REIIBP表达与功能初步分析
验证REIIBP在骨髓瘤细胞系和患者样本中的表达,并评估其促增殖和耐药作用。
通过Western blot和qRT-PCR检测各种骨髓瘤细胞系中REIIBP、NSD1、NSD2蛋白和mRNA水平;在RPMI8226中稳定过表达REIIBP,进行细胞活力、软琼脂克隆形成、细胞周期分析;用硼替佐米处理评估耐药性;分析CoMMpass数据集中REIIBP表达与硼替佐米反应的关系。
Epigenetic dysregulation of eukaryotic initiation factor 3 subunit E (eIF3E) by lysine methyltransferase REIIBP confers a pro-inflammatory phenotype in t(4;14) myeloma
包含体外酶活、细胞增殖/克隆、ChIP-seq、转录组、异种移植模型及临床数据集分析,并有功能验证和机制验证。
RPMI8226细胞系(稳定过表达REIIBP的等基因体系) KMS11、TKO细胞系(用于NSD2敲除和REIIBP重构) NOD/SCID小鼠异种移植模型(RPMI8226-REIIBP) 患者样本和CoMMpass临床队列
REIIBP蛋白表达水平(Western blot)在t(4;14)细胞系中的高低 REIIBP对H3K4me3和H3K27me3的催化活性(体外HMT实验) EZH2调控REIIBP的机制(siRNA和抑制剂处理) TLR7-BTK信号通路的激活(TLR7敲低和洛索立滨刺激) 依鲁替尼和硼替佐米的联合治疗效果(体内异种移植实验)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证REIIBP在骨髓瘤细胞系和患者样本中的表达,并评估其促增殖和耐药作用。
通过Western blot和qRT-PCR检测各种骨髓瘤细胞系中REIIBP、NSD1、NSD2蛋白和mRNA水平;在RPMI8226中稳定过表达REIIBP,进行细胞活力、软琼脂克隆形成、细胞周期分析;用硼替佐米处理评估耐药性;分析CoMMpass数据集中REIIBP表达与硼替佐米反应的关系。
确认REIIBP作为甲基转移酶的底物特异性,并验证其在细胞内对组蛋白修饰的影响。
使用纯化的REIIBP进行体外HMT实验,检测H3K4me3、H3K27me3、H3K36me2等修饰;在RPMI8226和KMS11 TKO细胞中过表达REIIBP,检测整体组蛋白修饰水平;比较NSD1、NSD2和REIIBP过表达对组蛋白修饰的不同影响。
研究EZH2对REIIBP表达和活性的调控机制,特别是miRNA介导的作用。
在RPMI8226等细胞中敲低EZH2(siRNA)或使用EZH2抑制剂处理,检测REIIBP表达和组蛋白修饰变化;在OPM2和RPMI8226中敲低Dicer,检测REIIBP表达;过表达三种miRNA(miR-26a、miR-31、miR-203)观察对REIIBP的影响。
鉴定REIIBP过表达引起的基因表达和组蛋白修饰全基因组变化,并寻找关键下游靶点。
对RPMI8226-VCon和RPMI8226-REIIBP细胞进行基因表达微阵列分析,进行GO和KEGG通路富集;进行H3K4me3和H3K27me3的ChIP-seq,比较峰分布和差异峰;整合分析转录组和ChIP-seq数据,发现eIF3E等候选基因。
验证eIF3E是否由REIIBP通过H3K4me3调控,并阐明eIF3E促进TLR7-BTK通路的分子机制。
用CRISPR/Cas9敲除eIF3E启动子区H3K4me3峰,验证其对eIF3E表达的影响;敲低eIF3E检测TLR7和BTK表达及细胞增殖;通过OPP和SUnSET实验比较蛋白合成率;通过RNA免疫沉淀和核糖体图谱分析eIF3E对TLR7 mRNA的结合和翻译的影响。
验证REIIBP通过TLR7-BTK-NFkB通路促进炎症表型,并评估靶向BTK的治疗潜力。
