表观遗传调控因子RINF(CXXC5)维持人未成熟红细胞中SMAD7的表达并维持红细胞的扩增

The epigenetic regulator RINF (CXXC5) maintains SMAD7 expression in human immature erythroid cells and sustains red blood cells expansion

作者信息Audrey Astori, Gabriel Matherat, Isabelle Munoz, Emilie-Fleur Gautier, Didier Surdez, Yaël Zermati, Frédérique Verdier, Sakina Zaidi, Vincent Feuillet, Amir Kadi, Evelyne Lauret, Olivier Delattre, Carine Lefèvre, Michaela Fontenay, Evelyne Ségal-Bendirdjian, Isabelle Dusanter-Fourt, Didier Bouscary, Olivier Hermine, Patrick Mayeux, Frédéric Pendino
PMID33241676
发布时间2022-01-01
DOI10.3324/haematol.2020.263558

实验完整度

高

包含人原代CD34+细胞体外红系分化模型、细胞系模型(K562和UT75.3)、功能缺失与过表达实验、机制(ChIP和5hmC检测)及患者样本相关性分析,证据层级多。

主要模型

人脐带血或成人骨髓来源的CD34+造血干祖细胞经体外红系分化培养 K562细胞系 UT75.3细胞系 健康供者及MDS患者CD34+骨髓细胞

重点核对

RINF敲低(shRINF#4和shRINF#3)是否影响红系分化及红细胞产量 RINF敲低对SMAD7 mRNA和蛋白表达的影响及与红细胞表型的关系 RINF过表达对SMAD7表达及血红蛋白化的影响 RINF敲低后细胞对TGFb信号的敏感性(pSMAD2水平)及SB431542(TGFbRI抑制剂)的作用 RINF敲低对基因组5hmC水平的影响

摘要

编码维甲酸诱导核因子(RINF)的CXXC5基因位于骨髓增生异常综合征和成人急性髓系白血病中常见的5q31.2缺失区域内。RINF可能作为表观遗传调控因子,并已被提议作为造血系统恶性肿瘤的肿瘤抑制因子。然而,其在正常造血中的功能研究尚缺乏,其作用机制未知。在此,我们评估了RINF沉默对人原代CD34+祖细胞因子诱导的红系分化的影响。我们发现RINF在未成熟红系细胞中表达,且RINF敲低加速了促红细胞生成素驱动的成熟,导致红细胞数量显著减少(约45%),但不影响细胞活力。RINF沉默诱导的表型依赖于肿瘤生长因子b(TGFb),并由TGFb信号抑制剂SMAD7介导。RINF通过直接结合SMAD7启动子来上调其表达,我们发现RINF和SMAD7 mRNA水平在健康供者骨髓和del(5q)骨髓增生异常综合征患者分离的CD34+细胞中紧密相关。重要的是,RINF敲低减弱了原代细胞中SMAD7的表达,而异位SMAD7表达足以阻止RINF敲低依赖的红系表型。最后,RINF沉默影响人成红细胞的5'-羟甲基化,与其最近在鼠中被描述为TET2锚定平台的作用一致。总的来说,我们的数据揭示了表观遗传因子RINF作为SMAD7的转录调控因子,如何微调细胞对TGFb超家族细胞因子的敏感性,从而在正常和病理性红细胞生成中发挥重要作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
RINF(CXXC5)在正常人类红细胞生成中的作用及其作用机制是什么?
核心机制
RINF通过直接结合SMAD7启动子维持其表达,SMAD7作为TGFb信号的抑制剂,在RINF缺失时SMAD7表达降低,细胞对TGFb敏感性增加,加速红系成熟并减少红细胞扩增。
主要证据
人CD34+原代细胞中RINF敲低导致加速成熟和RBC产量减少约45%,此表型可被TGFb受体抑制剂SB431542阻断或通过异位表达SMAD7拯救;ChIP证明RINF直接结合SMAD7启动子;在健康供者和del(5q)MDS患者CD34+细胞中RINF和SMAD7 mRNA水平显著相关。
研究意义
研究揭示RINF-SMAD7轴在正常和病理性红细胞生成中的重要性,为骨髓增生异常综合征等无效造血疾病提供了潜在的治疗靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

RINF表达模式分析

检测RINF在红系分化各阶段的表达水平

通过western blot和qRT-PCR检测人CD34+细胞在体外红系分化过程中不同阶段(祖细胞、原红、早幼红等)的RINF mRNA和蛋白水平,并与公共转录组数据比较。

2

RINF敲低的功能表型分析

评估RINF敲低对人红系分化和红细胞产量的影响

使用shRNA慢病毒载体在CD34+细胞中敲低RINF,检测细胞增殖、活力、红细胞分化标志(GPA、CD71、CD49d、Band3)、血红蛋白化(联苯胺染色)、形态学及集落形成能力。

