-β1轴促进成纤维细胞向肌成纤维细胞转化、纤维化和意外的肿瘤生长。机制上,MTDH缺陷导致鼠双微体2(MDM2)核滞留,破坏MDM2-p53相互作用,并增强p53依赖性TSP-1转录。结论:我们发现巨噬细胞Mtdh缺陷通过TSP-1介导的抗血管生成效应或TSP-1/TGF-β1介导的促纤维化效应不一致地调节肿瘤转移和生长。因此,这项研究为肿瘤生长和转移之间的不一致性机制提供了新的见解。关键词:巨噬细胞,细胞外基质,细胞因子,结直肠癌,皮肤癌

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
巨噬细胞中MTDH在肿瘤进展中的生物学作用,特别是其对肿瘤生长和转移的差异化影响。
核心机制
巨噬细胞Mtdh缺失通过核滞留MDM2、破坏MDM2-p53相互作用,增强p53依赖性TSP-1转录,增加TSP-1产生,进而通过TSP-1的抗血管生成作用抑制转移,但通过TSP-1/TGF-β1轴促进成纤维细胞向肌成纤维细胞转化和纤维化,从而促进皮下肿瘤生长。
主要证据
在小鼠皮下和肺转移模型中观察到Mtdh敲除抑制转移但促进皮下生长;LC-MS/MS和qPCR显示TSP-1上调;ChIP证实p53富集于TSP-1启动子;Co-IP显示MDM2-p53相互作用减弱;LSKL或PFT-β处理逆转了促纤维化和促生长效应。
研究意义
揭示了巨噬细胞MTDH在肿瘤生长和转移中的相反作用,为靶向肿瘤-基质相互作用的治疗策略提供了新的见解。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立巨噬细胞特异性Mtdh敲除小鼠模型

验证Mtdh在巨噬细胞中的特异性敲除及其对肿瘤生长和转移的影响。

将Mtdhfl/fl小鼠与LysM-Cre小鼠杂交,获得髓系特异性敲除小鼠,并通过Western blot和免疫荧光验证巨噬细胞中Mtdh表达降低。

2

评估皮下肿瘤生长与肺转移

检测巨噬细胞Mtdh缺失对肿瘤生长和转移的影响。

将MC-38和B16F10细胞皮下注射构建皮下瘤模型,尾静脉注射构建肺转移模型,测量肿瘤体积和重量,统计肺转移结节。

3

分析肿瘤免疫微环境

排除免疫细胞浸润变化对肿瘤生长差异的影响。

对皮下肿瘤和肺转移组织进行免疫细胞浸润分析,包括免疫荧光、流式细胞术和TIMER数据库分析。

4

检测TSP-1表达和分泌

验证Mtdh敲除对巨噬细胞TSP-1表达的影响。

通过qRT-PCR、Western blot和ELISA检测巨噬细胞及肿瘤组织中TSP-1的表达和分泌。

5

评估血管生成

验证Mtdh敲除巨噬细胞对血管生成的影响。

通过免疫组化、免疫荧光和Western blot检测肿瘤和肺组织中CD31的表达,以及体外用条件培养基处理bEnd.3细胞进行管形成和迁移实验。

6

评估组织纤维化

检测Mtdh敲除对不同部位肿瘤纤维化的影响。

采用天狼星红和Masson三色染色评估皮下肿瘤和肺组织中胶原沉积,并检测α-SMA表达。

7

检测TGF-β1激活和成纤维细胞向肌成纤维细胞转化(FMT)

验证Mtdh缺失巨噬细胞通过TSP-1/TGF-β1轴促进FMT。

ELISA检测共培养上清中活性TGF-β1水平,Transwell迁移实验和Western blot检测NIH3T3细胞中α-SMA和纤维连接蛋白表达。

8

验证TSP-1/TGF-β1轴阻断效果

证实阻断TSP-1/TGF-β1轴可逆转Mtdh缺失诱导的促纤维化和促生长作用。

在体内使用LSKL肽处理皮下荷瘤小鼠,在体外用LSKL处理共培养体系,观察肿瘤生长、纤维化及FMT指标。

9

解析分子机制

阐明Mtdh调控TSP-1转录的分子机制。

检测p53靶基因表达,使用PFT-β抑制p53活性,ChIP检测p53在TSP-1启动子区的结合,Co-IP检测MDM2-p53相互作用,免疫荧光观察MDM2定位。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
LSKL肽MedChemExpressHY-P0299A
Pifithrin-βMedChemExpressHY-16702A
通用两步检测试剂盒ZsbioPV-9000
DAPI溶液SolarbioC0065
Masson三色染色试剂盒SolarbioG1340
RIPA裂解液SolarbioP6730
离心脱盐柱Thermo Fisher Scientific89852
Q Exactive Plus质谱仪Thermo Fisher Scientific--
TRIzon试剂CWBIOCW0580S
HiFiScript cDNA合成试剂盒(去除gDNA)CWBIOW2582M
UltraSYBR荧光定量PCR预混液CWBIOCW0957M
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
核蛋白和胞浆蛋白提取试剂盒BeyotimeP0027
小鼠TSP-1 ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-M3083
人/小鼠TGF-β1 ELISA试剂盒MultiSciencesEK981
Transwell小室Corning--
正置荧光显微镜Olympus--
多功能酶标仪Molecular Devices--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系:Mtdhfl/fl与LysM-Cre杂交生成的Mac-MtdhKO小鼠;细胞接种数量:3×10^5个MC-38或B16F10细胞皮下注射或尾静脉注射;肿瘤体积测量公式
阅读提示:Materials and methods: Subcutaneous tumor model and metastasis model
细胞培养与处理
腹膜巨噬细胞分离方法(巯基乙酸盐诱导);处理试剂LSKL和PFT-β的浓度和持续时间(LSKL不明确,PFT-β 10 μM, 48h)
阅读提示:Materials and methods: Peritoneal macrophages and coculture systems
分子检测
qRT-PCR引物序列;ELISA试剂盒品牌和货号;Western blot抗体信息未提供
阅读提示:Materials and methods: RNA extraction and quantitative real-time PCR; Western blot; ELISA
染色实验
免疫组化试剂盒和DAPI来源;Masson三色染色试剂盒;天狼星红染色条件未详细说明
阅读提示:Materials and methods: Histopathological analysis
蛋白组学
LC-MS/MS分析流程,包括裂解、酶解、脱盐和质谱参数未列出
阅读提示:Materials and methods: LC–MS/MS analysis