检测REIIBP过表达细胞中TLR7、BTK、磷酸化BTK和NFkB的蛋白水平;敲低TLR7或用TLR7激动剂洛索立滨处理,观察BTK磷酸化变化;检测IL-6分泌;用依鲁替尼处理多种骨髓瘤细胞系,评估细胞活力;在异种移植模型中,比较DMSO、依鲁替尼、硼替佐米和联合组的治疗效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 质粒构建 | pRP(shRNA)-EGFP-U6载体 | VectorBuilder | -- |
| pRP[ncRNA]-Puro-CMV载体 | VectorBuilder | -- | |
| CRISPR/Cas9 | pRP(CRISPR)-Puro-hCas9-U6载体 | VectorBuilder | -- |
| 药物处理 | EZH2小干扰RNA | Thermo Fisher Scientific | -- |
| EPZ-6438 | Selleck Chemicals | -- | |
| GSK-126 | Selleck Chemicals | -- | |
| 依鲁替尼 | Santa Cruz | -- | |
| 硼替佐米 | Santa Cruz | -- | |
| 洛索立滨 | Santa Cruz | -- | |
| 体外HMT实验 | 组蛋白H3三甲基K27定量试剂盒 | Abcam | -- |
| 组蛋白H3三甲基K4定量试剂盒 | Abcam | -- | |
| 核提取物 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| S-腺苷甲硫氨酸 | -- | -- | |
| 蛋白质印迹 | 抗H3K27me3抗体 (CST #9733) | Cell Signaling Technology | 9733 |
| 抗H3K4me3抗体 (CST #9751) | Cell Signaling Technology | 9751 | |
| 抗嘌呤霉素抗体 (12D10) | -- | -- | |
| ChIP实验 | SimpleChIP®酶染色质IP试剂盒 | Cell Signaling Technology | -- |
| DNA纯化 | MinElute PCR纯化试剂盒 | Qiagen | -- |
| 细胞培养 | 磷酸盐缓冲液 | -- | -- |
| 细胞活力测定 | CellTiter-Glo (CTG)检测 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| REIIBP表达分析 | REIIBP抗体特异性;细胞系和患者样本的t(4;14)状态;蛋白和mRNA表达水平 阅读提示:Methods: 质粒、患者样本和试剂;结果图1 |
| 体外组蛋白甲基转移酶活性检测 | 纯化REIIBP的来源(细菌或293T);底物(H3);SAM浓度;反应条件(时间、温度) 阅读提示:Methods: 体外组蛋白甲基转移酶活性检测;结果图3 |
| EZH2调控REIIBP实验 | siRNA序列及转染浓度;EZH2抑制剂浓度和处理时间;miRNA种类及转染浓度 阅读提示:Methods: 质粒;结果图4 |
| ChIP-seq | 细胞数量;抗体批次和货号;消化酶用量;测序平台和分析流程 阅读提示:Methods: 染色质免疫沉淀测序;结果图7 |
| CRISPR敲除H3K4me3峰实验 | sgRNA序列和靶位点;转染效率;验证敲除效果的方法 阅读提示:Methods: 质粒;结果图8A |
| RNA免疫沉淀 | 抗体(eIF3E)和IgG对照;细胞裂解液量;qPCR引物 阅读提示:结果图8C |
| 多核糖体图谱分析 | 细胞裂解液制备;蔗糖梯度离心条件;RNA提取和qPCR 阅读提示:结果图8D |
| 异种移植模型 | 细胞数量(5×10^6);小鼠品系和年龄(NOD/SCID雌性6周龄);药物剂量(依鲁替尼15 mg/kg、硼替佐米0.4 mg/kg);给药途径和频率;治疗持续时间;肿瘤测量方法 阅读提示:Methods: 体内异种移植研究;结果图6D-E |