3

TGFb信号通路参与验证

验证RINF敲低表型是否依赖TGFb信号

在RINF敲低的CD34+细胞培养中加入TGFb受体I抑制剂SB431542,或外源添加TGFb1,检测对红细胞分化标志、pSMAD2水平和RBC产量的影响。

4

SMAD7作为关键靶基因的机制验证

确定SMAD7是否为RINF的直接转录靶点及其在RINF下游的作用

通过ChIP-qPCR检测RINF和H3K4me3在SMAD7启动子区域的结合;检测RINF敲低或过表达对SMAD7表达的影响;在K562细胞和CD34+细胞中进行SMAD7过表达拯救实验。

5

患者样本相关性分析

在临床样本中验证RINF和SMAD7表达的相关性

通过qRT-PCR检测健康供者(n=11)和MDS患者CD34+细胞中RINF和SMAD7 mRNA表达,并进行相关性分析,同时使用公共微阵列数据集验证。

6

基因组5hmC水平检测

探究RINF敲低对基因组范围内5-羟甲基化水平的影响

在RINF敲低的原代CD34+细胞中用免疫荧光和流式细胞术检测5hmC水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Ficoll-Paque密度梯度分离液Life Technologies--
CD34微珠试剂盒Miltenyi Biotec130100453
白细胞介素6----
白细胞介素3----
干细胞因子----
促红细胞生成素----
CD36抗体(FA6.152)Beckman Coulter--
抗小鼠IgG1微珠Miltenyi Biotec--
甲基纤维素培养基H4034StemCell Technologies--
SB431542(TGFbRI抑制剂)SelleckchemS1067
转化生长因子β1Peprotech100-21
PE/Cy7偶联的glycophorin A (GPA/CD235a)抗体Beckman CoulterA71564
PE偶联的CD71抗体Beckman CoulterIM2001U
APC偶联的CD49d抗体Beckman CoulterB01682
PE偶联的CD233/Band3抗体IBGRL9439-PE
Accuri™ C6流式细胞仪Becton-Dickinson--
FACSAriaIII流式分选仪BD Biosciences--
氯化血红素Sigma-Aldrich--
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子Miltenyi Biotech--
RPMI 1640培养基----
Minimum essential medium-α----
胎牛血清----
L-谷氨酰胺----
青霉素G----
链霉素----
TRIzol试剂Life Technologies--
Transcriptor第一链cDNA合成试剂盒Roche489703000
Lightcycler® 480 ProbesMaster试剂盒Roche4707494001
Light Cycler 480实时荧光定量PCR仪Roche--
Clarity Western ECL化学发光底物Biorad170-5060
抗SMAD7抗体ProteinTech25840-1-AP
抗RINF抗体ProteinTech16513-1-AP
抗β-肌动蛋白(ACTB)抗体Sigma-AldrichA1978
抗磷酸化SMAD2/3抗体Cell Signaling8828
抗HSC70小鼠单克隆抗体Santa Cruz BiotechnologySC-7298
抗兔IgG HRP抗体Cell Signaling7074S
抗小鼠IgG HRP抗体Cell Signaling7076S
抗山羊IgG HRP抗体Southern Biotech6160-05
过氧化氢Sigma-Aldrich--
pTRIPDU3/GFP慢病毒载体----
MigR/IRES-GFP逆转录病毒载体----
pBABE-puro-SMAD7-HA逆转录病毒载体Addgene37044
pINDUCER21载体Addgene46948
Tet-pLKO-GFP载体Addgene21915

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞分离与培养
CD34+细胞来源与纯度(脐带血或成人骨髓,纯度94-98%)、扩增培养条件(IL6, IL3 10 ng/mL, SCF 100 ng/mL)
阅读提示:见Methods 'Primary culture of hematopoietic cells' 部分及Figure 1A
红系分化诱导
EPO加入时间和浓度、分化培养时间(10-18天)
阅读提示:见Methods 'Primary culture of hematopoietic cells' 部分及Figure 1A
RINF敲低
shRNA序列(shRINF#4和shRINF#3)及慢病毒载体
阅读提示:见Methods 'Lentiviral and retroviral transduction' 部分及在线补充方法
TGFb信号通路抑制
SB431542浓度(10 μM)和处理时间
阅读提示:见Figure 4B及其图注
SMAD7过表达拯救实验
SMAD7过表达载体(pBABE-puro-SMAD7-HA)和诱导表达条件(doxycycline浓度0.2 μg/mL)
阅读提示:见Figure 7D及图注、Methods 'Lentiviral and retroviral transduction' 部分
流式细胞术分析
抗体及其荧光标记(GPA-PE/Cy7, CD71-PE, CD49d-APC, Band3-PE)
阅读提示:见Methods 'Flow cytometry and differentiation analysis' 部分